馬瑞雪,張綦慧
急性缺血性腦卒中(acute ischemic stroke,AIS)是一種由于各種原因突然引起腦內(nèi)血液供應障礙,最終導致腦組織出現(xiàn)缺血缺氧壞死并迅速影響神經(jīng)功能的腦血管疾?。?]。《中國腦卒中防治報告2019》指出,近年我國急性腦卒中的發(fā)生率呈暴發(fā)式上升,是造成我國成年人殘疾、死亡的首要疾?。?]。AIS患者常屬于血瘀毒損證,而苦碟子注射液是治療該證的代表藥物之一,其具有活血止痛、清熱化瘀的功效[3]?;颊甙l(fā)生AIS后無論是否及時實現(xiàn)血管再通,其腦功能均會受到一定損傷,即腦缺血再灌注損傷,而苦碟子注射液可以對腦缺血再灌注損傷起到一定保護作用[4-5],具有極高的臨床意義。本研究通過構(gòu)建AIS后腦缺血再灌注損傷血瘀毒損證模型大鼠,觀察苦碟子注射液預處理對其神經(jīng)功能及海馬神經(jīng)元的影響,以期揭示苦碟子注射液預處理治療AIS后腦缺血再灌注損傷血瘀毒損證的最佳起效時間。
1.1 實驗時間 本實驗時間為2020年10月至2021年2月。
1.2 實驗動物 64只SPF級成年雄性Wistar大鼠〔實驗動物生產(chǎn)許可證號:SCXK(京)2016-0006〕由北京維通利華公司提供,體質(zhì)量230~250 g,適應性飼養(yǎng)3 d,飼養(yǎng)條件嚴格按照北京中醫(yī)藥大學東方醫(yī)院SPF級實驗動物中心標準執(zhí)行,飼養(yǎng)溫度21~25 ℃,濕度40%~70%,自由攝食飲水。本研究已獲得北京中醫(yī)藥大學東方醫(yī)院動物倫理委員會批準(202016)。實驗過程中對實驗動物的處理符合實驗動物3R原則。
1.3 主要藥物及試劑 苦碟子注射液(購自通化華夏藥業(yè)有限公司,國藥準字Z20025450,規(guī)格:10 ml×10支),多聚甲醛溶液(購自北京索萊寶科技有限公司,P1110-500),戊二醛溶液(購自北京索萊寶科技有限公司,P1126-100),角叉菜膠(購自上海源葉生物科技有限公司,S30559-100),大腦中動脈閉塞(middle cerebral artery occlusion,MCAO)線栓(購自北京西濃科技有限公司,2634A4,規(guī)格:0.34 mm)。
1.4 主要儀器 4 ℃低溫冰箱(購自青島海爾冰箱股份有限公司,HXC-106),超薄切片機(購自德國LEICA公司,UC7),光學顯微鏡(購自德國LEICA公司,DP72-SET),透射電鏡(購自日本Hitachi公司,H-7650)。
1.5 實驗方法
1.5.1 實驗分組及干預措施 采用隨機數(shù)字表法將大鼠分為假手術(shù)組、模型組和治療組,每組18只,余10只備用。治療組構(gòu)建AIS后腦缺血再灌注損傷血瘀毒損證模型,術(shù)前7 d開始腹腔注射苦碟子注射液8.4 g?kg-1?d-1至手術(shù)當天,術(shù)前腹腔注射角叉菜膠3 d至術(shù)前24 h,1次/d。模型組構(gòu)建AIS后腦缺血再灌注損傷血瘀毒損證模型,術(shù)前7 d開始腹腔注射等體積0.9%氯化鈉溶液至手術(shù)當天,術(shù)前腹腔注射角叉菜膠3 d至術(shù)前24 h,1次/d。假手術(shù)組不構(gòu)建AIS后腦缺血再灌注損傷血瘀毒損證模型,只給予術(shù)前麻醉,分離頸部血管,不結(jié)扎和插入MCAO線栓。
