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    雙酚A 對豬腎細胞炎性因子表達及凋亡的影響

    2021-12-17 03:37:50汪序忠周曉龍楊松柏李向臣
    中國畜牧雜志 2021年12期

    周 羽,劉 媛,汪序忠,周曉龍,楊松柏,段 星,宋 丹*,李向臣

    (1.浙江農(nóng)林大學動物科技學院動物醫(yī)學院,浙江杭州 311300;2.浙江省畜禽綠色生態(tài)健康養(yǎng)殖應用技術(shù)研究重點實驗室,浙江杭州 311300;3.浙江省安吉振望農(nóng)牧科技有限公司,浙江湖州 313300)

    雙酚A(BPA)是環(huán)境內(nèi)分泌干擾物,也是一種重要的有機化工原料,已大量應用于生活塑料制品制造以及食品金屬包裝表面涂層等。BPA 的大量生產(chǎn)和廣泛應用也使得BPA 在環(huán)境中普遍存在。BPA 能夠通過消化道、呼吸道和皮膚吸收進入生物體體內(nèi)[1],通過與雌激素受體、雄激素受體、甲狀腺素受體等多種生物受體相互作用,進而干擾生殖系統(tǒng)、內(nèi)分泌系統(tǒng)、免疫系統(tǒng)、神經(jīng)系統(tǒng)、代謝功能,以及對后代的生長和發(fā)育造成健康危害[2]。已有研究證明BPA 有毒和嚴重的不確定副作用,可能是發(fā)展成乳腺癌、前列腺癌、卵巢癌、肺癌等癌癥的危險因素[3]。研究報道,環(huán)境中所含的BPA 能夠降低雄鼠的精子數(shù)量、活力,造成精子DNA 損傷[4]。子宮長期暴露于低劑量的BPA(1 μg/kg/day)會引起雌鼠成年時期輸卵管病變[5],高劑量的BPA(100mg/kg/day)會導致胚胎發(fā)育遲緩,發(fā)育不全[6]。美國食品和藥物管理局(FDA)確定5 mg/kg BPA 為未觀察到全身毒性副作用的適當水平。已證明,50 mg/kg 的BPA 是造成大鼠腎臟功能中度損傷的最低劑量,并且用于模擬職業(yè)工人所暴露的BPA 量[7]。此外,流行病學研究表明,在成年人和兒童尿液中高水平的BPA 與低度蛋白尿風險有關(guān),這也提醒人們注意日常生活中暴露于BPA 可能對腎臟產(chǎn)生不利影響,并可能導致終身累進性腎臟損傷[8]。

    目前對于BPA 的研究大部分集中在對動物和人體生殖系統(tǒng)的影響,對腎臟功能的研究較少,特別是對于豬腎臟損傷的研究尚未見報道。因此,本試驗以豬腎細胞(PK15)為試驗材料,檢測BPA 對細胞活力、凋亡、炎性因子表達以及ROS 含量的影響,探討B(tài)PA 在豬腎細胞的毒性作用,并揭示其引起腎損傷的可能作用機理,不僅為進一步了解BPA 暴露的毒性作用機理提供科學依據(jù),而且為評估和預防BPA 對豬機體的毒性作用提供參考,進而促進畜牧業(yè)的可持續(xù)發(fā)展。

    1 材料與方法

    1.1 主要試劑 雙酚A:純度>99.8%,購自上海阿拉丁生化科技股份有限公司;DMEM 高糖培養(yǎng)基、磷酸鹽緩沖液(PBS)購自美國Hyclone 公司;胎牛血清購自德國PAN-Biotech 公司;青鏈霉素雙抗購自北京CellMax 細胞技術(shù)有限公司;胰蛋白酶購自美國Gibco公司;DL2000 Plus DNA Marker 購自南京Vazyme 生物技術(shù)有限公司;二甲基亞砜(DMSO),多聚甲醛購自北京索萊寶科技有限公司;ROS 試劑盒購自美國Sigma 公司;Hoechst33258 細胞凋亡染色試劑盒購自上海碧云天生物技術(shù)有限公司;Trizol、反轉(zhuǎn)錄試劑盒、熒光定量PCR 試劑盒購自TaKaRa 公司。

    1.2 主要儀器 試驗儀器主要包括CO2細胞培養(yǎng)箱、全波長酶標儀、梯度PCR 熱循環(huán)儀、熒光定量 PCR 儀(Thermo Electron Corporation)、激光共聚焦熒光顯微鏡(Nikon)、超凈工作臺(青島海爾特種電器有限公司)、微量核酸蛋白濃度測定儀(杭州奧盛儀器有限公司)、臺式高速離心機(香港力康發(fā)展有限公司)、倒置相差顯微鏡(重慶奧特光學儀器有限責任公司)。

