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    硫酸酯化裂褶多糖的制備及其抗凝血活性

    2022-01-28 15:17:12鄭必勝伍磊周林裴運(yùn)林
    關(guān)鍵詞:三氧化硫抗凝血酯化

    鄭必勝 伍磊 周林 裴運(yùn)林

    (1.華南理工大學(xué) 食品科學(xué)與工程學(xué)院,廣東 廣州 510640;2.廣東藥科大學(xué) 生命科學(xué)與生物制藥學(xué)院,廣東 廣州 511436;3.廣東丸美生物科技股份有限公司,廣東 廣州 510530)

    多糖因其具有抗氧化、抗腫瘤、降血糖、免疫調(diào)節(jié)等多項生物活性而一直受研究者的青睞[1]。然而多糖的化學(xué)組成、結(jié)構(gòu)和構(gòu)象基本上決定了多糖的生物活性[2]。多糖的分子修飾可以通過引入新的基團(tuán)來改善多糖原有的分子結(jié)構(gòu),并賦予其新的功能特性[3- 5]。硫酸酯化修飾是通過化學(xué)方法使得多糖分子羥基上的氫被硫酸基團(tuán)取代,能夠增強(qiáng)多糖的水溶性,而且硫酸基團(tuán)的引入能使多糖具有獨特的抗凝血活性[6- 7]。

    裂褶多糖(Schizophyllanpolysacchaeides)是一種從裂褶菌(Schizophyllan)子實體、菌絲或發(fā)酵液中提取出來的中性多糖,其分子結(jié)構(gòu)為3個重復(fù)的β- (1,3)-D-吡喃葡萄糖殘基連接一個β- (1,6)-D-吡喃葡萄糖殘基[8- 9]。研究表明,裂褶多糖具有良好的抗腫瘤[10]、免疫調(diào)節(jié)活性[11]以及保濕性[12],而且裂褶多糖具有分子質(zhì)量高、黏度高、溶解度低的特點。之前關(guān)于裂褶多糖硫酸酯的研究主要集中在其抗氧化活性上[13- 14],缺乏對硫酸酯化裂褶多糖制備工藝及其抗凝血活性的研究。

    本研究以裂褶多糖(SPG)為原料,采用三氧化硫-吡啶法對SPG進(jìn)行硫酸酯化,通過響應(yīng)面實驗對制備工藝進(jìn)行優(yōu)化,制備高取代度的硫酸酯化裂褶多糖(S-SPG)。通過紫外光譜、紅外光譜、掃描電鏡對S-SPG進(jìn)行結(jié)構(gòu)表征,并研究其抗凝血活性,旨在為研發(fā)具有抗凝活性和治療血栓作用的S-SPG提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    裂褶多糖由裂褶菌發(fā)酵而來,廣州丸美生物科技有限公司提供。

    本研究使用的主要試劑有三氧化硫-吡啶復(fù)合物、肝素鈉(205 U/mg),購自上海麥克林生化科技有限公司;二甲基亞砜(DMSO)、吡啶,購自上海阿拉丁科技股份有限公司;N,N-二甲基甲酰胺(DMF),購自安耐吉化學(xué)有限公司;APTT(活化部分凝血活酶時間)、TT(凝血酶時間)、PT(凝血酶原時間)試劑,購自日本Sysmex公司;其他試劑均為國產(chǎn)分析純。

    1.2 儀器與設(shè)備

    本研究使用的主要儀器有:ZNCL-DL-GX4型智能磁力攪拌器,河南愛博特科技發(fā)展有限公司生產(chǎn);DU730型核酸蛋白分析儀,美國Beckman Coulter公司生產(chǎn);VERTEX 33型傅里葉紅外光譜儀,德國Bruker公司生產(chǎn);CA620型全自動凝血分析儀,日本Sysmex公司生產(chǎn)。

    1.3 實驗方法

    1.3.1 單因素實驗

    以硫酸酯化裂褶多糖的取代度為評價指標(biāo)進(jìn)行單因素實驗,研究不同反應(yīng)溶劑、三氧化硫-吡啶與裂褶多糖的質(zhì)量比、反應(yīng)溫度、反應(yīng)時間對硫酸酯化裂褶多糖取代度的影響。

    1.3.1.1 反應(yīng)溶劑對取代度的影響

    裂褶多糖硫酸酯化的方法參考文獻(xiàn)[15],稍作修改。取100 mg干燥裂褶多糖于三角瓶中,分別加入15 mL吡啶、15 mL DMSO(二甲基亞砜)、15 mL DMF,干燥環(huán)境下浸潤12 h。按照三氧化硫-吡啶與多糖的質(zhì)量比為3加入三氧化硫-吡啶,在70 ℃水浴中反應(yīng)3 h。反應(yīng)結(jié)束后,加入60 mL預(yù)冷蒸餾水,用NaOH調(diào)節(jié)pH值至7.5,經(jīng)醇沉、透析、冷凍干燥得硫酸酯化裂褶多糖,記為S-SPG。