1.5.2 AIS后腦缺血再灌注損傷血瘀毒損證模型構(gòu)建方法 通過腹腔注射角叉菜膠制備血瘀毒損證模型[6]:采用0.9%氯化鈉溶液將角叉菜膠配成4%的濃度,治療組、模型組大鼠以20 mg/kg腹腔注射,1次/d,連續(xù)3 d。以爪甲腫脹紅紫、出現(xiàn)黑尾現(xiàn)象、體溫呈增高趨勢為血瘀毒損證模型構(gòu)建成功。末次注射角叉菜膠后正常飼養(yǎng)24 h,參照Longa改良法[7]構(gòu)建MCAO模型,即AIS后腦缺血再灌注損傷模型:術(shù)前12 h禁食不禁水。采用10%水合氯醛溶液以400 mg/kg腹腔注射來麻醉大鼠,大鼠仰臥位固定、消毒、備皮,沿頸部正中線切開皮膚,逐層鈍性分離頸部肌肉組織,充分暴露并分離左側(cè)頸總動脈(common carotid artery,CCA)、頸外動脈(external carotid artery,ECA)和頸內(nèi)動脈(internal carotid artery,ICA),置線備用。用動脈夾夾閉CCA、ICA,結(jié)扎ECA近心端及遠心端,中間剪斷。將ECA游離端拉至與ICA成一條直線,由ECA插入MCAO線栓,打開ICA處動脈夾,將MCAO線栓插入ICA并繼續(xù)插入顱內(nèi)至微感阻力,插入深度為(18.5±0.5)mm,使MCAO線栓頭端通過大腦中動脈(middle cerebral artery,MCA)起始處,以阻塞左側(cè)MCA的血液供應,結(jié)扎ICA以固定MCAO線栓和防止出血,打開CCA處動脈夾,逐層縫合,留1 cm MCAO線栓殘端于皮外。術(shù)后1 h拔出MCAO栓線以再灌注。采用Zea Longa評分評估大鼠神經(jīng)功能缺損情況,1~4分為造模成功,由于神經(jīng)功能缺損評分為4分的大鼠腦缺血再灌注損傷較重,故選擇神經(jīng)功能缺損評分為1~3分的大鼠進行后續(xù)取材。將實驗過程中未達到取材時間而死亡的大鼠剔除(共8只),并進行補充造模,其中模型組補充造模5只,治療組補充造模3只。
1.6 觀察指標
1.6.1 癥狀、體征 觀察各組大鼠整個實驗過程中的癥狀、體征,包括皮毛顏色、爪甲顏色、精神狀態(tài)、行為能力。
1.6.2 Zea Longa評分 分別于造模后1、3、6、24、72 h及7 d選取各組大鼠4只,評估其Zea Longa評分以觀察其神經(jīng)功能缺損情況。0分:無神經(jīng)功能缺損癥狀;1分:存在輕度神經(jīng)功能缺損,對側(cè)前肢不能完全伸展;2分:存在中度神經(jīng)功能缺損,行走時向?qū)?cè)轉(zhuǎn)圈;3分:存在嚴重神經(jīng)功能不全,走路時向?qū)?cè)傾倒;4分:意識喪失,無法自發(fā)行走。Zea Longa評分越高表示大鼠神經(jīng)功能缺損越嚴重。
1.6.3 海馬神經(jīng)元形態(tài)及超微結(jié)構(gòu) 分別于造模后1、3、6、24、72 h及7 d選取各組大鼠3只,采用10%水合氯醛以400 mg/kg腹腔注射來麻醉大鼠,剪開胸腹腔,暴露心臟,用9#針頭穿刺左心室至主動脈,用止血鉗夾閉固定針頭,剪開右心耳,用37 ℃、0.9%氯化鈉溶液200 ml+12 500 U肝素鈉快速灌洗全身血液至右心耳流出無色透明液體,再用4%多聚甲醛溶液緩慢灌洗及固定腦組織和身體,待大鼠僵硬后,迅速斷頭取腦。取出大腦后在冰上分離出患側(cè)海馬區(qū),將其切成1 mm3,置于2.5%戊二醛溶液中2 h,置于磷酸鹽緩沖液中10 min,每隔10 min更換磷酸鹽緩沖液1次,連續(xù)更換2次后置于4 ℃低溫冰箱中保存?zhèn)溆?。取出樣本后?%鋨酸固定2 h,梯度乙醇脫水,丙酮置換,經(jīng)Epon812環(huán)氧樹脂包埋、體視顯微鏡下修塊、天青-美藍染色后,于光學顯微鏡下定位,采用超薄切片機切片(厚度為50~60 nm),進行醋酸鈾和檸檬酸鉛雙重電子染色,置于透射電鏡下觀察切片上海馬神經(jīng)元形態(tài)及超微結(jié)構(gòu)。
