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    淡豆豉發(fā)酵制備過程異黃酮變化規(guī)律研究△

    2021-12-01 01:57:12趙佳琪王滿元陳紅王思齊張海碩付予劼
    中國現(xiàn)代中藥 2021年10期
    關(guān)鍵詞:質(zhì)量

    趙佳琪,王滿元*,陳紅,王思齊,張海碩,付予劼

    1.首都醫(yī)科大學(xué) 中醫(yī)藥學(xué)院,北京 100069;2.中醫(yī)絡(luò)病研究北京市重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京 100069

    淡豆豉是一味藥用歷史悠久、臨床應(yīng)用廣泛的發(fā)酵炮制類中藥,《中華人民共和國藥典》(以下簡稱《中國藥典》)2020 年版規(guī)定其原料為豆科植物大豆Glycine max(L.)Merr.的干燥成熟種子(黑豆)[1],并新增含量測定項(xiàng),要求本品按干燥品計算,含大豆苷元(daidzein,DAE)和染料木素(genistein,GEE)的總質(zhì)量分?jǐn)?shù)不得少于0.040%。淡豆豉的炮制過程中既存在大豆異黃酮(soybean isoflavone,SIF)苷類向苷元類的轉(zhuǎn)化[2-3],也會發(fā)生苷元類物質(zhì)的破壞[4]。新增含量測定項(xiàng)的目的在于以SIF類物質(zhì)發(fā)酵終產(chǎn)物的含量評價淡豆豉的質(zhì)量。歷代醫(yī)家均以“發(fā)透”作為淡豆豉的質(zhì)量評價標(biāo)準(zhǔn)[5]。但《中國藥典》2020 年版淡豆豉含量測定項(xiàng)標(biāo)準(zhǔn)較低,雖然能夠有效區(qū)分淡豆豉的真?zhèn)蝃6],但不能有效區(qū)分“發(fā)不透(不及)”“發(fā)透(適中)”與“發(fā)過(太過)”的樣品,尚不足以評價淡豆豉的優(yōu)劣,需要進(jìn)一步明確發(fā)酵過程中SIF 變化規(guī)律,為提高淡豆豉質(zhì)量控制標(biāo)準(zhǔn)提供科學(xué)依據(jù)。

    天然的SIF 包 括DAE、GEE、黃豆黃素(glycitein,GLE)3 種苷元及這3 種苷元各自的葡萄糖苷、乙?;咸烟擒蘸捅;咸烟擒誟7]。SIF類物質(zhì)最簡便的定量方法為比色法,但輔料中的黃酮、香豆素等酚酸類成分會干擾比色法測定的結(jié)果。同時定量12個SIF的方法最為準(zhǔn)確,但部分對照品不易得,導(dǎo)致該方法推廣較困難[8]。因此,本研究采用紫外-可見分光光度法測定發(fā)酵原料中SIF 類物質(zhì)含量;采用高效液相色譜法(HPLC)同時定量原料及不同發(fā)酵階段樣品中的9 個SIF,以丙二?;蠖管眨╩alonyldaidzin,MDA)、丙二酰基染料木苷(malonylgenistin,MGE)、乙酰基黃豆黃苷(acetylglycitin,AGL)為丙二?;鸵阴;咸烟擒盏拇恚骄縎IF 類物質(zhì)在淡豆豉制備過程中的變化規(guī)律,為優(yōu)化淡豆豉制備工藝、提升其質(zhì)量控制水平提供參考。

    1 材料

    HWS-150B 型恒溫恒濕箱(天津市泰斯特儀器有限公司);DFY-200C 型粉碎機(jī)(溫嶺市林大機(jī)械有限公司);DV215CD 型電子分析天平(奧豪斯儀器有限公司);KQ-500E型超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司);UV-2450 型紫外-可見分光光度計、LC-20A 型高效液相色譜儀(包含LC-20AT 泵、SIL-20A 型恒溫自動進(jìn)樣器、CTO-20A 型柱溫箱、SPD-M20A 型檢測器、LC solution 型色譜工作站)均購于日本島津公司。

    對照品MDA(批號:PS010932,純度>95.0%)、MGE(批號:PS010924,純度>98.0%)均購自成都普思生物科技有限公司;AGL(批號:P20J9F66220,純度>98.0%,上海源葉生物科技有限公司);大豆苷(daidzin,DAI,批號:11738-201302,純度:91.3%,中國食品藥品檢定研究院);DAE、黃豆黃苷(glycitin,GLI)、染料木苷(genistin,GEI)、GEE(批號分別為G1514019、C1911183、F1827120、H1631055,純度均≥98.0%,Aladdin 公司);GLE(批號:BCBP9034V,純度≥98.0%,美國Sigma 公司);乙腈(色譜純,美國Fisher 公司);甲醇、冰乙酸(分析純,北京化工廠);娃哈哈純凈水。