    1.3 細胞培養(yǎng) PK15 細胞在補充有10% 胎牛血清(FBS)和1%青霉素-鏈霉素的DMEM 高糖培養(yǎng)基,37℃、5% CO2恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。當細胞長滿時,將細胞培養(yǎng)于6 孔細胞培養(yǎng)板中,根據(jù)試驗設計進行BPA處理。

    1.4 細胞活力測定 細胞約以 1×105個/mL 濃度接入96孔板,待細胞融合度達到70%~80%,設置不同濃度的BPA (0、1、10、100、200、500 和1 000 μmol/L) 處理,然后設置不同時間梯度(0、2、4、6 h)處理,加入CCK-8 試劑孵育2 h,使用酶標儀讀取450 nm 吸光度,以測定細胞活力并確定最適BPA 處理濃度和處理時間。

    1.5 RNA 的提取、引物鑒定和qRT-PCR 分析 使用Trizol 試劑提取PK15 細胞中總RNA,使用TaKaRa反轉(zhuǎn)錄試劑盒將RNA 反轉(zhuǎn)錄為 cDNA。以所得cDNA為模板,利用內(nèi)參基因GAPDH 作為對照,進行PCR 擴增,瓊脂糖凝膠電泳檢測cDNA 質(zhì)量。使用10×EasyTaqPCR SuperMix 進行 PCR 反應,瓊脂糖凝膠電泳驗證炎性和凋亡相關(guān)基因的引物擴增條帶大小和特異性。所有引物退火溫度均調(diào)整為61℃,PCR 擴增條件為 95 ℃ 1 min;95 ℃ 10 s,61 ℃ 5 s,72 ℃ 15 s,40 個循環(huán);72℃ 5 min。根據(jù)TaKaRa 反轉(zhuǎn)錄試劑盒以及熒光定量PCR 試劑盒說明書混合反應體系,在熒光定量PCR 儀上進行基因表達分析。各基因引物序列見表1。

    表1 定量引物序列

    1.6 ROS 染色檢測 以2',7' -二氯二氫熒光素二乙酸酯(DCFH-DA)來評估ROS 含量。DCFH-DA 是一種細胞通透性非熒光探針,它在細胞內(nèi)去酯化,被ROS氧化后轉(zhuǎn)化為高度熒光的2',7'-二氯熒光素。PK15 細胞置于六孔板內(nèi)培養(yǎng),200 μmol/L 的BPA 處理6 h,10 μmol/L DCFH-DA 37℃暗箱孵育30 min,孵育后用PBS 反復清洗去除多余的染色液即可置于激光掃描共聚焦顯微鏡下觀察。

    1.7 Hoechst33258 染色 細胞以 1×105個/mL 濃度接入放有細胞爬片的6 孔板。當細胞融合度達到70%~80%時,用200 μmol/L BPA 處理試驗組6 h,對照組不做處理。處理后,用4%多聚甲醛室溫固定細胞10 min,去除固定液,PBS 反復清洗后加入0.5 mL Hoechst 染色液,染色5 min。去除染色液,PBS 反復清洗,加抗熒光淬滅封片液于載玻片上,封片,在激光共聚焦顯微鏡下觀察并拍照。

    1.8 統(tǒng)計分析 試驗數(shù)據(jù)以均數(shù)±標準誤表示。根據(jù)具體試驗,數(shù)據(jù)分析采用單因素方差(ANOVA)分析不同組間差異或?qū)W生t檢驗分析兩組之間的差異。使用Graphpad Prism 軟件繪制圖表。P<0.05 代表差異顯著,有統(tǒng)計學意義。

    2 結(jié)果

    2.1 BPA 對PK15 細胞活力的影響 用不同濃度的BPA處理PK15 細胞,CCK-8 檢測細胞活力如圖1-A 所示,隨著BPA 濃度的增加,細胞活力呈劑量依賴性降低。與對照組相比,當BPA 濃度大于等于200 μmol/L 時,PK15 細胞的活力下降(P<0.001)。然后設置不同的時間梯度),選用200 μmol/L BPA 處理PK15 細胞,結(jié)果如圖1-B 所示,隨著處理時間的延長,細胞活力越低,且在處理6 h 時降低(P<0.001)。

