江紅霞,李屹錚,張 冉,王 磊,張 猛,于 淼,喬志剛,李學(xué)軍
(河南師范大學(xué)水產(chǎn)學(xué)院,水產(chǎn)動物疾病控制河南省工程實驗室,河南省水產(chǎn)動物養(yǎng)殖工程技術(shù)研究中心,河南新鄉(xiāng) 453007)
克氏原螯蝦(Proambausclarkii),隸屬于節(jié)肢動物門(Arthropoda)甲殼綱(Crustacea)十足目(Decapoda)螯蝦科(Cambaridae)原螯蝦屬(Procambarus),是我國重要的淡水蝦類養(yǎng)殖品種??耸显r整體產(chǎn)業(yè)在我國具有非常重要的經(jīng)濟地位,據(jù)中國漁業(yè)統(tǒng)計年鑒(2020)數(shù)據(jù)顯示,2019年,全國克氏原螯蝦養(yǎng)殖產(chǎn)量達(dá)到208.960 4萬t,在淡水甲殼動物養(yǎng)殖中位居第一[1]。隨著克氏原螯蝦養(yǎng)殖規(guī)模的不斷擴大,規(guī)?;B(yǎng)殖場需要在同一時期內(nèi)提供規(guī)格整齊的苗種,因此,如何促進克氏原螯蝦卵巢同步發(fā)育并提高其抱卵量已成為克氏原螯蝦規(guī)?;B(yǎng)殖產(chǎn)業(yè)中重要的研究課題。
目前,在水產(chǎn)甲殼動物的規(guī)?;庇?,廣泛應(yīng)用人工摘除雌性蝦蟹的眼柄的方法來促進卵巢的同步發(fā)育、快速成熟并提高抱卵量。但眼柄摘除會使親蝦親蟹的卵巢因失去性腺抑制激素的調(diào)控而始終處在旺盛的發(fā)育狀態(tài),后期卵巢發(fā)育成熟和排卵的速度過快,致使卵黃積累不足,卵子質(zhì)量降低,生產(chǎn)的蝦蟹苗容易死亡。同時眼柄摘除手術(shù)對親蝦親蟹的損傷較大,死亡率也較高[2]。因此,尋找新的人工調(diào)控方法成為其規(guī)模化繁育中亟待解決的問題。
核糖體是有機體細(xì)胞中合成蛋白質(zhì)的機器,而核糖體蛋白(ribosomal protein,RP)是組成核糖體的重要成分。但是合成蛋白質(zhì)傳遞遺傳信息并不是RP的唯一功能,它們還具有強大的核糖體外功能[3-6]。此外,許多研究發(fā)現(xiàn)RP還參與許多生物體卵巢的發(fā)育過程,例如,在海膽(Paracentrotuslividus)卵子發(fā)生過程中,核糖體蛋白S24(RPS24) mRNA表達(dá)量增加[7];核糖體蛋白L10a(RPL10a)和核糖體蛋白S3a(RPS3a)在墨吉明對蝦(Fenneropenaeusmerguiensis)卵巢發(fā)育過程中起著刺激因子的作用[8-10];對虹鱒(Oncorhynchusmykiss)的研究表明RPL10a基因在虹鱒魚染色質(zhì)核仁期和周邊核仁期的卵巢中高表達(dá),證明該基因在虹鱒魚卵巢發(fā)育的早期進程中起重要的作用[11];核糖體蛋白L24(RPL24)基因在日本囊對蝦(Marsupenaeusjaponicas)所有器官中的表達(dá)量以在卵巢中為最高,表明RPL24在十足目甲殼動物的卵子發(fā)生和卵巢發(fā)育中也具有重要的作用[12]。
目前,有關(guān)克氏原螯蝦卵巢發(fā)育和產(chǎn)卵的調(diào)控的研究已有不少報道[13-17],但有關(guān)核糖體蛋白在該蝦卵巢發(fā)育過程中的調(diào)控作用的研究迄今為止尚未見報道。本研究從克氏原螯蝦的卵巢中克隆得到一種核糖體蛋白S24(RPS24)基因的全長cDNA序列,命名為PcRPS24基因。對該基因的cDNA序列進行了生物信息學(xué)分析,并對該基因在克氏原螯蝦的不同發(fā)育階段、成蝦的不同的組織和不同發(fā)育時期的卵巢中的表達(dá)模式進行了檢測,以期為克氏原螯蝦卵巢同步發(fā)育的調(diào)控研究提供一定的基礎(chǔ)資料。
