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    一例豬圓環(huán)病毒2型和豬葡萄球菌混合感染導(dǎo)致仔豬滲出性皮炎的診斷與防控

    2021-06-17 01:42:40
    養(yǎng)豬 2021年3期
    關(guān)鍵詞:汨羅市凝膠電泳葡萄球菌

    張 維

    (湖南省汨羅市畜牧水產(chǎn)服務(wù)中心,湖南 汨羅 414400)

    豬圓環(huán)病毒2型(PCV2)屬于圓環(huán)病毒屬,是迄今為止發(fā)現(xiàn)的最小的DNA病毒之一,但該病原對宿主的致病性很高[1]。斷奶仔豬多系統(tǒng)衰竭綜合征主要由PCV2感染引起,其臨床癥狀包括咳嗽、精神萎靡和呼吸困難等,但單獨(dú)感染的病死率較低[2]。值得注意的是,PCV2感染可導(dǎo)致病畜出現(xiàn)免疫抑制,這導(dǎo)致其它病原的混合感染較嚴(yán)重,給養(yǎng)殖戶造成巨大的經(jīng)濟(jì)損失,同時也導(dǎo)致疫病的診斷與防控較為困難[3]。豬葡萄球菌是引起仔豬滲出性皮炎的主要病原,仔豬感染該病原的主要臨床癥狀包括消瘦、發(fā)熱、皮膚表面有紅斑或潰瘍等,影響患豬采食和健康成長,嚴(yán)重時可導(dǎo)致死亡[4]。豬葡萄球菌屬于機(jī)會致病菌,該病原廣泛存在于豬體表,其感染健康豬群一般不發(fā)病,但豬群因病原感染或其它因素造成抵抗力下降時會導(dǎo)致該病相關(guān)臨床癥狀出現(xiàn),故在臨床上該病主要是散發(fā),但我們也不能忽視其對生豬養(yǎng)殖造成的危害與損失[5]。

    2020年9月初,湖南汨羅市某豬場部分仔豬持續(xù)發(fā)病,臨床癥狀主要包括滲出性皮炎、咳喘和體溫升高等,病死豬體表末端(如耳朵和四肢等)發(fā)紺,剖檢發(fā)現(xiàn)淋巴結(jié)腫大、腎臟有明顯出血點(diǎn),遂該企業(yè)負(fù)責(zé)人采集病死豬肺臟、腎臟、淋巴結(jié)等組織樣品送至汨羅市畜牧水產(chǎn)服務(wù)中心進(jìn)行病原檢測,以期為相應(yīng)的疫病防控提供科學(xué)依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 病料來源

    豬病變組織(肺臟、淋巴結(jié)及腎臟)由汨羅市某豬場提供。豬場獸醫(yī)無菌采集組織樣品后進(jìn)行標(biāo)記,低溫送至汨羅市畜牧水產(chǎn)服務(wù)中心進(jìn)行檢測。

    1.2 主要材料及試劑

    動物組織DNA/RNA基因組提取試劑盒購自于賽默飛科技有限公司,cDNA反轉(zhuǎn)錄試劑盒、2×Taq PCR mix及DL 5 000 DNA Marker等產(chǎn)品均購自于Tankera;藥敏紙片及相應(yīng)細(xì)菌分離培養(yǎng)基為杭州微生物試劑有限公司產(chǎn)品。

    用于檢測豬瘟病毒(CSFV)、PCV2、豬偽狂犬病病毒(PRV)、豬細(xì)小病毒(PPV)、豬藍(lán)耳病病毒(PRRSV)及豬乙腦病毒(JEV)的特異性引物序列參考相關(guān)文獻(xiàn)[6],以上引物及細(xì)菌檢測16S rRNA基因序列通用引物均由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。

    1.3 病毒檢測

    用滅菌眼科剪及手術(shù)刀切取少量組織,剪碎后置于離心管內(nèi),加入少量滅菌PBS溶液和鋼珠后勻漿。將混合物高速離心,取200 μL上清液用于組織DNA/RNA基因組提取,其具體操作及注意事項均嚴(yán)格參考動物組織DNA/RNA基因組提取試劑盒提供的說明書,提取的基因組保存于-80 ℃,采用cDNA反轉(zhuǎn)錄試劑盒將基因組中的RNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA,相應(yīng)的產(chǎn)物保存于-20 ℃,待檢。

    采用PCR對組織樣品中病原核酸進(jìn)行檢測,其PCR反應(yīng)體系包含2×PCR mix 10.0 μL、上下游引物各0.5 μL、DNA/cDNA模板1.0 μL及雙蒸水8.0 μL。反應(yīng)條件為94 ℃ 5 min;94 ℃ 30 s,56 ℃ 30 s,72 ℃ 40 s,35個循環(huán);72 ℃ 5 min。每次PCR反應(yīng)均設(shè)置陽性對照和陰性對照,其中陽性對照為檢測體系相應(yīng)陽性樣品核酸,陰性對照為雙蒸水。PCR反應(yīng)結(jié)束后取5.0 μL PCR產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳鑒定。

    1.4 細(xì)菌分離及鑒定

    1.4.1 細(xì)菌分離及革蘭氏染色鑒定 用滅菌接種環(huán)蘸取肺臟病變組織液接種于普通瓊脂培養(yǎng)基表面,37 ℃恒溫箱內(nèi)培養(yǎng)18 h后觀察培養(yǎng)基表面是否生長菌落,將單一菌落進(jìn)行革蘭氏染色,鏡檢。

