孟 爽,周 立,付 勤,夏 立,孟麗媛
上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)公共技術(shù)平臺(tái),上海 200025
環(huán)孢菌素A (cyclosporine A,CsA)、他克莫司(tacrolimus,TaC)、西羅莫司(sirolimus,SiR)、依維莫司(everolimus,EvE)是4 種常用的免疫抑制劑,已被成功應(yīng)用于臨床上肝、腎、肺等多種器官的移植[1-3]。然而,作為窄治療指數(shù)(narrow therapeutic index,NTI)藥物,其治療劑量與毒性劑量間的差別很?。?-6],因此免疫抑制劑的合理用藥需在臨床藥物監(jiān)測(cè)(therapeutic drug monitoring,TDM)的指導(dǎo)下進(jìn)行,以提高患者用藥的有效性和安全性[7-8]。此外,不同免疫抑制劑聯(lián)合使用時(shí),會(huì)產(chǎn)生協(xié)同效應(yīng),在臨床實(shí)踐中通常將它們合并使用以減少毒性和不良反應(yīng)[1,9]。除器官移植外,CsA 可負(fù)載到重組脂蛋白上用于治療顱腦損傷[10],EvE 可裝載至H-鐵蛋白納米籠上用于治療乳腺癌[11]等。因此,開發(fā)出可應(yīng)用于臨床檢測(cè),且能夠同時(shí)分析多種免疫抑制劑的定量檢測(cè)方法至關(guān)重要。目前,免疫抑制劑藥物的臨床監(jiān)測(cè)主要基于2 種方法——免疫熒光或比色檢測(cè)以及液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜(liquid chromatography-tandem mass spectrometry, LC-MS/MS)法[12-13]。同LC-MS/MS 法相比,盡管免疫分析方法快速且價(jià)格便宜,然而卻存在高交叉反應(yīng)性的干擾,使得檢測(cè)方法的特異性低,從而可能導(dǎo)致定量結(jié)果的高估[14-15]。已有很多報(bào)道闡述了LC-MS/MS 在免疫抑制劑定量檢測(cè)分析中的突出優(yōu)勢(shì)[16-19]。如Mei 等[16]使用LCMS/MS 法同時(shí)檢測(cè)了CsA 和TaC,其最低定量限(limit of quantitation,LOQ)分別為5.0 ng/mL 和0.2 ng/mL,并評(píng)估了化學(xué)發(fā)光微粒免疫法(chemiluminescence microparticle immunoassay,CMIA) 與LC-MS/MS 法的差異;Krná? 等[17]與Gong 等[18]開發(fā)了能夠同時(shí)檢測(cè)4 種常用免疫抑制劑的LC-MS/MS 方法(CsA 的LOQ 為5.0 ng/mL,SiR、TaC 和EvE 的LOQ 為0.5 ng/mL)。盡管上述報(bào)道能夠滿足免疫抑制劑應(yīng)用于臨床器官移植TDM 的一般需求,然而仍然需要開發(fā)更高靈敏度的方法以實(shí)現(xiàn)這4 種免疫抑制劑更廣泛的臨床應(yīng)用。
在LC-MS/MS 定量分析中,為了獲得更高的檢測(cè)靈敏度及準(zhǔn)確度,通常需要對(duì)色譜條件及質(zhì)譜參數(shù)進(jìn)行優(yōu)化。其中,流動(dòng)相及流動(dòng)相添加劑,如常用的甲酸(formic acid,F(xiàn)A)、乙酸、甲酸銨(ammonium formate,AF)、乙酸銨(ammonium acetate,AA)、氫氧化銨等的選擇能夠影響色譜峰分離度、峰形,并通過影響離子源中離子的形成從而影響檢測(cè)靈敏度[20-22],因此是影響定性及定量檢測(cè)的關(guān)鍵。