試驗用蝦來自河南師范大學(xué)水產(chǎn)養(yǎng)殖基地,養(yǎng)殖水溫20~25 ℃,每天早晚各投喂商品飼料1次,1周換水1次。采集克氏原螯蝦不同發(fā)育階段的樣品,即無節(jié)幼體期、蚤狀幼體期的受精卵,出膜后5 d和15 d的尚不能分辨雌雄的整只蝦樣品,出膜后30 d、60 d和100 d的能分辨雌雄的雌蝦的頭胸甲樣品,以及卵巢發(fā)育至Ⅰ期的成年雌蝦的頭胸甲樣品;卵巢發(fā)育處于Ⅰ期的成年雌性克氏原螯蝦的不同組織樣品,即卵巢、肝胰腺、心臟、胃、腸、腦、眼柄、肌肉、鰓和腹神經(jīng)索共10種組織;以及成年雌蝦的Ⅰ-Ⅵ期的不同發(fā)育階段的卵巢樣品(Ⅰ期:卵原細(xì)胞增殖期;Ⅱ期:卵黃發(fā)生前期;Ⅲ期:初級卵黃發(fā)生期;Ⅳ期:次級卵黃發(fā)生期;Ⅴ期:成熟期;Ⅵ期:恢復(fù)期)。每種試驗樣品采集6尾蝦為1組,樣品獲得后立即放入RNAstore Reagent(天根,北京)中,并于-80 ℃冰箱保存,直到進行RNA的提取。
按試劑盒Total RNA kit Ⅱ(Omega公司)的說明書對克氏原螯蝦卵巢組織提取總RNA。利用NanoDrop 2000c微量紫外分光光度計(Thermo,美國)測定RNA的濃度和純度,并利用1.5%的瓊脂糖凝膠電泳檢測RNA完整性。然后按primeScriptTMRT Master Mix試劑盒(TaKaRa,大連)的說明書合成第一鏈cDNA。根據(jù)本實驗室克氏原螯蝦轉(zhuǎn)錄組測序中得到的PcRPS24基因片段設(shè)計中間片段引物:PcRPS24-F和PcRPS24-R(表1),以克氏原螯蝦卵巢cDNA作為模板進行PCR擴增,獲得PcRPS24基因的中間片段序列,PCR 反應(yīng)程序為:94 ℃預(yù)變性2 min,94 ℃ 30 s,55 ℃ 30 s,72 ℃ 2 min,36 個循環(huán),終延伸72 ℃ 10 min。在已獲得的中間片段序列的基礎(chǔ)上設(shè)計3′ RACE和5′ RACE的特異性引物PcRPS24-3′-GSP和PcRPS24-5′-GSP(表1),采用SMARTer?RACE 5′/3′ Kit(Clontech公司)試劑盒,利用試劑盒中的通用引物(universal primer,UMP)和設(shè)計的3′ RACE和5′ RACE特異性引物分別擴增目的基因的3′和5′末端序列,反應(yīng)程序按照試劑盒的說明書設(shè)定。PCR擴增產(chǎn)物回收純化、連接轉(zhuǎn)化后挑選陽性克隆送至上海英駿生物技術(shù)有限公司測序。將所獲得的中間片段序列、3′和5′端序列拼接后獲得PcRPS24基因cDNA全長序列。
使用在線軟件對PcRPS24進行序列分析,包括開放閱讀框的預(yù)測(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/gorf/orfig.cgi)、蛋白的理論相對分子質(zhì)量以及理論等電點的預(yù)測(http://web.expasy.org/compute_pi/)、蛋白的磷酸化位點預(yù)測(http://www.dabi.temple.edu/disphos/)和蛋白三維結(jié)構(gòu)預(yù)測(https://swissmodel.expasy.org/interactive)等。應(yīng)用ClustalX 2程序進行氨基酸多重序列比對(http://clustalw.ddbj.nig.ac.jp/),應(yīng)用MEGA 5.0軟件以鄰接法構(gòu)建系統(tǒng)進化樹。