    雄黑豆、馬料豆、青蒿、桑葉均購自河北省安國市百草康商貿(mào)有限公司,批號分別為20191113、20191113、20191120、20200215,經(jīng)首都醫(yī)科大學(xué)中醫(yī)藥學(xué)院王滿元教授鑒定為正品。其中雄黑豆、馬料豆均為豆科植物大豆Glycine max(L.)Merr.的干燥成熟種子,青蒿為菊科植物黃花蒿Artemisia annuaL.的干燥地上部分,桑葉為??浦参锷orus albaL.的干燥葉。

    2 方法

    2.1 淡豆豉的發(fā)酵炮制

    參考《中國藥典》2020 年版制法,并結(jié)合本課題組發(fā)酵經(jīng)驗(yàn)制備淡豆豉:挑選出光滑飽滿、無裂紋、不皺縮的馬料豆,洗凈。另取桑葉、青蒿各100 g,加入10 倍量水煎煮0.5 h,用8 層紗布濾過,藥渣加6 倍量水再煎煮0.5 h,濾過,合并藥液,濃縮至1 L。將煎液拌入凈馬料豆1000 g 中,浸泡10 h,俟吸盡后,置蒸具內(nèi)隔水蒸2.5 h,悶0.5 h,取出,晾至40 ℃以下,轉(zhuǎn)移到發(fā)酵容器內(nèi),用已晾涼的桑葉、青蒿藥渣覆蓋,在溫度為(26±2)℃、濕度為80%的條件下培養(yǎng)4 d,取出,除去藥渣,洗凈,瀝干多余水分,置于密閉容器中,放入(45±2)℃條件下培養(yǎng)15 d,取出,隔水蒸0.5 h,60 ℃烘干,即得。取不同炮制階段的豆豉樣品,見表1。

    表1 不同炮制階段豆豉樣品信息

    2.2 紫外-可見分光光度法測定原料黑豆中SIF含量

    常用于制備淡豆豉的黑豆包括馬料豆和雄黑豆[9]。以DAE、GLE、GEE 為對照品測定雄黑豆、馬料豆中SIF總量。

    2.2.1 對照品溶液制備 精密稱取對照品DAI、GLI、GEI、GLE、GEI、GEE 適量,分別用80%甲醇配制成質(zhì)量濃度為20 μg·mL-1的對照品母液。將DAE、GLE、GEE 對照品母液用80%甲醇依次稀釋為質(zhì)量濃度分別為2、4、6、8、10 μg·mL-1的系列對照品溶液。

    2.2.2 供試品溶液制備 分別取雄黑豆、馬料豆,粉碎,過40 目篩,精密稱取0.2 g,加80%甲醇10 mL,超聲提取1 h,濾過,取續(xù)濾液稀釋10倍,即得供試品溶液。

    2.2.3 檢測波長的選擇 以80%甲醇為空白溶液,在波長190~400 nm 下分別對DAI、DAE、GLI、GLE、GEI、GEE 對照品母液進(jìn)行光譜掃描,確定各成分的最大吸收波長(λmax)。

    2.2.4 標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制及樣品含量測定 以80%甲醇為空白溶液,分別在DAE、GLE、GEE 的λmax下測定系列對照品溶液及供試品溶液的吸光度(A)。以對照品溶液質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)(X),A為縱坐標(biāo)(Y)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。將供試品溶液A值代入標(biāo)準(zhǔn)曲線,計算樣品中異黃酮含量。

    2.3 HPLC同時定量樣品中9個SIF

    2.3.1 樣品質(zhì)量校正 稱量得到不同樣品的平均粒質(zhì)量(M),按照公式(1)~(2)計算樣品相對于原料的質(zhì)量損失及校正系數(shù)。

    2.3.2 色譜條件 色譜柱:Agilent ZORBAX Eclipse XDB-C18色譜柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);流動相為0.1%醋酸溶液(A)-乙腈(B),梯度洗脫(0~35 min,13.0%~23.5%B;35~45 min,23.5%~85.0%B;45~50 min,85.0%B;50~51 min,85.0%~13.0%B;51~60 min,13.0%B);流速:1.0 mL·min-1;柱溫:35 ℃;進(jìn)樣量:10 μL;檢測波長:254 nm;理論板數(shù)按DAE峰和GEE峰計算應(yīng)不低于5000。