電噴霧電離(electron spray ionization,ESI)是連接液相色譜和質(zhì)譜最廣泛使用的電離源,通過調(diào)整ESI 源參數(shù)設(shè)置,例如氣、溫度、電壓等,能夠影響化合物的電離效率及離子化碎片從而影響定性和定量結(jié)果[23-25]。盡管已有研究開始致力于更高靈敏度的方法開發(fā)(例如Bittersohl 等[26]使用LC-MS/MS 方法同時(shí)測(cè)定了腎移植患者中游離的CsA 和霉酚酸,其CsA 的檢測(cè)靈敏度明顯提升,LOQ 為0.1 ng/mL 等),至今還沒有研究通過系統(tǒng)評(píng)價(jià)并優(yōu)化色譜質(zhì)譜參數(shù),從而開發(fā)能夠簡(jiǎn)易有效地提高檢測(cè)靈敏度的方法。
本研究考察色譜條件及質(zhì)譜參數(shù)對(duì)免疫抑制劑定量結(jié)果的影響,包括流動(dòng)相的選擇、流動(dòng)相改性劑的添加及離子源參數(shù)的設(shè)置(包括氣、電壓、溫度等)。本研究旨在通過評(píng)估色譜條件及質(zhì)譜離子源參數(shù)對(duì)LC-MS/MS分析中分析物的電離和碎片化的影響,探索一種能夠簡(jiǎn)便地提高定量靈敏度的思路,助力LC-MS/MS 方法開發(fā)和優(yōu)化的有效進(jìn)行。
本實(shí)驗(yàn)所用的試劑均為商業(yè)化產(chǎn)品而非經(jīng)自行純化。色譜純乙腈購自德國Honeywell公司,色譜純甲醇購自美國Merck 公司,超純水由RephiLe 純水儀制備。質(zhì)譜純的FA 購自美國ThermoFisher Scientific 公司,色譜純的AF購自美國ALDRICH 公司,色譜純的AA 購自美國Fluka公司。CsA、TaC 及SiR 標(biāo)準(zhǔn)品購自加拿大的TRC 公司,EvE標(biāo)準(zhǔn)品購自加拿大TLC公司。
超高效液相色譜(ultra-high performance liquid chromatography,UPLC)系統(tǒng)為島津的LC-30A 系列,配有LC-30AD二元泵,SIL-30AC自動(dòng)進(jìn)樣器以及CTO-30A柱溫箱。質(zhì)譜系統(tǒng)為SCIEX 公司的QTRAP 6500 plus 系列,配有IonDrive Turbo V 離子源以及IonDrive 高能檢測(cè)器等。所有質(zhì)譜譜圖數(shù)據(jù)的處理采用質(zhì)譜儀自帶的Analyst 軟件(V1.7.0)以及定量軟件MultiQuant(V3.0)進(jìn)行分析。
1.3.1 色譜及質(zhì)譜方法的建立 采用多反應(yīng)監(jiān)測(cè)(multiple reaction monitoring,MRM)模式定量分析免疫抑制劑。首先,通過針泵推注直接進(jìn)樣法確定4種免疫抑制劑的母離子(precursor ion,Q1)和子離子(product ion,Q3)定量離子對(duì)(Q1/Q3)。具體方法為:使用甲醇分別配制CsA、TaC、SiR 及EvE 的標(biāo)準(zhǔn)品儲(chǔ)備液1 mg/mL,再用甲醇分別稀釋至5 μg/mL,經(jīng)針泵推注至質(zhì)譜儀。通過采集一級(jí)、二級(jí)質(zhì)譜信息,最終確定各自的定量離子對(duì)及相應(yīng)的碰撞能量等參數(shù)。色譜柱選用Waters公司的ACQUITY UPLC?BEH C18 (2.1 mm×100.0 mm,1.7 μm), 保護(hù)柱為 ACQUITY UPLC?BEH C18 VanGuardTMPre-Column (2.1 mm×50.0 mm,1.7 μm)。流動(dòng)相:A 為有機(jī)相,選擇甲醇或乙腈;B 為水相。為了改善色譜峰峰形、提高信號(hào)強(qiáng)度,流動(dòng)相均添加0.1%FA。洗脫梯度為:0~2 min,40% B;2~6 min,40% B→0 B;6~8 min,0 B;8~8.01 min,0 B→40% B;8.01~10 min,40% B。流速為0.5 mL/min,色譜柱溫度設(shè)置為50 ℃,自動(dòng)進(jìn)樣器溫度設(shè)置為4 ℃。
