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    榛蘑總皂苷純化工藝優(yōu)化及抑制酶活性

    2021-11-25 09:33:26佟喜旺羅亞楠寧波于麗穎
    食品工業(yè) 2021年11期
    關(guān)鍵詞:總皂苷大孔糖苷酶

    佟喜旺,羅亞楠,寧波,于麗穎

    吉林化工學(xué)院(吉林 132022)

    東北榛蘑是我國東北的主要特產(chǎn)之一,故名東北榛蘑。其多生長在大興安嶺原始森林,在吉林、河北、山西、甘肅、青海、四川、浙江、云南一帶也有分布。在針葉樹和闊葉樹的根部,我們都能看到它的身影,每年7—8月就可以采收[1]。資料顯示,榛蘑為真菌植物門真菌蜜環(huán)菌的子實(shí)體,是迄今為止為數(shù)不多的被人們所認(rèn)知但仍然無法人工培育的野生菌類,在東北大興安嶺地區(qū),榛蘑是僅次于人參、鹿茸、貂皮的“大東北第四寶”,營養(yǎng)價(jià)值極高,堪稱名副其實(shí)的“山珍”。食用榛蘑滑嫩爽口、味道鮮美、營養(yǎng)豐富,具有平肝明目、溫胃養(yǎng)肺、祛風(fēng)活絡(luò)等功效[2]。經(jīng)常食用,對身體具有很好的滋補(bǔ)和輔助治療疾病作用。因此被一些發(fā)達(dá)國家列為一類保健食品。

    近些年研究表明,榛蘑含有的化學(xué)成分具有抑制腫瘤細(xì)胞增殖、降糖、降脂、抗衰老、利肝等保健效果[3-7],是一種潛在的保健品開發(fā)產(chǎn)品。榛蘑總皂苷作為化學(xué)成分之一,但對榛蘑總皂苷的純化卻少有報(bào)道。純化皂苷的方法主要有乙酰精制法、大孔吸附樹脂法、中性氧化鋁法等。其中大孔樹脂純化方法具有成本低、效率高、可循環(huán)利用、操作簡單等優(yōu)點(diǎn),能高效地純化天然產(chǎn)物中的有效成分,是天然產(chǎn)物研究過程中不可或缺的分離提取技術(shù)[8-12]。

    以回收率為指標(biāo),對6種不同類型的大孔吸附樹脂進(jìn)行考察,優(yōu)化出最佳純化榛蘑總皂苷條件。因此,開發(fā)利用東北天然榛蘑菌類資源,優(yōu)化榛蘑總皂苷純化工藝條件,對開發(fā)榛蘑類保健品和帶動?xùn)|北天然資源經(jīng)濟(jì)有著重要意義。

    1 材料與方法

    1.1 材料和儀器

    東北榛蘑(產(chǎn)于東北長白山);菝葜皂苷元(純度99%,上海源葉生物有限公司);甲醇(分析純);高氯酸(分析純,天津大茂試劑廠);大孔吸附樹脂(HPD-500、HPD-300、HPD-100、AB-8、D101、NKA-9,中國東鴻化工有限公司)。

    SHZ-D循環(huán)水式多用真空泵(上海力辰邦西儀器科技有限公司);電熱恒溫震蕩箱(上海天呈實(shí)驗(yàn)儀器制造有限公司);TU-1950型紫外分光光度計(jì)(天津普析儀器有限公司)。

    1.2 試驗(yàn)方法

    1.2.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制

    精密稱取19 mg菝葜皂苷元標(biāo)準(zhǔn)品,定容至50 mL,分別取2,4,6,8和10 mL母液甲醇定容至10 mL,分別取1 mL置于容量瓶中,水浴加熱,揮干甲醇后,加入5 mL高氯酸,在70 ℃下加熱15 min后,冷卻至室溫測其吸光度,甲醇作空白對照。繪制出菝葜皂苷元濃度(y)-吸光度(x)的標(biāo)準(zhǔn)曲線,線性方程為y=0.453 8x-0.147 1(R2=0.999 8),榛蘑皂苷濃度在0.076~0.38 mg/mL范圍內(nèi),吸光度呈現(xiàn)良好線性關(guān)系。

    1.2.2 榛蘑總皂苷的制備和含量測定

    取干燥至恒重的榛蘑,粉碎機(jī)粉碎,過0.180 mm(80目)孔徑篩,稱取一定量榛蘑粉末,在一定條件下進(jìn)行水熱提取,過濾,濾液旋干,加入80%乙醇水溶液醇沉12 h,再次過濾、旋干,蒸餾水溶解后倒入分液漏斗中,加入一定量正丁醇萃取,旋干,得到榛蘑總皂苷。

    采用高氯酸比色法[13],按照標(biāo)準(zhǔn)曲線,測定榛蘑提取物中總皂苷含量。

    1.3 大孔吸附樹脂篩選和靜態(tài)吸附-解析試驗(yàn)