    1.3.1.2 三氧化硫-吡啶與裂褶多糖的質(zhì)量比對取代度的影響

    固定反應(yīng)溶劑為DMF,反應(yīng)時間為3 h,反應(yīng)溫度為70 ℃,探究三氧化硫-吡啶與多糖的質(zhì)量比為2、2.5、3、3.5、4、4.5對S-SPG取代度的影響,其余步驟參考1.3.1.1節(jié)。

    1.3.1.3 反應(yīng)溫度對取代度的影響

    固定反應(yīng)溶劑為DMF,三氧化硫-吡啶與多糖的質(zhì)量比為3,反應(yīng)時間為3 h,探究反應(yīng)溫度為50、60、70、80、90 ℃對S-SPG取代度的影響,其余步驟參考1.3.1.1節(jié)。

    1.3.1.4 反應(yīng)時間對取代度的影響

    固定反應(yīng)溶劑為DMF,三氧化硫-吡啶與多糖的質(zhì)量比為3,反應(yīng)溫度為70 ℃,探究反應(yīng)時間為1、2、3、4、5 h對S-SPG取代度的影響,其余步驟參考1.3.1.1節(jié)。

    1.3.2 響應(yīng)面實驗設(shè)計

    在單因素實驗結(jié)果的基礎(chǔ)上,采用Design-Expert 8.0.6中的Box-Behnken模型設(shè)計三因素三水平響應(yīng)面實驗,以取代度為響應(yīng)值進(jìn)行分析。3個因素分別為三氧化硫-吡啶復(fù)合物與裂褶的質(zhì)量比、反應(yīng)溫度、反應(yīng)時間,分別對應(yīng)A、B、C。結(jié)合單因素實驗結(jié)果,對各因素的設(shè)計水平表如表1所示。

    表1 響應(yīng)面實驗因素及其水平表Table 1 Factors and levels of response surface experiment

    1.3.3 取代度測定

    1.3.3.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制

    硫酸化裂褶多糖的取代度采用硫酸鋇比濁法測定。

    y=0.787 1x-0.068 6

    (1)

    其相關(guān)系數(shù)的平方R2=0.996 9。

    1.3.3.2 樣品取代度的測定

    精確稱取10 mg硫酸酯化裂褶多糖,采用10 mL 1 mol/L的HCl溶解,于105 ℃下水解8 h,用 1 mol/L 的HCl補(bǔ)足液體,0.45 μm過濾得1 g/L多糖儲備液。取200 μL S-SPG多糖溶液,按上述方法測定吸光值,得出多糖的硫酸基含量。根據(jù)式(2)計算取代度:

    DS=1.62S/(32-1.02S)

    (2)

    式中,DS為S-SPG的取代度,S為S-SPG的含硫量。

    1.3.4 S-SPG的制備

    根據(jù)單因素和響應(yīng)面的實驗結(jié)果,制備3種不同取代度的硫酸酯化裂褶多糖,根據(jù)取代度的大小命名為S-SPG1、S-SPG2、S-SPG3。

    1.3.5 SPG、S-SPG的組分分析

    總糖含量采用硫酸-苯酚法測定;硫酸基含量及取代度按1.3.3節(jié)的步驟測定;蛋白含量采用考馬斯亮藍(lán)法測定。

    1.3.6 SPG、S-SPG的紅外光譜測定

    取2 mg干燥樣品,與KBr混合均勻,并充分研磨成粉末,壓片,在4 000~500 cm-1范圍內(nèi)掃描。

    1.3.7 SPG、S-SPG的掃描電鏡

    取裂褶多糖、硫酸酯化裂褶多糖粘附于導(dǎo)電膠上,真空噴金,在高壓10 kV的條件下,分別在100、1 000的放大倍數(shù)下觀察多糖表面形貌并拍攝照片。

    1.3.8 SPG、S-SPG2的13C NMR

    取50 mg裂褶多糖、硫酸酯化裂褶多糖,重水反復(fù)凍溶2-3次,重水作為溶劑,采用5 mm的樣品管,檢測溫度為25 ℃,累加8 266次。

    1.3.9 SPG、S-SPG的抗凝血活性測定

    血漿制備:取成年家兔,心臟取血,按8%檸檬酸鈉與兔血的體積比1:9混合均勻,3 000 r/min離心15 min,收集上層血漿,-20 ℃保存,用前通過37 ℃水浴快速解凍,并離心除去下層沉淀。

