楊夢(mèng)瑤 ,吳雨晴 ,劉辰辰 ,郭 宇,劉俊偉
(1. 天津國(guó)際生物醫(yī)藥聯(lián)合研究院 天津 300457;2. 南開大學(xué)藥學(xué)院 天津 300350)
有研究表明快速生長(zhǎng)的組織一般都有活性的多胺合成體系,尤其是腫瘤的快速生長(zhǎng)亦有賴于多胺含量的顯著增長(zhǎng)[1]。作為精胺的二乙?;苌?,N1,N12-二乙酰精胺(N1,N12-diacetylspermine,DiAcSpm)對(duì)于非小細(xì)胞肺癌患者,尤其是Ia臨床階段患者的靈敏度比其他腫瘤標(biāo)志物都要高[2],并且尿液中的DiAcSpm可作為生存率的獨(dú)立預(yù)后因素[3-4]。圖1為N1,N12-二乙酰精胺的化學(xué)結(jié)構(gòu)式。在不同臨床階段,DiAcSpm對(duì)結(jié)腸癌檢測(cè)的靈敏度也高于CEA和CA19-9[5]。同時(shí),因?yàn)椴煌瑐€(gè)體之間N1,N12-二乙酰精胺的尿液含量差別較小,所以通過(guò)DiAcSpm含量變化來(lái)檢測(cè)癌癥的發(fā)生相對(duì)于總多胺或其他多胺類化合物而言準(zhǔn)確率較高[6-8]。
但是由于DiAcSpm缺乏伯氨基,再加上其在尿液中的含量低于0.5%,以常規(guī)的儀器分析手段無(wú)法滿足檢測(cè)需求,需用GC-MS、HPLC-MS以及MSICE-MS/MS[9-10]等高靈敏度檢測(cè)儀器。這些儀器檢測(cè)用時(shí)長(zhǎng)、價(jià)格昂貴,無(wú)法滿足臨床上的日常檢測(cè)[11]。本研究以N1-乙酰精胺為半抗原,通過(guò)與載體蛋白偶聯(lián)制備出N1,N12-二乙酰精胺人工抗原,通過(guò)免疫動(dòng)物獲得抗DiAcSpm特異性抗體,結(jié)合化學(xué)發(fā)光免疫分析法建立了可用于人體尿液樣本中N1,N12-二乙酰精胺的快速檢測(cè)方法。
N1-乙酰精胺(美國(guó)Cayman Chemical公司);N1,N12-二乙酰精胺(美國(guó)Quality Control Chemicals公司);戊二醛(50%)、牛血清蛋白(BSA)、卵清蛋白(OVA)、脫脂奶粉、Triton X-100、吐溫-20(上海生工生物工程有限公司);明膠(蘇州亞科科技股份有限公司);魚皮膠(德國(guó)Sigma-Aldrich 公司);弗氏佐劑(德國(guó)Sigma-Aldrich 公司);化學(xué)發(fā)光底物(湖州英創(chuàng)生物科技公司);HRP-山羊抗兔IgG(英國(guó)Abcam公司);BS3(美國(guó)Thermo Fisher Scientific公司);大耳白兔(天津科奧公司);Protein A親和層析柱(美國(guó)GE公司);其他試劑均為分析純(國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司)。
1.2.1 人工抗原與抗體的制備
以BS3為交聯(lián)劑,將半抗原N1-乙酰精胺與載體蛋白偶聯(lián),制備二乙酰精胺人工抗原。通過(guò)免疫日本大耳白兔,獲得抗DiAcSpm血清。采用親和層析法純化得到抗DiAcSpm抗體,具體方法見(jiàn)參考文獻(xiàn)[12]。
1.2.2 化學(xué)發(fā)光免疫分析法檢測(cè)步驟
將包被原100μL/孔固定在96孔板中,37℃孵育2h后洗板。每孔加入200μL封閉1h后洗板。
每孔分別加入50μL標(biāo)準(zhǔn)品(或待測(cè)樣品)以及抗DiAcSpm抗體后37℃孵育,洗板后加入HRP-山羊抗兔IgG 100μL/孔,37℃孵育30min后洗板。加入化學(xué)發(fā)光底物后立即用化學(xué)發(fā)光儀測(cè)定每孔的相對(duì)發(fā)光強(qiáng)度(Relative light units,RLU),并根據(jù)RUL計(jì)算抑制率,進(jìn)而繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線或計(jì)算待測(cè)樣含量。
1.2.3 實(shí)驗(yàn)條件的優(yōu)化
通過(guò)單因素實(shí)驗(yàn),本研究考察了包被原濃度、封閉液種類、一抗稀釋倍數(shù)、競(jìng)爭(zhēng)反應(yīng)時(shí)間以及化學(xué)發(fā)光底物稀釋倍數(shù)等參數(shù)對(duì)檢測(cè)性能的影響;通過(guò)比較半抑制濃度IC50及RLUmax/ IC50比值作為評(píng)價(jià)各影響因素的標(biāo)準(zhǔn),確定最優(yōu)反應(yīng)條件[13]。