PcRPS24基因在克氏原螯蝦不同發(fā)育時期、成蝦的不同組織和不同發(fā)育階段的卵巢中的表達(dá)模式利用實時熒光定量PCR(QPCR)法進行。首先按試劑盒Total RNA kit Ⅱ(Omega公司)的說明書對克氏原螯蝦的不同樣品提取總RNA。RNA的濃度、純度和完整性的檢測同1.2。使用PrimeScript?RT reagent Kit with gDNA Eraser(TaKaRa,大連)試劑盒對組織的總RNA進行反轉(zhuǎn)錄。依據(jù)已克隆的PcRPS24基因cDNA全長序列設(shè)計熒光定量引物PcRPS24-qf和PcRPS24-qr,以18S-RNA為內(nèi)參基因(表1)。使用CFX96 實時熒光 PCR檢測系統(tǒng)(Bio-Rad,USA)和SYBR?Premix Ex TaqTMII(TaKaRa,大連)試劑進行QPCR,反應(yīng)體系(25 μL):SYBR?Premix Ex Taq II 12.5 μL,上、下游引物各1.0 μL,cDNA模板2.0 μL,ddH2O 8.5 μL;反應(yīng)程序:95 ℃預(yù)變性30 s;95 ℃ 5 s,60 ℃ 30 s,共40個循環(huán)。每個樣本設(shè)置3個重復(fù),依據(jù)2-ΔΔCt法分析實驗樣本PcRPS24的相對表達(dá)量,SPSS 20.0軟件One-Way ANOVA統(tǒng)計分析所得的數(shù)據(jù),進行LSD和Duncan氏比較,以P<0.05作為具有顯著性差異,結(jié)果用平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤(mean±SE)表示。
所克隆序列經(jīng)測序和拼接,結(jié)果顯示PcRPS24基因cDNA序列全長438 bp,其中5′非編碼區(qū)長15 bp,3′非編碼區(qū)長60 bp,poly(A)尾前有1個加尾序列AATAAA。該基因開放閱讀框408 bp,編碼136個氨基酸,推導(dǎo)的蛋白分子質(zhì)量為15.686 ku,理論等電點為10.61,分子式為C695H1172N210O189S6,富含賴氨酸(Lys,17.6%)、甘氨酸(Ala,10.3%)、天冬氨酸(Arg,10.3%)和蘇氨酸(Thr,10.3%),含量最低的為半胱氨酸(Cys,0.7%)和組氨酸(His,0.7%)。另外,在該氨基酸序列上預(yù)測到有11個磷酸化位點,為1個絲氨酸(Ser)和10個蘇氨酸(Thr)(圖1),另外還有一個RPS24e 標(biāo)志序列。
圖1 PcRPS24基因全長cDNA序列和氨基酸序列分析Fig.1 Sequence analysis of the full-length cDNA and amino acid of PcRPS24ORF區(qū)的起始密碼子(ATG)和終止密碼子(TAA)用紅色標(biāo)注,橢圓形內(nèi)為預(yù)測的磷酸化位點,下劃線部分為RPS24e 標(biāo)志序列,長方形框內(nèi)為poly A加尾信號(AATAAA)