1.3.2 流動(dòng)相對(duì)其響應(yīng)的影響 為了考察流動(dòng)相對(duì)4種免疫抑制劑定量結(jié)果的影響,采用甲醇或乙腈作為有機(jī)相,并且使用含不同濃度緩沖鹽(AF 或AA,濃度為5、10或20 mmol/L)的水相體系,考察AF或AA 的添加對(duì)定量分析的影響??疾炝鲃?dòng)相的影響時(shí),質(zhì)譜條件選擇匹配0.5 mL/min的流速下常用的離子源參數(shù)設(shè)置:離子源電壓(ionSpray voltage,IS) 為5 500 V,離子源溫度(ion source temperature,TEM)為550 ℃,噴霧氣(ion source gas 1,Gas 1)為50 psi(1 psi=6.895 kPa),干燥氣(ion source gas 2,Gas 2) 為50 psi,氣簾氣(curtain gas,CUR)為35 psi,碰撞氣(collision gas,CAD)為低流速。
1.3.3 質(zhì)譜參數(shù)對(duì)其響應(yīng)的影響 為了考察質(zhì)譜離子源參數(shù)對(duì)4 種免疫抑制劑定量結(jié)果的影響,設(shè)置IS 分別為4 000、4 500、5 000、5 500 V;TEM 分別為150、200、250、300、350、400、450、500、550、600 ℃;CUR 分別為20、25、30、35、40、45 psi;Gas 1 分別為40、45、50、55、60、65 psi;Gas 2 分別為40、45、50、55、60、65 psi;CAD 分別為低、中、高流速。通過比較不同條件下4 種免疫抑制劑的峰形及峰面積,確定最佳的質(zhì)譜參數(shù)。
1.3.4 標(biāo)準(zhǔn)品溶液及標(biāo)準(zhǔn)曲線的配制 用甲醇配制濃度為100 ng/mL 的4 種免疫抑制劑標(biāo)準(zhǔn)品混合溶液,用以評(píng)估流動(dòng)相及離子源參數(shù)對(duì)于化合物色譜響應(yīng)的影響。用甲醇分別配制濃度為0.05、0.1、0.2、0.5、1、2、5、10 ng/mL 的CsA、TaC、SiR 和EvE 標(biāo)準(zhǔn)品溶液,置于4 ℃冰箱中備用。
1.3.5 結(jié)果分析 使用SCIEX 公司的定量軟件MultiQuant (V3.0) 對(duì)標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性及準(zhǔn)確度(accuracy)進(jìn)行分析。其中,準(zhǔn)確度表示標(biāo)準(zhǔn)曲線中各個(gè)樣品的理論濃度與實(shí)測(cè)濃度的接近程度,由MultiQuant(V3.0)軟件自動(dòng)計(jì)算(一般要求各標(biāo)準(zhǔn)品濃度點(diǎn)的準(zhǔn)確度在100%±15%范圍內(nèi),最低濃度點(diǎn)在100%±20%范圍內(nèi))。使用GraphPad Prism 6 軟件繪制質(zhì)譜參數(shù)對(duì)于免疫抑制劑色譜峰峰面積影響的折線圖。