    2.3.3 對照品溶液制備 分別精密稱取對照品MDA、DAI、DAE、AGL、GLI、GLE、MGE、GEI、GEE 適量,加入對應(yīng)量二甲基亞砜(DMSO)溶解成1 mg·mL-1的對照品溶液,用80% 甲醇配制為各組分質(zhì)量濃度均為50 μg·mL-1的混合對照品母液,將混合對照品母液用80%甲醇倍比稀釋為50.00、25.00、12.50、6.25、3.13、1.56、0.78、0.39、0.20 μg·mL-1的系列混合對照品溶液。

    2.3.4 供試品溶液制備 取原料及制備過程中樣品,粉碎,過40 目篩,精密稱取0.2 g,加80%甲醇10 mL,超聲提取1 h,用0.45 μm 有機(jī)系微孔濾膜濾過,濾液即為供試品溶液。

    2.3.5 方法學(xué)考察

    2.3.5.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線及線性關(guān)系 按2.3.2 項(xiàng)下色譜條件測定系列混合對照品溶液,以對照品溶液質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)(X),峰面積為縱坐標(biāo)(Y)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

    2.3.5.2 精密度試驗(yàn) 取S4 淡豆豉0.2 g,精密稱定,按2.3.4 項(xiàng)下方法制備供試品溶液,連續(xù)進(jìn)樣6次,測定9個SIF含量,考察精密度。

    2.3.5.3 重復(fù)性試驗(yàn) 取S4 淡豆豉0.2 g,精密稱定,平行6 份,按2.3.4 項(xiàng)下方法制備供試品溶液,測定9個SIF峰面積,考察重復(fù)性。

    2.3.5.4 穩(wěn)定性試驗(yàn) 取S4 淡豆豉供試品溶液,分別于0、2、4、8、12、24 h進(jìn)樣,測定9個SIF峰面積,考察穩(wěn)定性。

    2.3.5.5 加樣回收率試驗(yàn) 取6 份已知質(zhì)量濃度的S4 樣品,分別精密加入相當(dāng)于各被測成分100%量的混合對照品,制備供試品溶液,進(jìn)樣檢測,記錄目標(biāo)成分色譜峰的峰面積,計算加樣回收率。

    2.3.6 樣品含量測定 按2.3.2 項(xiàng)下色譜條件測定供試品溶液,將供試品溶液中各組分的峰面積值分別代入標(biāo)準(zhǔn)曲線,計算樣品中各成分含量。

    3 結(jié)果

    3.1 原料黑豆中SIF含量

    3.1.1 檢測波長的選擇 經(jīng)過光譜掃描,得到DAI、DAE、GLI、GLE、GEI、GEE 的λmax分別為248、249、256、257、259、259 nm。經(jīng)比較分析發(fā)現(xiàn),同一苷元結(jié)構(gòu)的葡萄糖苷及苷元具有近似的λmax,故選擇DAE、GLE、GEE 3 個苷元的λmax為吸收波長,分別以3個苷元為對照品進(jìn)行定量。

    3.1.2 3 個苷元的線性關(guān)系 如表2 所示,DAE、GLE、GEE 3 個對照品標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程的r≥0.999,表明在2~20 μg·mL-1的質(zhì)量濃度范圍內(nèi),三者線性關(guān)系良好。

    表2 DAE、GLE、GEE線性關(guān)系

    3.1.3 不同原料中SIF 含量 不同苷元紫外吸收光譜存在一定差異,導(dǎo)致以不同苷元計算得到的同一樣品中SIF 含量有差別。因此,以不同苷元計算得到的SIF 含量求均值,得到馬料豆中SIF 質(zhì)量分?jǐn)?shù)為(3 244.41±925.57)μg·g-1[(11.96±2.82)μmol·g-1],雄黑豆中SIF 質(zhì)量分?jǐn)?shù)為(1 655.54±462.97)μg·g-1[(6.10±1.41)μmol·g-1]。由結(jié)果可知,馬料豆中SIF 含量約為雄黑豆的2 倍,在發(fā)酵過程中異黃酮成分的變化會更明顯,且馬料豆籽粒較小而更易“發(fā)透”,便于研究淡豆豉發(fā)酵過程中異黃酮的變化規(guī)律,故選用馬料豆為原料制備樣品。