利用NCBI BLASTP軟件,將克氏原螯蝦與其他已知動物的RPS24氨基酸序列進行同源性比對。結(jié)果顯示克氏原螯蝦與其他已知動物的RPS24氨基酸序列相似性在72%~80%,其中與脊椎動物硬骨魚綱的八棘多刺魚的相似性最高,為79.84%,其次為黃鰭棘鯛和虹鱒,相似性均為79.07%,與無脊椎毛顎動物頭翼鋤蟲的相似性最低,為72.41%(表2)。利用Expasy 在線軟件預(yù)測了PcRPS24蛋白的三維結(jié)構(gòu),該蛋白具有5個α-螺旋和4個β-折疊結(jié)構(gòu)(圖2)。使用Clustal X2將克氏原螯蝦與其他已知節(jié)肢動物的RPS24氨基酸序列進行多重比對,發(fā)現(xiàn)所有已知節(jié)肢動物的RPS24均具有5個α-螺旋區(qū)和4個β-折疊區(qū),以及一個RPS24e標(biāo)志序列,其氨基酸序列結(jié)構(gòu)見圖3。利用MEGA 5.0構(gòu)建系統(tǒng)進化樹,RPS24進化分析發(fā)現(xiàn),進化樹分為兩大支,脊椎動物聚為一支,無脊椎動物聚為一支,克氏原螯蝦的RPS24與無脊椎動物昆蟲綱動物的RPS24聚為一支,親緣關(guān)系最近,而與陸生脊椎動物的親緣關(guān)系最遠(yuǎn)(圖4)。
表2 克氏原螯蝦與其他動物的RPS24氨基酸序列的同源性比對Tab.2 Comparative identity of amino acid sequence of RPS24 between P.clarkii and other animals
圖2 預(yù)測的PcRPS24蛋白三維結(jié)構(gòu)圖Fig.2 The predicred three-dimensiona structure of PcRPS24
圖3 克氏原螯蝦RPS24與其他節(jié)肢動物RPS24氨基酸序列比對Fig.3 Alignment of RPS24 in P.clarkii with those of other known arthropodas使用Clustal X進行多重序列比對,綠色框內(nèi)為α-螺旋區(qū),紅色框內(nèi)為β-折疊區(qū),桔色框內(nèi)為RPS24e 標(biāo)志序列
圖4 基于RPS24氨基酸序列的系統(tǒng)進化樹(Neighbor-Joining 法)Fig.4 Phylogenetic tree based on amino acid sequences of RPS24(Neighbor-Joining method)線的長度與遺傳距離成正比,克氏原螯蝦用“▲”表示
PcRPS24基因在克氏原螯蝦不同發(fā)育時期的表達(dá)模式如圖5所示。從無節(jié)幼體期開始PcRPS24基因的表達(dá)水平逐漸升高,在出膜后30 d時與在出膜后15 d時相比略微下降,然后又繼續(xù)升高,在卵巢發(fā)育至Ⅰ期的成蝦時達(dá)到最大值。卵巢發(fā)育至Ⅰ期的成蝦時和出膜后100 d時的PcRPS24基因表達(dá)水平無顯著差異,但均顯著高于無節(jié)幼體期、溞狀幼體期、出膜后5、15、30和60 d時的表達(dá)水平。
圖5 PcRPS24基因在克氏原螯蝦不同發(fā)育時期的表達(dá)模式Fig.5 Expression pattern of PcRPS24 gene in the development period of P.clarkii1.無節(jié)幼體;2.溞狀幼體;3.出膜后5 d;4.出膜后15 d;5.出膜后30 d;6.出膜后60 d;7.出膜后100 d;8.卵巢發(fā)育至Ⅰ期的成蝦。不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05)