    1.3.1 大孔吸附樹脂預(yù)處理

    稱取適量的HPD-500、HPD-300、HPD-100、AB-8、D101、NKA-9這6種大孔吸附樹脂,置于錐形瓶中,加入高于樹脂3 cm的95%以上的乙醇浸漬4 h,蒸餾水淋洗至流出液用水稀釋不渾濁即可,用水反復(fù)洗到無明顯醇味時(shí)為止,樹脂表面上保持2~5 mm液體,以免干柱,備用。

    1.3.2 最佳大孔吸附樹脂篩選

    稱取3 g不同型號的大孔樹脂置于錐形瓶中,加入一定濃度的榛蘑皂苷提取液,放在搖床中,30 ℃,200 r/min,振蕩2 h,靜止吸附24 h,測定吸附后溶液中的榛蘑皂苷含量,通過式(1)算出吸附率。將過濾出的樹脂重新放回至錐形瓶中,加入甲醇,于30 ℃200 r/min,振蕩2 h,靜止解析24 h,過濾,測定濾液中榛蘑皂苷的含量。通過式(2)和(3)計(jì)算出解析率和回收率。

    式中:m0為榛蘑皂苷的質(zhì)量,mg;me為吸附達(dá)到飽和后榛蘑皂苷質(zhì)量,mg;Qe為吸附率,%;Dd為解析率,%;R為回收率,%。

    1.3.3 靜態(tài)吸附-解析單因素試驗(yàn)

    確定最佳的大孔吸附樹脂類型后,以解析液體積(20,30,40,50和60 mL)、吸附液質(zhì)量濃度(4,5,6,7和8 mg/mL)、吸附液體積(20,30,40,50和60 mL)為考察因素,榛蘑總皂苷回收率(%)為考察指標(biāo),進(jìn)行榛蘑總皂苷靜態(tài)吸附-解析單因素試驗(yàn)。

    1.3.4 靜態(tài)吸附-解析曲面響應(yīng)試驗(yàn)

    根據(jù)單因素試驗(yàn),以解析液體積(A)、吸附液質(zhì)量濃度(B)、吸附液體積(C)為因素,皂苷回收率為考察指標(biāo),設(shè)計(jì)出榛蘑皂苷靜態(tài)吸附-解析因素水平表。見表1,并進(jìn)行響應(yīng)面優(yōu)化試驗(yàn)。

    表1 榛蘑皂苷靜態(tài)吸附-解析響應(yīng)面因素水平設(shè)計(jì)表

    1.4 酶活性抑制試驗(yàn)

    1.4.1α-葡萄糖苷酶活性抑制試驗(yàn)

    在黃盼盼等[14]的方法上進(jìn)行改進(jìn),以PNPG(對硝基苯-α-葡萄糖苷)為底物。在PBS(0.10 mol/L pH 6.8)緩沖體系中,阿卡波糖為陽性對照。將榛蘑總皂苷溶于甲醇中,取試劑瓶分別加入2.5 mL PBS溶液0.25 mL、2.5 U/mL的α-葡萄糖苷酶溶液、0.5 mL不同濃度的待測樣品,在37 ℃下保溫15 min后,加入1 mL 1 mmol/L的PNPG溶液,在37 ℃下保溫30 min后,加入2.5mL 5 mmol/L的Na2CO3終止反應(yīng),在405 nm處測定吸光度,按照式(4)計(jì)算抑制率。

    式中:A為抑制率,%;A0為空白對照組試驗(yàn)吸光度;A1為不同濃度總皂苷試驗(yàn)吸光度;A2為不同濃度總皂苷干擾試驗(yàn)吸光度。

    1.4.2α-淀粉酶活性抑制試驗(yàn)

    在包瑞敏等[15]的方法上進(jìn)行改進(jìn),通過碘-淀粉比色法測定榛蘑總皂苷對α-淀粉酶活性抑制效果。試驗(yàn)在0.1 mol/L pH 7.0的磷酸鉀緩沖體系進(jìn)行酶活性的測定。取試劑瓶,分別加入2 mL磷酸鉀緩沖液、100 μL不同濃度的待測樣品、2 mL 0.4 g/L的淀粉溶液。在37 ℃下保溫5 min后加入100 μL 0.01 mg/mLα-淀粉酶,在37 ℃下保溫10 min,加入0.01 mol/L碘液。在660 nm處測定吸光度,按照式(5)計(jì)算抑制率。

    式中:B為抑制率,%;B0為空白對照組試驗(yàn)吸光度;B1為不同濃度總皂苷試驗(yàn)吸光度;B2為不同濃度總皂苷干擾試驗(yàn)吸光度。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 篩選大孔吸附樹脂的型號

    不同型號大孔吸附樹脂對榛蘑總皂苷吸附-解析能力見表2。

    由表2可知,不同大孔吸附樹脂對榛蘑總皂苷的吸附能力不同,D101型大孔吸附樹脂的吸附率、解析率和回收率均高于其他類型樹脂,因此選擇D101型大孔樹脂進(jìn)行純化榛蘑提取物總皂苷純化的試驗(yàn)。