    3.2 樣品中9個SIF含量

    3.2.1 樣品質(zhì)量校正 發(fā)酵過程樣品的M見表3,在淡豆豉發(fā)酵過程中,隨著發(fā)酵的進(jìn)行,質(zhì)量損失逐漸增多,導(dǎo)致相同數(shù)量的豆子在發(fā)酵后相較于原料質(zhì)量下降。在進(jìn)行定量測定時,若直接以稱量的質(zhì)量進(jìn)行計算會出現(xiàn)所測成分含量虛高的現(xiàn)象,不能真實(shí)反映淡豆豉發(fā)酵過程中SIF 含量變化,故需以原料質(zhì)量為標(biāo)準(zhǔn),按公式(3)對樣品進(jìn)行質(zhì)量校正。

    表3 不同炮制階段豆豉樣品的粒質(zhì)量、質(zhì)量損失及校正系數(shù)(,n=3)

    表3 不同炮制階段豆豉樣品的粒質(zhì)量、質(zhì)量損失及校正系數(shù)(,n=3)

    3.2.2 方法學(xué)考察結(jié)果

    3.2.2.1 系統(tǒng)適應(yīng)性 混合對照品及樣品的HPLC圖如圖1 所示,DAI、GLI、GE、MDA、MGE、AGL、DAE、GLE、GEE 的保留時間分別為11.952、13.424、20.602、21.743、31.133、32.079、37.051、40.563、43.801 min。該條件下系統(tǒng)適用性良好。

    圖1 SIF對照品及樣品的HPLC圖

    3.2.2.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線及線性關(guān)系 如表4 所示,所有對照品標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程的r≥0.999,表明在0.20~50.00 μg·mL-1對照品線性關(guān)系良好。

    表4 SIF對照品的線性關(guān)系

    3.2.2.3 精密度試驗(yàn) DAI、GLI、GEI、MDA、MGE、AGL、DAE、GLE、GEE峰面積的RSD分別為0.52%、0.76%、0.65%、1.32%、1.01%、0.98%、0.62%、0.42%和0.13%,表明本方法精密度良好。

    3.2.2.4 重復(fù)性試驗(yàn) DAI、GLI、GEI、MDA、MGE、AGL、DAE、GLE、GEE 含量的RSD 分別為1.02%、0.88%、0.46%、1.11%、0.56%、0.92%、0.79%、0.47%和0.38%,表明本方法重復(fù)性良好。

    3.2.2.5 穩(wěn)定性試驗(yàn) DAI、GLI、GEI、MDA、MGE、AGL、DAE、GLE、GEE峰面積的RSD分別為0.62%、0.42%、0.74%、0.79%、0.68%、0.75%、0.55%、0.64%和0.63%,表明供試品溶液在24 h內(nèi)穩(wěn)定性良好。

    3.2.2.6 加樣回收率試驗(yàn) 結(jié)果見表5,待測成分的加樣回收率在96.72%~97.16%,RSD≤2.90%,表明該方法具有較高的回收率。

    表5 淡豆豉中9個SIF的加樣回收率

    續(xù)表5

    3.2.3 樣品中各組分含量

    馬料豆(S0)中9個SIF總質(zhì)量分?jǐn)?shù)為(4 374.23±93.59)μg·g-1[(8.91±0.19)μmol·g-1],其中苷類占99.10%,苷元占0.90%(表6)。馬料豆中SIF主要以丙二酰基葡萄糖苷、葡萄糖苷形式存在。經(jīng)過浸泡的樣品(S1)中苷類占86.82%,苷元占13.18%。經(jīng)過隔水蒸的樣品(S2)中苷類占95.71%,苷元占4.29%,SIF 主要以葡萄糖苷形式存在。前酵結(jié)束的樣品(S3)中苷類占52.11%,苷元占47.89%,SIF主要以葡萄糖苷和苷元形式存在。后酵階段,苷類含量持續(xù)降低,苷元含量持續(xù)升高,后酵7 d 的樣品(S6)中檢測不到苷類,SIF 僅以苷元形式存在。繼續(xù)發(fā)酵,苷元含量持續(xù)減少,且GEE 減少最為顯著。S6 中苷元含量達(dá)到峰值,為(1 940.2±29.12)μg·g-1,即(7.37±0.82)μmol·g-1,此時樣品中的苷元總量相當(dāng)于SIF 總量,相較于紫外-可見分光光度法測定所得馬料豆中SIF 含量損失了約38%。S6 中DAE 和GEE 總量在進(jìn)行質(zhì)量校正前為0.226%,遠(yuǎn)高于《中國藥典》2020 年版規(guī)定標(biāo)準(zhǔn)。