    待測樣品用0.9% NaCl溶解、稀釋。陽性對照為0.025 g/L的肝素鈉,空白對照為0.9% NaCl溶液。

    試驗中APTT試劑、0.025 mol/L CaCl2、TT試劑、PT試劑均需在37 ℃下孵育。

    1.3.9.1 活化部分凝血酶時間

    取450 μL血漿于玻璃試管中,加入50 μL不同濃度的樣品,混合均勻,將玻璃試管放入血凝儀。儀器自動吸取50 μL混合血漿和50 μL APTT試劑,孵育3 min,加入50 μL 0.025 mol/L CaCl2溶液,混勻后儀器自動記錄血漿凝固時間,即為APTT時間。

    1.3.9.2 凝血酶時間

    血漿制樣參照1.3.9.1節(jié),儀器自動吸取100 μL混合血漿,孵育2 min,加入100 μL TT試劑,混勻后儀器自動記錄血漿凝固時間,即為TT時間。

    1.3.9.3 凝血酶原時間

    血漿制樣參照1.3.9.1節(jié),儀器自動吸取50 μL混合血漿,孵育2 min,加入100 μL TT試劑,混勻后儀器自動記錄血漿凝固時間,即為PT時間。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 單因素實驗結(jié)果

    如圖1(a)所示,在吡啶、DMF和DMSO 3種反應(yīng)溶劑中,當(dāng)DMF作為反應(yīng)溶劑時,S-SPG的取代度最高,為1.32,故選擇DMF作為裂褶多糖硫酸酯化過程的反應(yīng)試劑。

    如圖1(b)所示,隨著三氧化硫-吡啶與多糖質(zhì)量比的增大,S-SPG的取代度呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢,在質(zhì)量比為4時,S-SPG的取代度最高,為1.85。三氧化硫-吡啶質(zhì)量的增加有利于多糖分子中羥基上的氫被硫酸基團(tuán)充分取代,但三氧化硫-吡啶的量增多,容易在溶劑中結(jié)團(tuán),造成取代度降低。

    如圖1(c)所示,當(dāng)溫度低于70 ℃時,S-SPG的取代度與溫度呈正相關(guān),當(dāng)溫度超過70 ℃時,取代度與溫度呈負(fù)相關(guān),70 ℃時取代度最高,為1.32。升溫有利于三氧化硫-吡啶分子在反應(yīng)溶劑中的擴(kuò)散,促進(jìn)酯化劑與多糖分子結(jié)合,加快反應(yīng)速率,有利于取代度的提高。但高溫會導(dǎo)致多糖降解,從而造成取代度降低。

    如圖1(d)所示,當(dāng)反應(yīng)時間在1~3 h范圍內(nèi)時,S-SPG的取代度與時間呈正相關(guān),反應(yīng)時間大于3 h時,取代度與時間呈負(fù)相關(guān)。反應(yīng)時間的延長有利于多糖與酯化劑的充分吸附和反應(yīng),但長時間的高溫容易造成酯化劑的分解和多糖的降解,使取代度降低。

    (a)反應(yīng)溶劑對取代度的影響

    2.2 響應(yīng)面優(yōu)化結(jié)果

    2.2.1 響應(yīng)面優(yōu)化結(jié)果

    在單因素實驗結(jié)果的基礎(chǔ)上,以取代度(Y)為響應(yīng)值,采用Box-Behnken設(shè)計關(guān)于三氧化硫-吡啶復(fù)合物與裂褶多糖的質(zhì)量比(A)、反應(yīng)溫度(B)以及反應(yīng)時間(C)的三因素實驗,結(jié)果如表2所示。數(shù)據(jù)經(jīng)二次回歸分析,結(jié)果如表3所示。所得的數(shù)學(xué)模型為

    表2 Box-Behnken 實驗設(shè)計及結(jié)果Table 2 Design and result of Box-Behnken response surface experiment

    Y=8.726A+0.244 95B+1.578C-2.5×10-3AB+

    0.025AC-7.25×10-3BC-1.047A2-

    1.517 5×10-3B2-0.191 75C2-27.092 5。

    表3 回歸模型方差分析1)

    2.2.2 交互作用分析

    根據(jù)回歸方程得出的兩兩因素的響應(yīng)面和等高線圖如圖2所示。響應(yīng)面的曲面越陡峭,表明該因素對S-SPG取代度的影響越大;等高線圖呈橢圓形,表明兩個因素之間存在交互作用,否則交互作用可以忽略不計。從圖2可以看出,反應(yīng)溫度和反應(yīng)時間之間存在交互作用,其他兩組因素間不存在交互作用。