采用MRM 正離子模式,對(duì)4 種免疫抑制劑進(jìn)行定量分析。為了確定免疫抑制劑的MRM 定量離子對(duì)信息,使用針泵直接推注標(biāo)準(zhǔn)品的進(jìn)樣方式,對(duì)4 種免疫抑制劑分別進(jìn)行一級(jí)、二級(jí)質(zhì)譜信息采集,從而獲取4 種免疫抑制劑的Q1 和Q3 碎片信息,并針對(duì)每個(gè)化合物分別優(yōu)化去簇電壓(declustering potential,DP)、碰撞能量(collision energy,CE)、碰撞室出口電壓(collision cell exit potential,CXP)等參數(shù),最終確定用于定量檢測(cè)的MRM 離子對(duì),結(jié)果見表1。該結(jié)果將用于后續(xù)建立LC-MS/MS 定量檢測(cè)方法。
表1 4種免疫抑制劑MRM方法參數(shù)Tab 1 Parameters of MRM method of four immunosuppressant drugs
不同有機(jī)相及緩沖鹽體系對(duì)免疫抑制劑定量檢測(cè)的影響主要通過峰寬和色譜峰響應(yīng)來評(píng)價(jià)(圖1)。結(jié)果表明,與乙腈相比,甲醇作為有機(jī)相能夠明顯減小峰寬、改善峰形。例如,有機(jī)相由乙腈更換為甲醇時(shí),CsA 色譜峰峰寬由0.70 min 縮短至0.31 min,TaC 色譜峰峰寬由0.93 min 縮短至0.61 min,且色譜峰峰形得到一定程度的改善。為了進(jìn)一步改善峰形、提高色譜峰響應(yīng),以甲醇(含0.1%FA)為有機(jī)相,在水相(含0.1%FA)中添加了5 mmol/L 的AF。結(jié)果發(fā)現(xiàn)AF 的添加能夠顯著提高色譜峰響應(yīng)并改善峰形。
圖1 4種免疫抑制劑在不同流動(dòng)相體系下色譜峰峰形及色譜響應(yīng)的比較Fig 1 Comparison of chromatographic peak shapes and chromatographic responses of four immunosuppressant drugs under different mobile phase systems
含不同濃度AF 及AA 的緩沖鹽體系對(duì)免疫抑制劑定量分析影響的結(jié)果見表2。同AA相比,含AF的流動(dòng)相體系下,色譜峰的響應(yīng)相對(duì)更高。此外,無論是AF 還是AA,隨著緩沖鹽濃度的增加,色譜峰信號(hào)并沒有進(jìn)一步提高。相反,高濃度緩沖鹽反而會(huì)一定程度抑制色譜峰響應(yīng)。因此,最終選擇在水相中添加5 mmol/L的AF開展后續(xù)的優(yōu)化實(shí)驗(yàn)。
表2 不同緩沖鹽體系對(duì)4種免疫抑制劑色譜峰的影響Tab 2 Influence of different buffer salt systems on the chromatographic peaks of four immunosuppressant drugs
優(yōu)化流動(dòng)相體系雖然能夠提高免疫抑制劑色譜峰響應(yīng),但色譜峰峰形仍有待優(yōu)化。為了改善峰形,提高定量的準(zhǔn)確性,分別優(yōu)化了IS、TEM、CUR、Gas 1、Gas 2、CAD 等離子源參數(shù)(圖2)。結(jié)果表明,隨著IS升高,免疫抑制劑色譜峰響應(yīng)逐漸增強(qiáng)(圖2A);TEM對(duì)免疫抑制劑色譜峰響應(yīng)影響顯著,在100~600 ℃的范圍內(nèi),隨著溫度的增加,色譜峰響應(yīng)呈現(xiàn)先增后減的趨勢(shì)(圖2B);隨著CUR 的增加,色譜峰響應(yīng)降低(圖2C);Gas 1 和Gas 2 對(duì)4 種免疫抑制劑響應(yīng)的影響并不明顯,在40~65 psi 的范圍內(nèi),色譜峰響應(yīng)幾乎不受影響(圖2D、E);CAD 對(duì)4 種免疫抑制劑響應(yīng)的影響趨勢(shì)不同,對(duì)SiR 和EvE 的影響較大,在CAD 低流速時(shí)為最優(yōu)(圖2F)。