    圖1 BPA 對PK15 細胞活力的影響

    2.2 RNA 的提取及cDNA 的制備 使用Trizol 溶液提取PK15 細胞總RNA,利用微量核酸蛋白濃度測定儀測定RNA 濃度后進行瓊脂糖凝膠電泳分析,發(fā)現(xiàn)28S,18S 和5S 條帶均較清晰,且28S 最亮,5S 最淺(圖2-A)。隨后,將總RNA 反轉(zhuǎn)錄成cDNA,以獲得的cDNA 為模板利用內(nèi)參基因GAPDH進行PCR 擴增,結(jié)果顯示擴增條帶單一,且大小符合預期(圖2-B)。

    圖2 RNA 和cDNA 的瓊脂糖凝膠電泳

    2.3 普通PCR 驗證引物特異性 如圖3 所示,炎性相關(guān)因子基因的引物擴增條帶中總有一條大小符合預期,且條帶清晰而單一(圖3-A),凋亡相關(guān)基因的引物擴增條帶也符合預期(圖3-B)。

    圖3 引物驗證的瓊脂糖凝膠電泳

    2.4 BPA 對PK15 細胞中炎性相關(guān)基因表達的影響 如圖4 所示,與對照組相比,200 μmol/L BPA 處理PK15細胞6 h 后,炎性因子相關(guān)基因IL-8、IL-6、TNF-αmRNA 相對表達量升高(P<0.05),IL-1βmRNA 呈現(xiàn)上升趨勢(P>0.05)。

    圖4 BPA 對PK15 細胞中炎性相關(guān)基因表達的影響

    2.5 BPA 對PK15 細胞凋亡的影響 如圖5-A 所示,與對照組相比,BPA 處理后促凋亡基因Caspase3和BAXmRNA 相對表達量增加(P<0.01),抗凋亡基因BCL-2mRNA 相對表達量下降(P<0.01)。免疫熒光染色結(jié)果顯示,對照組中沒有明顯凋亡細胞,染色均勻,細胞呈現(xiàn)弱淡藍色熒光;而BPA 處理組中見具有凋亡特征的細胞,細胞核凝結(jié),且呈現(xiàn)強藍色熒光(圖5-B)。

    圖5 BPA 對PK15 細胞凋亡的影響

    2.6 BPA 對PK15 細胞中ROS 水平的影響 如圖6 所示,與對照組相比,BPA 處理組的ROS 熒光強度增強(P<0.001)。

    圖6 BPA 對PK15 細胞中ROS 水平的影響

    3 討 論

    BPA 是公認的環(huán)境污染物,對人和動物機體的生殖系統(tǒng)、胚胎發(fā)育、神經(jīng)系統(tǒng)、免疫系統(tǒng)等多方面均具有不利影響,對肝、腎、脾和肺等器官有嚴重的毒性作用,如BPA 誘導人體肝臟脂質(zhì)積累,促進非酒精性脂肪肝的發(fā)展[9]。低劑量BPA(0.1 μg/mL)能夠加重小鼠肺炎癥反應,導致免疫功能異常[10];高劑量BPA(400 mg/kg)大鼠脾臟組織中淋巴濾泡顯著減小,紅髓面積增大,白髓面積減小[11]。腎臟是動物機體重要的器官,維持整個機體的穩(wěn)態(tài),其功能單位腎元通過三層結(jié)構(gòu)的毛細血管壁,由腎小球濾過將血液和尿液中的雜質(zhì)和有害物質(zhì)排出體外,并通過重吸收以維持體液的體積和含量。所以一旦腎臟出現(xiàn)問題,機體內(nèi)的有毒物質(zhì)排不出去,有很大安全隱患。本試驗結(jié)果表明,高濃度的BPA 能夠顯著降低PK15 細胞活力,增加凋亡的細胞數(shù),促進炎性相關(guān)因子的表達以及增加細胞內(nèi)ROS 含量。這是關(guān)于BPA 對豬腎細胞損傷的首次報道,本研究提供了BPA 通過抑制細胞活力,增加細胞凋亡以及炎性反應來損害豬腎臟細胞的證據(jù)。

    Wang 等[12]研究指出,人類尿中BPA 的最低濃度高達5.56 μg/L,相當于24.35 nmol/L ;Jiao 等[13]選用0.4 mmol/L BPA 作用于大鼠小腸上皮細胞6 h 來模擬急性損傷??紤]到高水平BPA 可能對腎臟細胞產(chǎn)生的影響,本研究分別設置不同濃度和時間梯度的BPA 處理,通過CCK-8 檢測細胞活力發(fā)現(xiàn),BPA 濃度越高,處理時間越長,細胞活力則越低,這與BPA 暴露對小鼠腔前卵泡顆粒細胞、神經(jīng)干細胞、結(jié)腸上皮細胞和小腸上皮細胞的研究結(jié)果一致[13-14],即當BPA 暴露濃度超過100 μmol/L 時,細胞活力和增殖率顯著降低。因此本研究選用200 μmol/L BPA,處理6 h 用于后續(xù)試驗。