PcRPS24 基因在成體克氏原螯蝦不同組織中的表達(dá)模式見圖6。結(jié)果顯示PcRPS24基因在所檢測的10個組織中均有表達(dá),但在肝胰腺中的相對表達(dá)量最高,其次為卵巢、肌肉、鰓和腦,這五個組織中的PcRPS24 基因表達(dá)量沒有顯著差別。腹神經(jīng)索中PcRPS24 基因表達(dá)量最低。PcRPS24在肝胰腺和卵巢中的基因表達(dá)量顯著高于心臟、胃、腸、眼柄和腹神經(jīng)索,心臟、胃、腸、眼柄和腹神經(jīng)索這五個組織中的PcRPS24 基因表達(dá)量沒有顯著差別。
圖6 PcRPS24基因在成年克氏原螯蝦各組織中的表達(dá)模式Fig.6 Expression pattern of PcRPS24 gene in different tissues of adult P.clarkii1.卵巢;2.肝胰腺;3.心臟;4.胃;5.腸;6.腦;7.眼柄;8.肌肉;9.鰓;10.腹神經(jīng)索。不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05)
在克氏原螯蝦不同發(fā)育階段的卵巢中均檢測到PcRPS24基因的表達(dá)(圖7),PcRPS24基因的表達(dá)量在Ⅰ期卵巢中最高,然后隨著卵巢的發(fā)育先逐漸下降,在Ⅳ期卵巢中又升高,隨后在Ⅴ期和Ⅵ期卵巢又下降,并在Ⅴ期卵巢中的表達(dá)量達(dá)到最低值。Ⅰ期卵巢中PcRPS24基因的表達(dá)量和Ⅱ期卵巢無顯著差異,但顯著高于Ⅲ、Ⅳ、Ⅴ和Ⅵ期卵巢中PcRPS24基因的表達(dá)量。
圖7 PcRPS24基因在不同發(fā)育時期的卵巢中的表達(dá)模式Fig.7 Expression pattern of PcRPS24 gene in different ovarian stages of P.clarkiiⅠ~Ⅵ:Ⅰ~Ⅵ期卵巢;不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05)
核糖體蛋白具有蛋白質(zhì)合成功能之外的其他作用,即核糖體外作用[18]。RPS24為核糖體40S小亞基的一個組成部分,對于RPS24基因的研究,目前多集中在RPS24基因異常表達(dá)與哺乳動物DBA先天性再生障礙性貧血[19-21]及癌癥發(fā)生[22-24]的關(guān)系方面,而RPS24 基因與生物體卵巢發(fā)育的關(guān)系的研究則十分有限[7]。
本研究克隆得到了RPS24 基因的cDNA 的全長序列PcRPS24基因。PcRPS24與其他已知節(jié)肢動物的RPS24氨基酸序列進行多重比對后發(fā)現(xiàn),這些動物RPS24的氨基酸序列均具有5個α-螺旋區(qū)和4個β-折疊區(qū),以及一個RPS24e 標(biāo)志序列,說明節(jié)肢動物的RPS24蛋白可能具有相似的結(jié)構(gòu)和功能。目前,已知動物的RPS24 mRNA前體可經(jīng)選擇性剪接產(chǎn)生4種轉(zhuǎn)錄本RPS24a、RPS24b、RPS24c和RPS24e,克氏原螯蝦和已知的節(jié)肢動物的RPS24氨基酸序列上均具有一個RPS24e 標(biāo)志序列,說明他們都應(yīng)該屬于RPS24e。RPS24系統(tǒng)進化分析發(fā)現(xiàn),克氏原螯蝦的RPS24與無脊椎動物昆蟲綱的RPS24聚為一支,這與克氏原螯蝦與昆蟲動物都屬于節(jié)肢動物門的分類地位是一致的。