1.7 統(tǒng)計學方法 采用SPSS 25.0軟件進行統(tǒng)計學分析。計量資料以(±s)表示,組間比較采用兩獨立樣本t檢驗。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 癥狀、體征 假手術(shù)組大鼠毛發(fā)富有色澤,活動靈活,四肢對稱,正常進食;模型組大鼠隨著造模時間的延長,逐漸出現(xiàn)皮毛粗糙發(fā)黃,呈倒立針刺狀,爪甲腫脹,鼠尾黑紫甚至出現(xiàn)斷尾,易激惹,活動受限,輕者右側(cè)肢體伸展不全,中重度者活動轉(zhuǎn)圈或向右側(cè)傾倒,以造模后24、72 h時最為明顯;治療組大鼠皮毛無光澤,爪甲腫脹及黑尾、斷尾程度較模型組減輕,活動輕微受限,四肢稍顯不對稱,但仍差于假手術(shù)組。
2.2 Zea Longa評分 假手術(shù)組大鼠Zea Longa評分均為0分。模型組和治療組大鼠造模后1、3、6 h Zea Longa評分比較,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05);治療組大鼠造模后24 h、72 h、7 d Zea Longa評分低于模型組,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。模型組大鼠造模后24 h、72 h、7 d Zea Longa評分高于本組造模后1 h,造模后72 h、7 d Zea Longa評分高于本組造模后3、6 h,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05);治療組大鼠造模后7 d Zea Longa評分高于本組造模后1 h,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),見表1。
表1 各組大鼠不同時間點Zea Longa評分比較(±s,分,n=4)Table 1 Comparison of Zea Longa score in each group at different time points
表1 各組大鼠不同時間點Zea Longa評分比較(±s,分,n=4)Table 1 Comparison of Zea Longa score in each group at different time points
注:a表示與本組造模后1 h比較,P<0.05;b表示與本組造模后3 h比較,P<0.05;c表示與本組造模后6 h比較,P<0.05
組別 造模后1 h 造模后3 h 造模后6 h 造模后24 h 造模后72 h 造模后7 d模型組 1.50±0.58 2.00±0.82 2.25±0.50 2.75±0.50a 3.25±0.50abc 3.25±0.50abc治療組 1.25±0.50 1.50±0.58 1.75±0.50 1.50±0.58 2.00±0.82 2.25±0.50a t值 0.655 1.000 1.414 3.273 2.611 2.828 P值 0.537 0.356 0.207 0.017 0.040 0.030
2.3 海馬神經(jīng)元形態(tài)及超微結(jié)構(gòu) 假手術(shù)組大鼠海馬神經(jīng)元結(jié)構(gòu)完整,細胞核大而圓,核膜清晰,呈雙層結(jié)構(gòu),可見核孔,核液中常染色質(zhì)均勻分布,異染色質(zhì)少,電子密度較低,胞質(zhì)中可見豐富、結(jié)構(gòu)完整的細胞器,核糖體廣泛分布,見圖1A。