    1.4.2 細(xì)菌16S rRNA基因序列擴(kuò)增及分析 取單一菌落在營養(yǎng)肉湯中擴(kuò)增,在37 ℃環(huán)境下震蕩12 h,其后用商業(yè)化試劑盒提取細(xì)菌基因組DNA。以基因組DNA為模板,其PCR體系和反應(yīng)條件與上述一致。PCR反應(yīng)結(jié)束后取5 μL產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳,將陽性產(chǎn)物送至生工生物工程(上海)股份有限公司進(jìn)行雙向測序。將返回序列進(jìn)行拼接,將序列粘貼在NCBI進(jìn)行核苷酸序列BLAST,分析該菌株序列與NCBI收錄不同病原序列的核苷酸序列同源性。

    1.5 藥物敏感試驗

    采用K-B擴(kuò)散法對分離菌進(jìn)行藥敏試驗:將擴(kuò)增菌液稀釋至0.5麥?zhǔn)蠘?biāo)準(zhǔn)濁度,取50 μL菌液涂布在普通瓊脂培養(yǎng)基表面,待菌液稍干后便可貼上16種含不同抗生素的紙片,每個培養(yǎng)基表面貼4個,將平板置于37 ℃恒溫箱內(nèi)培養(yǎng)24 h,最后用卡尺測量不同紙片的抑菌圈直徑,根據(jù)說明書判定標(biāo)準(zhǔn)對結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計和分析。

    2 結(jié)果

    2.1 病毒檢測結(jié)果

    通過PCR法分別對組織樣品中PCV2、PRV、PPV、CSFV、PRRSV和JEV核酸進(jìn)行檢測,發(fā)現(xiàn)被檢測樣品中僅PCV2核酸陽性(圖1),未檢出其它病原核酸。

    圖1 PCR擴(kuò)增產(chǎn)物凝膠電泳結(jié)果

    2.2 細(xì)菌分離及革蘭氏染色鑒定結(jié)果

    將組織液接種于普通瓊脂培養(yǎng)基表面,18 h后發(fā)現(xiàn)平板表面生長出濕潤、光滑的圓形菌落;進(jìn)一步革蘭氏染色結(jié)果發(fā)現(xiàn)該菌為革蘭氏陽性菌,為葡萄狀排列的球菌(圖2)。

    圖2 分離菌株革蘭氏染色鏡檢結(jié)果

    2.3 分離菌16S rRNA基因序列擴(kuò)增及分析

    隨機(jī)挑選3個單一菌落在營養(yǎng)肉湯中擴(kuò)增,分別提取基因組DNA后,以通用引物16S rRNA-F、16S rRNA-R擴(kuò)增其目的序列。PCR產(chǎn)物凝膠電泳結(jié)果如圖3所示,3個菌株擴(kuò)增PCR產(chǎn)物大小均為1 600 bp左右,與預(yù)測大小基本一致。將3個菌株P(guān)CR產(chǎn)物進(jìn)行測序及拼接后,在NCBI網(wǎng)站進(jìn)行BLAST對比分析,結(jié)果發(fā)現(xiàn)3個菌株序列與GenBank收錄的豬葡萄球菌分離株(登陸號:CP030020.1)對應(yīng)序列同源性均高于99.8%,與其它菌株對應(yīng)序列同源性均低于98.0%,提示可將本次分離的菌株鑒定為豬葡萄球菌。

    圖3 菌株16S rRNA序列PCR擴(kuò)增產(chǎn)物凝膠電泳結(jié)果

    2.4 分離菌藥敏試驗結(jié)果

    進(jìn)一步對分離菌株進(jìn)行藥敏試驗,結(jié)果發(fā)現(xiàn)該菌株對頭孢唑林、頭孢曲松、環(huán)丙沙星、慶大霉素、氟苯尼考、利福平、復(fù)方新諾明、萬古霉素和新生霉素敏感,對頭孢克肟、氨芐西林、青霉素和氨曲南抗生素耐藥;對卡那霉素、氯霉素和氧氟沙星則中度耐藥。

    3 討論

    近年來,我國生豬養(yǎng)殖水平不斷提高,隨著養(yǎng)殖業(yè)對烈性傳染病防控意識的提高,目前對豬場豬瘟、偽狂犬病等危害嚴(yán)重的傳染病得到有效控制。然而,可導(dǎo)致豬群慢性消耗性疾病的病原仍然廣泛存在,其中PCV2可感染不同發(fā)育階段豬群,是導(dǎo)致斷奶仔豬多系統(tǒng)衰竭綜合征的主要病原之一,該病的流行對豬群健康造成巨大威脅[1]。此外,PCV2也是作為原發(fā)性感染導(dǎo)致繼發(fā)感染PRRSV、豬鏈球菌、豬葡萄球菌等的主要病原,這無疑給臨床診斷與疾病治療帶來了巨大的挑戰(zhàn)。

    本研究對汨羅市某規(guī)?;i場疫情進(jìn)行病因診斷,在組織中檢測出PCV2核酸陽性,同時分離出一株豬葡萄球菌,結(jié)合臨床診斷結(jié)果最終確診該場發(fā)生疫情主要是由PCV2和豬葡萄球菌混合感染所致,進(jìn)一步細(xì)菌耐藥性試驗結(jié)果表明,本次分離菌株對頭孢唑林、頭孢曲松、環(huán)丙沙星、慶大霉素和新生霉素等多種藥物敏感,這為后續(xù)該場對此病的防治提供了科學(xué)依據(jù)。

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