在克氏原螯蝦的發(fā)育過程中,本研究發(fā)現(xiàn)隨著發(fā)育時間的延長,PcRPS24 基因的表達(dá)量有逐漸增加的趨勢,并在卵巢發(fā)育至Ⅰ期的成蝦時達(dá)到最大值。克氏原螯蝦在出膜后30 d后可以分辨雌雄,本實驗對雌蝦發(fā)育的研究結(jié)果說明隨著卵巢的分化和逐步發(fā)育,雌蝦對PcRPS24蛋白的需要量是逐漸增加的。在雌性克氏原螯蝦成蝦的各組織中,PcRPS24在卵巢中的表達(dá)量也高于除了肝胰腺之外的其他8種組織,表明PcRPS24蛋白在克氏原螯蝦的卵巢中可能起著重要的作用。
對PcRPS24基因在克氏原螯蝦不同發(fā)育階段的卵巢中的表達(dá)分析發(fā)現(xiàn),該基因的表達(dá)量在Ⅰ期卵巢中最高,然后隨著卵巢的發(fā)育逐漸下降,在Ⅳ期卵巢中又升高,隨后又下降,并在Ⅴ期卵巢中達(dá)到最低值。卵巢的發(fā)育過程伴隨著卵子的發(fā)生、發(fā)育和成熟。在克氏原螯蝦Ⅰ期到Ⅱ期卵巢的發(fā)育中,其主要事件為卵原細(xì)胞分化為卵母細(xì)胞,在Ⅰ-Ⅲ期的卵巢中,伴隨著卵原細(xì)胞分化為卵母細(xì)胞和卵母細(xì)胞的發(fā)育,PcRPS24的表達(dá)量逐漸下降。在Ⅳ期到Ⅴ期卵巢發(fā)育中,其主要事件為卵母細(xì)胞成熟分裂的啟動,在Ⅳ期卵巢中,PcRPS24的表達(dá)量伴隨著卵母細(xì)胞成熟分裂的啟動突然增高,但在Ⅴ期和Ⅵ期卵巢中,伴隨著卵子的成熟和排出,PcRPS24的表達(dá)量又逐漸下降,并在Ⅴ期卵巢中降至最低。據(jù)此推測PcRPS24在克氏原螯蝦卵巢中的功能可能與卵原細(xì)胞分化為卵母細(xì)胞和卵母細(xì)胞成熟分裂的啟動這兩個關(guān)鍵點有關(guān)。由于該基因的表達(dá)量在Ⅰ期卵巢中最高,推測PcRPS24在早期卵巢發(fā)育過程中的卵原細(xì)胞的分化中可能起最重要的作用。Navakanitworakul等[8]在研究墨吉明對蝦時發(fā)現(xiàn),RPS3a基因在該蝦卵巢發(fā)育的早期階段表達(dá)量最高,然后隨卵巢的發(fā)育是逐漸降低;Palasin等[9]的研究發(fā)現(xiàn)RPL10a蛋白能刺激墨吉明對蝦早期卵巢的發(fā)育,但對晚期卵巢不起作用;這兩項研究認(rèn)為RPS3a和RPL10a這兩種核糖體蛋白都在墨吉明對蝦卵巢發(fā)育的早期階段起重要的作用,可能是早期卵巢發(fā)育的刺激因子,這與本實驗對PcRPS24的研究結(jié)果基本一致。然而,Sgroi等[7]在研究海膽卵子發(fā)生過程中,發(fā)現(xiàn)RPS24 mRNA 表達(dá)量隨卵子的發(fā)育是逐漸增加的,這與本研究結(jié)果不一致,這可能與物種的不同有關(guān),但由于RPS24在不同動物卵巢和卵子發(fā)育過程中的作用的研究非常有限,具體原因尚需進行大量的不同物種的比較研究才能進一步確定。
總之,本研究克隆獲得了PcRPS24基因 cDNA 序列全長,通過生物信息學(xué)分析以及系統(tǒng)進化分析了解了該基因的序列特征和進化特點,通過熒光定量分析推測該基因的功能可能與克氏原螯蝦卵原細(xì)胞的分化和卵母細(xì)胞成熟分裂的啟動有關(guān),并可能在克氏原螯蝦卵巢早期發(fā)育階段中起最重要的作用。