    在畜牧業(yè)生產(chǎn)中,飼養(yǎng)管理不當、病理因素和環(huán)境因素都有可能損傷體內(nèi)抗氧化防御系統(tǒng),誘導氧化應激。在正常條件下,生物體內(nèi)ROS 的產(chǎn)生和清除維持著一種動態(tài)平衡,這種平衡在不利條件下會受到干擾。過量的ROS 會干擾生物體內(nèi)氧化還原狀態(tài),引起氧化應激發(fā)生。研究表明,100 μmol/L BPA 暴露增加了胚泡內(nèi)ROS 含量,導致線粒體損傷,對豬胚胎發(fā)育具有不良影響[15]。BPA 可促進豬卵母細胞產(chǎn)生較高的ROS,抑制卵母細胞的減數(shù)分裂成熟,卵丘細胞擴張和功能障礙,以及卵母細胞凋亡[16]。本研究結(jié)果表明,BPA 顯著增強了ROS 染色熒光強度,即增加了ROS 產(chǎn)生,能夠誘導豬腎細胞發(fā)生氧化應激。

    腎臟疾病的病理類型多樣,多種慢性腎臟疾病的發(fā)生與發(fā)展均與氧化應激有關(guān),因此炎癥調(diào)節(jié)是腎臟疾病治療發(fā)展的關(guān)鍵之一[17]。ROS 升高被認為是炎性反應的標志,其通過誘導多種炎性介質(zhì)和促炎細胞因子的分泌來啟動炎性反應[18]。TNF-α、IL-6、IL-8 和IL-1β是最常見的炎癥檢測標志物。IL-6 是一種促炎細胞因子,具有支持機體多種慢性炎性反應、誘導急性期反應等功能。IL-6 刺激NK-κB 配體受體活化因子會導致骨吸收和骨質(zhì)疏松,誘導血管內(nèi)皮生長因子產(chǎn)生,導致血管生成和血管通透性增加,出現(xiàn)炎癥病變[19]。TNF-α是一種參與機體全身性炎癥反應的細胞信號蛋白,是炎癥反應的關(guān)鍵調(diào)節(jié)劑[20];IL-8 也是一種有效的促炎趨化因子,IL-8 和TNF-α水平的升高與各種疾病的成年患者的急性腎損傷有關(guān)[21]。BPA 暴露可干擾免疫功能,結(jié)合PK15 細胞中一些關(guān)鍵促炎因子IL-6、IL-8、TNF-αmRNA 相對表達量顯著上調(diào),推斷BPA 可能通過細胞內(nèi)ROS 積累增加而誘導PK15 細胞發(fā)生炎性反應。

    有證據(jù)表明,ROS 含量增加可能作為第二信使上調(diào)促凋亡基因的表達,激活天冬氨酸特異性半胱氨酸蛋白酶(Caspase),誘導細胞凋亡[22]。線粒體外膜上的BAX 和BCL-2 二聚體的形成,引起線粒體外膜通透性的改變[23]。當線粒體受損時,Caspase 激活并參與隨后的水解反應,導致細胞凋亡。而且炎癥過度可能誤導細胞激活線粒體凋亡通路,導致細胞凋亡[24]。Yuan 等[25]使 用1、10、100、1 000 μmol/L 的BPA 處理恒河猴胚胎腎上皮細胞,發(fā)現(xiàn)BPA 引起ROS 水平上升,誘發(fā)氧化應激,進而參與細胞凋亡。一致地,本研究結(jié)果顯示,BPA 處理的細胞中促凋亡基因Caspase3和BAX表達顯著增加,抗凋亡基因BCL-2表達顯著降低。Hoechest33258 染色顯示BPA 顯著增加了凋亡細胞數(shù)量,充分證實BPA 可誘導細胞凋亡。綜上表明,BPA 誘導的PK15 細胞炎性因子表達上升以及細胞凋亡可能與ROS 含量上升導致的氧化應激增強有著密不可分的關(guān)系。

    4 結(jié) 論

    本試驗結(jié)果表明,高濃度的BPA(200 μmol/L)顯著降低PK15 豬腎細胞活力,并且呈現(xiàn)一定濃度和時間依賴性,增加細胞內(nèi)ROS 含量,誘導細胞凋亡和炎性反應。

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