    表6 樣品中9種SIF質(zhì)量分?jǐn)?shù)(,n=3) μg·g-1

    表6 樣品中9種SIF質(zhì)量分?jǐn)?shù)(,n=3) μg·g-1

    注:-表示未檢測到。

    4 討論

    《本草綱目》記載:“豉,諸大豆皆可為之,以黑豆者入藥”[10]?,F(xiàn)代研究證明,黑豆相比于黃豆、紅豆、綠豆、白蕓豆更適合作為淡豆豉的發(fā)酵原料[11-12]。本研究結(jié)果顯示,馬料豆中異黃酮含量高于雄黑豆,與文獻(xiàn)研究結(jié)果一致[13]。同時,馬料豆的籽粒較小而更易“發(fā)透”,有利于縮短淡豆豉的發(fā)酵周期,便于廠家組織生產(chǎn),有助于改善淡豆豉發(fā)酵周期長、市售淡豆豉質(zhì)量普遍偏低的現(xiàn)狀。

    原料馬料豆中SIF 主要以糖苷形式存在,其中以丙二?;咸烟擒?、葡萄糖苷含量較高。在淡豆豉的發(fā)酵過程中,苷類向苷元轉(zhuǎn)化,具體表現(xiàn)為樣品中的丙二?;咸烟擒粘掷m(xù)減少;乙?;咸烟擒铡⑵咸烟擒兆鳛檗D(zhuǎn)化的中間形式,其含量在前處理階段波動、在前酵及后酵階段下降;發(fā)酵產(chǎn)物苷元整體呈波動上升趨勢,最終含量可達(dá)(7.37±0.82)μmol·g-1,約為馬料豆中苷元含量的92 倍。從發(fā)酵階段分析,前處理過程中主要發(fā)生丙二酰基葡萄糖苷向乙?;咸烟擒蘸推咸烟擒盏霓D(zhuǎn)化,經(jīng)過前處理的樣品中SIF 主要以葡萄糖苷形式存在。前酵階段微生物大量繁殖,代謝產(chǎn)生的β-葡萄糖苷酶可使苷類大量轉(zhuǎn)化為苷元[14],前酵結(jié)束時,樣品中苷類和苷元接近1∶1。后酵階段苷類繼續(xù)轉(zhuǎn)化為苷元,后酵7 d 的樣品中無法檢測到SIF 苷類,提示此時樣品中的苷類已最大程度地轉(zhuǎn)化為苷元,樣品達(dá)到了“發(fā)透”的水平。此時樣品中SIF 絕大部分以苷元形式存在,且DAE∶GLE∶GEE≈6∶1∶5。繼續(xù)發(fā)酵,樣品中的苷元含量逐漸降低,且GEE 降低最為明顯。以上結(jié)果表明,發(fā)酵時間不足,樣品中的苷類尚未最大程度轉(zhuǎn)化為苷元,表現(xiàn)為“不及”;發(fā)酵時間過長,會導(dǎo)致苷元進(jìn)一步損失,出現(xiàn)“發(fā)過”的情況。《中國藥典》2020 年版中淡豆豉制法項(xiàng)下明確“置容器內(nèi)再悶15~20 天”,本研究發(fā)現(xiàn)以馬料豆為原料時,該工藝存在“發(fā)過”的風(fēng)險。提示《中國藥典》2020 年版中淡豆豉制法可結(jié)合原料種類及發(fā)酵原理進(jìn)一步優(yōu)化,以便廠家進(jìn)行生產(chǎn),進(jìn)而提高市場淡豆豉質(zhì)量。

    前處理結(jié)束、前酵結(jié)束、后酵第七天時,樣品中DAE 和GEE 的總量分別為0.009%、0.101%、0.226%。對比《中國藥典》2020年版標(biāo)準(zhǔn)可知,現(xiàn)行標(biāo)準(zhǔn)可篩除未經(jīng)發(fā)酵的產(chǎn)品,區(qū)分豆和豉,但不能區(qū)分淡豆豉的發(fā)酵程度和質(zhì)量優(yōu)劣。提示《中國藥典》2020 年版標(biāo)準(zhǔn)可結(jié)合淡豆豉發(fā)酵過程中異黃酮變化規(guī)律進(jìn)一步完善,如控制DAE 和GEE 總量>0.100%,可篩除市場中的大部分劣豉,同時促進(jìn)廠家優(yōu)化發(fā)酵工藝,提升市場淡豆豉質(zhì)量。

    本研究闡明了淡豆豉發(fā)酵過程中異黃酮的變化規(guī)律,為優(yōu)化淡豆豉制法和完善其質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)提供參考。

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