模型組大鼠造模后6 h海馬神經(jīng)元體積縮小,核膜皺縮,異染色質(zhì)增多,隨著時間的延長,異染色質(zhì)逐漸匯聚成塊并聚集在核膜周圍,線粒體結(jié)構(gòu)松散,粗面內(nèi)質(zhì)網(wǎng)囊性變、脫顆粒、斷裂,游離核糖體減少,溶酶體結(jié)構(gòu)完整;造模后24、72 h可見細胞核破碎,核膜不完整甚至消失,細胞器大量減少,線粒體腫脹、嵴斷裂,甚至出現(xiàn)空泡、脫顆粒狀態(tài),高爾基體和粗面內(nèi)質(zhì)網(wǎng)囊性擴張、腫脹,脂褐素增加;造模后7 d可見神經(jīng)元大量減少,形態(tài)不規(guī)則,細胞器結(jié)構(gòu)破壞嚴重,線粒體呈空泡狀態(tài),見圖1B~1G。
治療組大鼠造模后6 h海馬神經(jīng)元與模型組相比細胞膜完整,常染色質(zhì)均勻,電子密度較低,細胞器增多,細胞器結(jié)構(gòu)輕度改變,空泡明顯減少;造模后72 h可見細胞核深染,線粒體腫脹程度減輕,嵴結(jié)構(gòu)存在,高爾基體、粗面內(nèi)質(zhì)網(wǎng)形態(tài)較好,空泡減少甚至消失,各細胞器結(jié)構(gòu)狀態(tài)明顯好于同期模型組,見圖1H~1M。
圖1 各組大鼠患側(cè)海馬神經(jīng)元形態(tài)及超微結(jié)構(gòu)(×1 500)Figure 1 Morphology and ultrastructure of hippocampal neurons on the affected side of rats in each group
AIS屬于中醫(yī)學中的“中風”范疇,臨床患者以面色晦暗、肌膚甲錯、痰黃、脈疾、舌紅、苔黃膩等中醫(yī)四診信息較為常見[8]。成年人首次發(fā)病后,隨著時間的推移,1年內(nèi)腦卒中復發(fā)率高達14.7%,近年來腦卒中發(fā)病率和死亡率也逐年增長[2]。張錦等[9]、王永炎[10]指出,“毒損腦絡”是AIS的基本病機,中風后血瘀、火熱、痰濕等病理產(chǎn)物與毒邪交織相夾、郁積日久形成瘀毒、火毒、痰毒,共同侵襲、損傷腦絡,是中風病程發(fā)展、病情轉(zhuǎn)變的重要結(jié)點。隨著發(fā)病時間的延長,腦絡損傷加重,會引起一系列神經(jīng)功能缺損癥狀,包括認知障礙,而海馬是學習、記憶等神經(jīng)功能的映射區(qū)域,是易受腦缺血后損傷累及的腦區(qū),AIS發(fā)生后可導致海馬變形[11]。線粒體能夠為細胞供能,對損傷極為敏感,其腫脹程度可以反映神經(jīng)元的損傷程度,因此通過觀察海馬神經(jīng)元形態(tài)及超微結(jié)構(gòu)的變化研究保護海馬神經(jīng)元對抑制AIS后腦缺血再灌注損傷具有重要作用。張伯禮等[12]研究表明,苦碟子注射液能夠降低中風的致殘率、病死率,提高患者的生存質(zhì)量。亦有Meta分析發(fā)現(xiàn),苦碟子注射液的臨床治療有效率優(yōu)于其他常規(guī)用藥[13]。但苦碟子注射液治療AIS后腦缺血再灌注損傷血瘀毒損證的最佳起效時間點尚未見報道,本研究構(gòu)建AIS后腦缺血再灌注損傷血瘀毒損證模型大鼠,觀察苦碟子注射液預處理對其神經(jīng)功能及海馬神經(jīng)元的影響。