    (a)三氧化硫-吡啶與裂褶多糖的質(zhì)量比和反應(yīng)溫度的響應(yīng)面圖

    2.2.3 實驗結(jié)果論證

    通過Design-Expert 8.0.6軟件分析得到的最優(yōu)條件為:三氧化硫-吡啶復(fù)合物與裂褶多糖的質(zhì)量比為4.12,反應(yīng)溫度為70.01 ℃,反應(yīng)時間為3.06 h,此時取代度最高,為1.87。考慮到實際操作,調(diào)整反應(yīng)條件為三氧化硫-吡啶復(fù)合物與裂褶多糖的質(zhì)量比為4,反應(yīng)溫度為70 ℃,反應(yīng)時間為3 h。在修正的最優(yōu)條件下進(jìn)行3次平行試驗,反應(yīng)產(chǎn)物的取代度為1.85±0.03,與理論值較吻合。

    2.3 SPG、S-SPG的組分分析

    在單因素和響應(yīng)面實驗結(jié)果的基礎(chǔ)上,采用三氧化硫-吡啶法制備了3種不同取代度的硫酸酯化裂褶多糖,分別命名為S-SPG1、S-SPG2、S-SPG3。S-SPG1、S-SPG2、S-SPG3和SPG理化性質(zhì)的測定結(jié)果如表4所示。SPG的總糖含量為79.68%,含有微量的蛋白。在經(jīng)過硫酸酯化后,S-SPG的總糖含量隨著硫酸基含量的升高而降低,S-SPG1的總糖含量最高,為80.86%,硫酸基含量最低,為28.90%。S-SPG的硫酸基含量最高,為50.69%,總糖含量最低,為40.62%。所有的S-SPG組分均未檢測出蛋白。

    表4 SPG、S-SPG硫酸基含量、取代度、總糖和蛋白含量測定2)Table 4 Determination of sulfate group content,degree of substitution,total sugar content,protein content for SPG and S-SPG

    2.4 紅外光譜分析

    圖3 SPG和S-SPG的紅外光譜譜圖

    2.5 掃描電鏡分析

    多糖經(jīng)化學(xué)修飾后,原有的空間結(jié)構(gòu)會遭到破壞,掃描電鏡可用來分析多糖在化學(xué)修飾前后表面形態(tài)的變化。裂褶多糖及硫酸酯化裂褶多糖的表面形態(tài)如圖4所示。裂褶多糖呈溝壑狀,其表面呈多孔網(wǎng)狀;經(jīng)過硫酸化后,裂褶多糖的表面形貌發(fā)生了變化。S-SPG1呈片狀,表面光滑且存在不規(guī)則的小孔;S-SPG2呈片狀,表面不光滑,存在較多不規(guī)則的突起;S-SPG3則呈表面粗糙片狀。隨著取代度的增大,在500 μm范圍內(nèi)的S-SPG1、S-SPG2、S-SPG3表面片狀結(jié)構(gòu)逐漸減小,在50 μm范圍內(nèi)S-SPG1、S-SPG2、S-SPG3表面突起逐漸增多。S-SPG的表面形態(tài)與SPG間的差別表明了硫酸酯化修飾改變了裂褶多糖的表面結(jié)構(gòu)。這與之前Wang等[19]和Jing等[20]的研究結(jié)果一致,即經(jīng)過硫酸化修飾,生姜多糖和人工蛹蟲草表面形貌發(fā)生了變化。

    (a)500 μm范圍內(nèi),SPG

    2.6 SPG、S-SPG2的13C NMR分析

    根據(jù)多糖的化學(xué)位移規(guī)律和相關(guān)文獻(xiàn)[21],在圖5(a)中,102.95、73.14、83.85、66.94、76.68、60.66處的信號峰對應(yīng)裂褶多糖β-(1→3)主鏈上的C1、C2、C3、C4、C5、C6;而103.27、74.09、67.73處則為β-(1→6)支鏈上的C1、C2、C4的信號峰,68.12處的小峰為主鏈上被支鏈取代的C6。研究表明,多糖羥基上的氫被硫酸基團(tuán)取代后,被取代的碳因與吸電子基團(tuán)(磺酰氧基)相連而向低場移動[22- 23]。與SPG相比,S-SPG2(見圖5(b))在60.00附近信號峰的消失表明C6位已經(jīng)發(fā)生了完全取代,69.13處的信號峰為C6被硫酸基團(tuán)取代所產(chǎn)生的。若C2上羥基中的氫被取代,C1的信號峰會存在分裂[23]。S-SPG2 的C1在100.75處顯示信號分裂,在78.85處的信號峰可以歸屬為C2發(fā)生取代產(chǎn)生的共振偏移峰,表明S-SPG2中的C2發(fā)生了少量取代[24]。