1.2.4 標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立
按照以上確定好的優(yōu)化條件進(jìn)行化學(xué)發(fā)光檢測(cè)實(shí)驗(yàn),以DiAcSpm濃度為橫坐標(biāo)、抑制率為縱坐標(biāo)建立標(biāo)準(zhǔn)曲線。本研究以IC50值作為方法的靈敏度,以IC25值作為最低檢測(cè)限。
1.2.5 尿液樣品前處理
由于尿液成分復(fù)雜,可能會(huì)干擾對(duì)DiAcSpm含量的檢測(cè),在實(shí)際檢測(cè)時(shí)必須對(duì)樣品進(jìn)行前處理,以降低樣品本身對(duì)檢測(cè)的影響。本實(shí)驗(yàn)嘗試不同的樣品稀釋液及不同的稀釋倍數(shù),通過(guò)添加回收實(shí)驗(yàn)確定了尿液樣品的前處理方法。
通過(guò)對(duì)實(shí)驗(yàn)參數(shù)進(jìn)行摸索,確定了實(shí)驗(yàn)參數(shù):包被原濃度為2.5μg/mL;封閉液為脫脂奶粉/PBS;一抗稀釋倍數(shù)為3000倍;競(jìng)爭(zhēng)反應(yīng)時(shí)間為30min;HRP-山羊抗兔IgG的稀釋倍數(shù)為1×104倍;化學(xué)發(fā)光底物稀釋4倍。在此基礎(chǔ)上,本實(shí)驗(yàn)建立化學(xué)發(fā)光免疫分析法的標(biāo)準(zhǔn)曲線,見(jiàn)圖2,得到線性回歸方程:
該檢測(cè)方法的靈敏度(IC50)為(1.74±0.09)ng/mL (n=3),最低檢出限(IC25)為(0.19±0.04)ng/mL (n=3)。
本實(shí)驗(yàn)以魚皮膠為掩蔽劑,通過(guò)不同濃度的溶液稀釋DiAcSpm而得到不同的抑制曲線,將其與標(biāo)準(zhǔn)曲線比較后,選取了抑制曲線重合程度最好的0.5%魚皮膠/PBS溶液為尿液樣品稀釋液。本實(shí)驗(yàn)在尿液樣品稀釋2倍、5倍、10倍和20倍的基礎(chǔ)上分別進(jìn)行了添加回收實(shí)驗(yàn),通過(guò)計(jì)算回收率的高低來(lái)確定樣品稀釋倍數(shù)。結(jié)果如表1所示:以2倍稀釋尿樣測(cè)得樣本添加回收率為98.2%~151.8%,以5倍稀釋尿樣測(cè)得樣本添加回收率為92.8%~104.1%,以10倍稀釋尿樣測(cè)得樣本添加回收率為79.7%~118.9%,以20倍稀釋尿樣測(cè)得樣本添加回收率為86.3%~135.2%,由此可見(jiàn)各個(gè)稀釋倍數(shù)均能滿足該檢測(cè)方法所需的準(zhǔn)確度,但是為了減少尿液稀釋倍數(shù)且盡量減少尿液本身對(duì)檢測(cè)的影響,確保檢測(cè)結(jié)果的準(zhǔn)確性,最終選擇以0.5%魚皮膠/PBS溶液稀釋5倍的處理方法。
表1 尿樣前處理中稀釋倍數(shù)選擇的結(jié)果Tab.1 Results of dilution fold selection in urine sample pretreatment
本實(shí)驗(yàn)選取了3份正常人尿液樣本,分別向其中添加了25ng/mL、50ng/mL和100ng/mL N1,N12-二乙酰精胺,在最佳實(shí)驗(yàn)條件下測(cè)定并計(jì)算回收率。結(jié)果見(jiàn)表2。該方法的回收率在80.02%~102.69%之間,準(zhǔn)確度和穩(wěn)定性較好,可用于實(shí)際樣品檢測(cè)。
表2 尿液樣本中N1,N12-二乙酰精胺回收率測(cè)定(n=3)Tab.2 Determination of recovery rate of N1,N12-diacetylspermine in urine samples(n=3)
本研究利用多克隆抗體建立的用于檢測(cè)人體尿液樣本的化學(xué)發(fā)光免疫分析方法,具有靈敏度高、準(zhǔn)確度好,樣品前處理簡(jiǎn)單等優(yōu)點(diǎn)。其靈敏度(IC50)為(1.74±0.09)ng/mL,最低檢出限(IC25)為(0.19±0.04)ng/mL,尿液樣品的添加回收率為80.02%~102.69%。本研究將為N1,N12-二乙酰精胺的高效定量檢測(cè)提供借鑒,為開發(fā)快速檢測(cè)試劑盒奠定基礎(chǔ),從而有利于在臨床上進(jìn)行癌癥患者的早期篩查及預(yù)后評(píng)估。