本研究結(jié)果顯示,假手術(shù)組大鼠活動靈活,四肢對稱;模型組大鼠隨著造模時間的延長,逐漸出現(xiàn)爪甲腫脹,鼠尾黑紫甚至出現(xiàn)斷尾,易激惹,活動受限;治療組大鼠爪甲腫脹及黑尾、斷尾程度較模型組減輕,活動輕微受限,四肢稍顯不對稱;提示苦碟子注射液預處理能夠減輕AIS后腦缺血再灌注損傷血瘀毒損證模型大鼠的缺血性損傷表現(xiàn)。治療組大鼠造模后24 h、72 h、7 d Zea Longa評分低于模型組;模型組大鼠造模后24 h、72 h、7 d Zea Longa評分高于本組造模后1 h,造模后72 h、7 d Zea Longa評分高于本組造模后3、6 h;治療組大鼠造模后7 d Zea Longa評分高于本組造模后1 h;從行為學角度證實了苦碟子注射液預處理能夠改善AIS后腦缺血再灌注損傷血瘀毒損證模型大鼠的神經(jīng)功能,且其最佳起效時間可能為24、72 h。模型組大鼠造模后6 h海馬神經(jīng)元體積縮小;造模后24、72 h可見細胞核破碎,細胞器大量減少,線粒體腫脹,高爾基體和粗面內(nèi)質(zhì)網(wǎng)囊性擴張、腫脹;造模后7 d可見神經(jīng)元大量減少,形態(tài)不規(guī)則,細胞器結(jié)構(gòu)破壞嚴重,線粒體呈空泡狀態(tài)。治療組大鼠造模后6 h海馬神經(jīng)元與模型組相比細胞器增多,細胞器結(jié)構(gòu)輕度改變;造模后72 h可見線粒體腫脹程度減輕,高爾基體、粗面內(nèi)質(zhì)網(wǎng)形態(tài)較好,空泡減少甚至消失,各細胞器結(jié)構(gòu)狀態(tài)明顯好于同期模型組。提示模型組和治療組大鼠海馬神經(jīng)元較假手術(shù)組出現(xiàn)不同程度的損傷,從形態(tài)學角度證實苦碟子注射液預處理能夠在一定程度上改善AIS后腦缺血再灌注損傷血瘀毒損證模型大鼠的海馬神經(jīng)元損傷情況,且其最佳起效時間為6~72 h。而從行為學與形態(tài)學角度確定的苦碟子注射液預處理的最佳起效時間存在差異,可能與海馬相較軀體癥狀而言對神經(jīng)功能缺損更加敏感有關(guān)?,F(xiàn)代藥理研究表明,苦碟子注射液可增加纖溶酶活性、抑制血栓形成、增加腦血流量[14];而既往研究表明,腦缺血再灌注損傷過程中神經(jīng)環(huán)路信息傳遞出現(xiàn)障礙[15-17]。本研究結(jié)果在與既往動物實驗結(jié)果[18]一致的基礎(chǔ)上,以優(yōu)先保護組織形態(tài)學改變?yōu)樵瓌t,進一步明確了造模后6~72 h可能為改善神經(jīng)功能缺損的最佳時間點,推測可能與某種神經(jīng)傳導信號通路有關(guān)。
本研究尚存在一定局限性:本研究樣本量較小,結(jié)果可能存在偏倚,需進一步擴大樣本量加以驗證;此外,本研究雖明確了苦碟子注射液預處理能早期抑制腦缺血級聯(lián)反應損傷并有效減輕腦損傷、維持神經(jīng)元的形態(tài)與功能,但仍未確定苦碟子注射液預處理治療AIS后腦缺血再灌注損傷血瘀毒損證模型大鼠的具體作用靶點,這也是未來的研究方向。
綜上所述,苦碟子注射液預處理可以減輕AIS后腦缺血再灌注損傷血瘀毒損證模型大鼠的神經(jīng)功能缺損情況,抑制大鼠患側(cè)海馬神經(jīng)元形態(tài)及超微結(jié)構(gòu)的改變,對腦組織具有一定的保護作用,且在造模后6~72 h的作用最明顯,為臨床上使用苦碟子注射液治療AIS后腦缺血再灌注損傷血瘀毒損證患者提供了一定的實驗依據(jù)和臨床切入點。
作者貢獻:馬瑞雪、張綦慧進行研究方案設(shè)計與可行性分析;馬瑞雪進行動物實驗、數(shù)據(jù)收集、整理和分析,撰寫與修訂論文;張綦慧進行質(zhì)量控制與審校,并對文章整體負責、監(jiān)督管理。
本文無利益沖突。