    (a)SPG

    2.7 抗凝血活性分析

    以0.025 g/L肝素鈉為陽性對照、0.9% NaCl為空白對照,通過APTT、TT、PT 3項凝血指標(biāo)來評價硫酸酯化對裂褶多糖抗凝血活性的影響。從 圖6 可以看出,空白對照組的APTT、TT、PT分別為(26.40±0.40)s、(12.85±0.05)s、(12.05±0.05)s,0.025 g/L肝素鈉的APTT((185.20±4.40)s)為空白對照的7.02倍,TT大于90 s,PT為(11.05±0.65)s。從圖6(a)中可以看出,SPG(0.5~4 g/L)對APTT和PT均沒有延長作用,而對TT有微弱的作用,但與質(zhì)量濃度無關(guān)。從圖6(b)-6(d)可以看出,S-SPG均以濃度依賴的形式對APTT、TT有明顯的延長作用。在質(zhì)量濃度為0.2 g/L時,S-SPG1、S-SPG2、S-SPG3的APTT分別為(76.40±1.70)s、(98.70±2.40)s和(184.35±1.55)s,TT分別為(43.85±3.95)s、(77.10±0.10)s、>90 s。裂褶多糖經(jīng)硫酸化后具有較強(qiáng)的抗凝血活性,但比肝素鈉的凝血活性弱,在APTT和TT試驗中需要更高的濃度才能達(dá)到肝素鈉的凝血效果。

    (a)SPG對APTT、TT、PT的影響

    裂褶多糖經(jīng)硫酸酯化后具有延長APTT、TT的活性,缺乏對PT的延長活性,表明S-SPG主要是通過內(nèi)源性凝血途徑來影響血漿的凝固過程,而非外源性凝血途徑[25- 26],這與其他硫酸化多糖的凝血途徑相似[27- 28]。Chaouch等[7]的抗凝血試驗表明硫酸酯化可顯著增強(qiáng)仙人掌果膠多糖的抗凝活性,且其通過延長APTT和TT來體現(xiàn)其抗凝活性。研究表明,硫酸酯化多糖的抗凝血活性與其取代度之間存在正相關(guān)關(guān)系,取代度高的多糖的抗凝血活性更好。在本實驗中,相較于S-SPG1(DS=0.70)和S-SPG2(DS=1.25),S-SPG3(DS=1.85)在APTT和TT試驗中展現(xiàn)出更好的抗凝血活性。在APTT、TT試驗中,取代度的增大能夠提高抗凝血活性,表明硫酸基含量是影響抗凝血活性的重要指標(biāo)。這可能是由于高取代度的硫酸改性多糖具有高負(fù)電荷密度,能夠與血漿中帶正電荷的氨基酸殘基結(jié)合,從而提高抗凝血活性[28]。

    3 結(jié)論

    本實驗通過三氧化硫-吡啶法制備硫酸酯化裂褶多糖。響應(yīng)面法優(yōu)化的最佳工藝條件為:三氧化硫-吡啶復(fù)合物與裂褶多糖的質(zhì)量比為4,反應(yīng)溫度為70 ℃,反應(yīng)時間為3 h。最佳工藝條件下制備的硫酸酯化裂褶多糖的取代度為1.85。FT-IR分析表明,S-SPG出現(xiàn)了與硫酸基團(tuán)相關(guān)的特征吸收峰,表明硫酸酯化是成功的;掃描電鏡的結(jié)果表明裂褶多糖經(jīng)硫酸酯化后,其表面形貌發(fā)生了變化;13C NMR的結(jié)果表明,S-SPG2的C6位發(fā)生了完全取代,C2位發(fā)生了部分取代;經(jīng)典凝血試驗的結(jié)果表明硫酸酯化能使裂褶多糖獲得較強(qiáng)的抗凝血活性,且取代度是影響抗凝血活性的重要因素;此外,S-SPG是通過抑制內(nèi)源性凝血過程來延長凝血時間的。因此,硫酸酯化裂褶多糖是一種很有前景的抗凝劑。該研究初步探究了硫酸酯化裂褶多糖的抗凝活性與取代度之間的關(guān)系,但硫酸酯化裂褶多糖抗凝活性的詳細(xì)機(jī)理還值得進(jìn)一步研究。

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