    表2 不同類型大孔吸附樹脂對榛蘑總皂苷的吸附-解析能力 單位:%

    2.2 D101型大孔樹脂純化試驗(yàn)

    2.2.1 單因素純化試驗(yàn)

    對影響榛蘑皂苷純化回收率的單因素進(jìn)行考察,結(jié)果表明解析液用量、吸附液質(zhì)量濃度、吸附液用量對回收率都有影響。試驗(yàn)結(jié)果如圖1~圖3所示。

    圖1 解析液體積用量考察結(jié)果

    圖2 吸附液濃度考察結(jié)果

    圖3 吸附液用量考察結(jié)果

    2.2.2 響應(yīng)面優(yōu)化純化試驗(yàn)

    對表3進(jìn)行多元方程回歸擬合,得到回歸方程:回收率(%)=53.87-1.39A-0.18B+1.15C+0.58AB+0.43AC-1.17BC-7.95A2-10.69B2-2.63C2,對回歸方程進(jìn)行方差分析,見表4。

    表3 響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果

    表4 方差分析結(jié)果

    由表4可知,該模型F=18.34,p<0.01說明所建立的模型達(dá)到極顯著水平。該模型的調(diào)整確定系數(shù)為R2=0.959 3,說明在該模型中對95.93%的響應(yīng)值有說服力,校正決定系數(shù)Radj2為0.907 0,因此說明該模型的建立可信度很高;失擬項(xiàng)F=32.88,說明失擬度對純誤差是不顯著的,p=0.002 8,可知誤差對失擬項(xiàng)的影響為0.28%。根據(jù)F值的大小可以看出3個(gè)因素對回收率的影響為A>C>B。

    通過2個(gè)因素相互作用和等高線的形狀反映各個(gè)因素之間影響程度的大小,通過圖4可以看出,在3個(gè)因素中,任意2個(gè)因素交互作用顯著,其中解析液體積(A)和吸附液濃度(B)對榛蘑皂苷回收率影響極其顯著。根據(jù)圖4結(jié)果,應(yīng)用Design-Expert 8.0.6軟件優(yōu)化出最佳回收率條件:解析液體積55.85 mL、吸附液濃度5.46 mg/mL、吸附液體積30 mL,此時(shí)回收率為56.37%。為驗(yàn)證預(yù)測值的準(zhǔn)確性,調(diào)整條件為解析液體積56 mL、吸附液質(zhì)量濃度5.5 mg/mL、吸附液體積30 mL。在該條件下進(jìn)行3次驗(yàn)證試驗(yàn),其平均回收率為56.12%。

    圖4 不同影響因素交互作用的響應(yīng)曲面和等高線圖

    通過最佳純化榛蘑總皂苷工藝條件對榛蘑粗皂苷進(jìn)行提純,未經(jīng)純化的榛蘑總皂苷的含量為34.51%,純化后的平均總皂苷含量達(dá)到63.5%。

    表5 純化后的榛蘑總皂苷含量

    2.3 抑制酶活性測定試驗(yàn)

    糖尿病作為一種高血糖型的慢性疾病,近些年發(fā)病率逐年升高,而作為能有效治療糖尿病的新型藥物α-葡萄糖苷酶抑制劑和α-淀粉酶抑制劑對身體有著肝損傷、胃脹、腹瀉等副作用。所以,開發(fā)一種藥食同源的天然的抑制劑有著重要研究意義。

    從圖5看出:隨著榛蘑總皂苷質(zhì)量濃度增加,榛蘑總皂苷對a-葡萄糖苷酶和a-淀粉酶抑制率先增加后趨于平緩;質(zhì)量濃度25 mg/mL時(shí),a-葡萄糖苷酶和a-淀粉酶的抑制率達(dá)到最高,分別為38.73%和52.58%??梢婇荒⒖傇碥諏-淀粉酶的抑制活性要優(yōu)于對a-葡萄糖苷酶的抑制活性。通過圖5、圖6比對可以看出,榛蘑總皂苷的酶抑制活性低于對照品阿卡波糖。

    圖5 榛蘑總皂苷對酶活性影響

    圖6 阿卡波糖對酶活性影響

    3 結(jié)論

    利用大孔吸附樹脂對榛蘑總皂苷進(jìn)行純化。通過對6種不同類型的大孔吸附樹脂進(jìn)行考察,得到純化榛蘑總皂苷的最佳樹脂為D101型大孔吸附樹脂,通過響應(yīng)面試驗(yàn)確立優(yōu)化純化工藝條件:上樣質(zhì)量濃度5.46 mg/mL、上樣體積30 mL、解析液體積55.85 mL。在此條件下,回收率可達(dá)56.37%以上,榛蘑總皂苷純度也由34.51%提高至63.5%。

    對純化后的榛蘑總皂苷進(jìn)行抑制酶活性試驗(yàn),結(jié)果表明榛蘑總皂苷對a-葡萄糖苷酶和a-淀粉酶有一定抑制作用,為進(jìn)一步開發(fā)榛蘑和榛蘑總皂苷天然糖苷酶和淀粉酶抑制劑提供理論基礎(chǔ)。

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