圖2 質(zhì)譜離子源參數(shù)對(duì)4種免疫抑制劑色譜峰響應(yīng)的影響Fig 2 Influence of mass spectrometry ion source parameters on the chromatographic peak response of four immunosuppressant drugs
在質(zhì)譜離子源參數(shù)中,TEM 對(duì)4 種免疫抑制劑的色譜峰響應(yīng)影響最為明顯(圖2)。在500~600 ℃時(shí)(0.5 mL/min 流速下通常設(shè)置的TEM 范圍),4 種免疫抑制劑的色譜峰響應(yīng)反而最低。CsA、SiR、TaC 及EvE 的最優(yōu)TEM 范圍分別為150~200 ℃、200~250 ℃、250~300 ℃、200~250 ℃。對(duì)于CsA 來說,溫度的改變能夠造成色譜峰響應(yīng)值呈2~3 個(gè)數(shù)量級(jí)的變化(圖2B)。此外,溫度的改變對(duì)免疫抑制劑峰形的影響極大,隨著溫度的降低,色譜峰峰形得到明顯改善(圖3)。其中,CsA 的峰形變化尤為顯著:TEM 為500 ℃時(shí),色譜峰呈多分叉狀;溫度降低至300 ℃時(shí),色譜峰峰形得到一定程度的改善;而溫度降低至100~250 ℃時(shí),色譜峰呈平滑無分叉的對(duì)稱峰。
圖3 質(zhì)譜TEM對(duì)4種免疫抑制劑色譜峰峰形的影響Fig 3 Influence of mass spectrometry TEM on the chromatographic peak shape of four immunosuppressant drugs
為了進(jìn)一步確定TEM 對(duì)免疫抑制劑定量的影響,我們考察了不同TEM 設(shè)置(250 ℃和550 ℃)對(duì)4 種免疫抑制劑標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性及定量靈敏度LOQ 的影響。結(jié)果見圖4。250 ℃時(shí),4 種免疫抑制劑的標(biāo)準(zhǔn)曲線線性良好(圖4A),除EvE 外,r2均大于0.99,且定量準(zhǔn)確度高(85%~115%)。此外,4 種免疫抑制劑的LOQ 均能達(dá)到0.05 ng/mL[信噪比(signal-to-noise ratio,S/N)>10],遠(yuǎn)高于已有文獻(xiàn)報(bào)道[16-18,26],表明定量靈敏度得到顯著改善;而550 ℃時(shí),4 種免疫抑制劑的標(biāo)準(zhǔn)曲線線性相對(duì)較差且標(biāo)準(zhǔn)曲線各個(gè)濃度點(diǎn)的準(zhǔn)確度不能滿足85%~115%的可容忍范圍。此時(shí),相較于250 ℃,CsA 和SiR的濃度達(dá)到0.1 ng/mL 時(shí),才能滿足S/N>10,即定量靈敏度降低。因此,TEM 過高時(shí)(550 ℃)時(shí),4 種免疫抑制劑的定量靈敏度和準(zhǔn)確度均降低;TEM 對(duì)免疫抑制劑定量結(jié)果影響顯著,在方法優(yōu)化時(shí)不容忽視。綜上,在甲醇(含0.1% FA)-水(含0.1% FA 及5 mmol/L AF)的色譜條件下,免疫抑制劑定量分析方法的最優(yōu)質(zhì)譜離子源參數(shù)設(shè)置為:IS=5 500 V,TEM=250 ℃,CUR=20 psi,Gas 1=65 psi,Gas 2=45 psi,CAD=低流速。
圖4 TEM對(duì)4種免疫抑制劑標(biāo)準(zhǔn)曲線線性的影響Fig 4 Influence of TEM on the standard curve linearity of four immunosuppressant drugs
近幾年來,LC-MS/MS 作為定量檢測(cè)手段應(yīng)用于免疫抑制劑的分析已較為成熟。例如,Gong 等[18]開發(fā)了結(jié)合樣品前處理一步蛋白沉淀法的LC-MS/MS 分析方法,可實(shí)現(xiàn)樣品前處理的簡(jiǎn)單化、短時(shí)間梯度(7 min)以及較高靈敏度(CsA、SiR、TaC、EvE 的LOQ 分別為5.0、0.5、0.5、0.5 ng/mL)[18];Krná?等[17]進(jìn)一步縮短了洗脫梯度(3.5 min),從而提高了檢測(cè)效率等。盡管目前已經(jīng)有非常多的報(bào)道將LC-MS/MS 應(yīng)用于免疫抑制劑定量檢測(cè)項(xiàng)目中,然而免疫抑制劑定量檢測(cè)需要開發(fā)更高靈敏度的定量分析方法,且至今尚沒有報(bào)道系統(tǒng)評(píng)價(jià)色譜質(zhì)譜參數(shù)對(duì)免疫抑制劑定量分析的影響。Krná? 等[17]僅評(píng)價(jià)了流動(dòng)相中添加不同濃度的AF 對(duì)免疫抑制劑響應(yīng)的影響。本研究針對(duì)LC-MS/MS 方法中主要的參數(shù)進(jìn)行系統(tǒng)考察,包括流動(dòng)相、流動(dòng)相添加劑、IS、TEM、Gas 1、Gas 2、CAD 等。通過改變不同的參數(shù)設(shè)置,來系統(tǒng)評(píng)估并優(yōu)化免疫抑制劑定量分析的關(guān)鍵因素。
FA、AF 和AA 是常用的流動(dòng)相添加劑,較低濃度(≤0.05%體積分?jǐn)?shù))的FA 能夠增強(qiáng)大多數(shù)化合物在正離子模式下的質(zhì)譜響應(yīng)[16-18]。此外,在優(yōu)化色譜-質(zhì)譜方法時(shí),我們發(fā)現(xiàn)AF 或AA 的添加能夠明顯增強(qiáng)免疫抑制劑色譜峰響應(yīng);隨著緩沖鹽濃度的增加,色譜響應(yīng)反而受到抑制,這與流動(dòng)相PH 值及化合物本身的pKa 值有關(guān)[27]。在本研究中,TEM 是影響免疫抑制劑定量分析的最主要因素。對(duì)于ESI 離子源,其TEM 的設(shè)置在一定的范圍內(nèi)與流速呈正相關(guān)。例如,在0.4~0.5 mL/min的流速下,該色譜-質(zhì)譜體系匹配的TEM 通常為500~600 ℃。然而,對(duì)于免疫抑制劑來說,較高的TEM(500~600 ℃)能夠?qū)е路逍巫儾钋乙种粕V峰響應(yīng),隨溫度升高其抑制作用更為明顯,從而最終影響定量的準(zhǔn)確性。在200~300 ℃之間,4 種免疫抑制劑的色譜峰響應(yīng)最高(圖2),這與Gong等[18]的方法描述一致(TEM 為300 ℃)。除流速以外,ESI 的TEM 還與流動(dòng)相組成及化合物的特性相關(guān)。通常,TEM 升高能夠加快帶電液滴表面的溶劑揮發(fā),從而能夠更快地到達(dá)Rayleigh 極限,因此在相同時(shí)間內(nèi)能夠產(chǎn)生更多的氣相離子從而增加檢測(cè)的靈敏度。然而,當(dāng)有機(jī)相比例較高時(shí),相對(duì)較低的TEM 已經(jīng)足夠使得帶電液滴氣化[24]。由于CsA 等這4種免疫抑制劑水溶性差,其在高甲醇比例時(shí)出峰,因此可能僅需要較低的TEM 即可滿足氣化。
綜上所述,我們探究了CsA、SiR、TaC 以及EvE 4種免疫抑制劑在UPLC-MS/MS 定量分析中的主要色譜和質(zhì)譜參數(shù)對(duì)定量分析的影響,改善了免疫抑制劑定量檢測(cè)的靈敏度和準(zhǔn)確性。此外,也為其他化合物的質(zhì)譜定量方法開發(fā)和優(yōu)化提供了新的思路。
上海交通大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版)2021年11期