劉卓,楊代瓊,李姣,陸瑩,盧昶雨
(1.河北地質(zhì)大學(xué) 實(shí)驗(yàn)實(shí)踐教學(xué)中心,河北 石家莊 050031;2.河北地質(zhì)大學(xué) 水資源與環(huán)境學(xué)院 河北省水資源可持續(xù)利用與開發(fā)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 河北省水資源可持續(xù)利用與產(chǎn)業(yè)結(jié)構(gòu)優(yōu)化協(xié)同創(chuàng)新中心,河北 石家莊 050031;3.西安市市政設(shè)施管理中心,陜西 西安 710016;4.復(fù)旦大學(xué) 環(huán)境科學(xué)與工程系,上海 200433)
近年來,國內(nèi)湖泊面臨著水質(zhì)逐年惡化、富營養(yǎng)化日益嚴(yán)重等問題,除了磷之外,氮也是限制湖泊富營養(yǎng)化的主要因子[1]。當(dāng)湖泊水體氮負(fù)荷較重時(shí),部分形態(tài)氮會(huì)通過沉淀或者由顆粒物吸附而蓄存于沉積物中,使沉積物成為湖泊水體污染物的重要蓄積庫[2-6]。
針對(duì)湖泊沉積物界面氮交換通量問題的研究方法有質(zhì)量衡算法、孔隙水?dāng)U散模型、表層沉積物模擬法、柱狀芯樣模擬法和水下原位模擬法[7]。各類方法對(duì)沉積物氮釋放通量的研究主要集中于營養(yǎng)鹽釋放通量流動(dòng)培養(yǎng)[8]、釋放通量的估算[9]、釋放通量影響因素等[10]。其大部分均是針對(duì)沉積物-水界面氮釋放通量的單獨(dú)研究,氮釋放通量對(duì)微生物群落結(jié)構(gòu)間的影響則相對(duì)較少。沉積物-水界面微生物群落中硝化細(xì)菌的群落結(jié)構(gòu)與各形態(tài)氮釋放通量有著密切的關(guān)系,氨氧化細(xì)菌(AOB)是硝化細(xì)菌中最主要的細(xì)菌之一,其可將氨氮轉(zhuǎn)化為亞硝酸鹽,使得亞硝酸鹽繼續(xù)轉(zhuǎn)化為硝酸鹽[11-13]。
滇池海埂地區(qū)位于滇池草海和外海交界處,成為了滇池的一處藍(lán)藻聚集帶,污染相對(duì)較為嚴(yán)重。截止到采樣時(shí)間,整個(gè)區(qū)域被兩層圍隔圍成面積為0.5 km2的封閉區(qū)域。本研究通過對(duì)海埂地區(qū)沉積物氮釋放的模擬,研究氮釋放過程中釋放通量對(duì)沉積物-水界面氨氧化菌群落結(jié)構(gòu)的影響,以期為研究及控制海埂地區(qū)水體富營養(yǎng)化提供基礎(chǔ)數(shù)據(jù)。
水樣、底泥、沉積物均取自滇池海??;去離子水。
3 L有機(jī)玻璃水樣采集器;PSC-1/40彼得森挖泥器;Mobio Powersoil Isolation Kit試劑盒(100次/盒);Applied Biosystems PCR擴(kuò)增器;sds-page變性梯度凝膠電泳(DGGE);S4 EXPLORER X-射線熒光分析儀。
對(duì)海埂區(qū)域內(nèi)4個(gè)具有代表性的點(diǎn)位(見圖1)進(jìn)行樣品采集,#1為技術(shù)集成示范區(qū)(湖泊內(nèi)源污染控制技術(shù)集成區(qū)域),僅進(jìn)行了短時(shí)間的藍(lán)藻清除工作;#2為風(fēng)浪較大區(qū)域;#3情況較為復(fù)雜,水深達(dá)3.5 m,位于兩層圍隔的航道之間,最外層圍隔并未把整個(gè)研究區(qū)圍成封閉式區(qū)域,因此#3的水體與外海水體之間有水質(zhì)交換;#4為水位最深處,水深達(dá)4 m。
圖1 采樣點(diǎn)分布示意圖Fig.1 Position of sampling sites
采用3 L有機(jī)玻璃水樣采集器采集水樣,采水器內(nèi)置溫度計(jì),可現(xiàn)場(chǎng)讀出水溫,水樣均在24 h內(nèi)帶回實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行分析。底泥使用彼得森挖泥器進(jìn)行采集,每個(gè)點(diǎn)位進(jìn)行多次采泥,每次采集表層底泥4~6 L,放入干凈盆中混勻,裝入保溫箱中,24 h內(nèi)帶回實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行模擬實(shí)驗(yàn)。
采用有機(jī)玻璃柱進(jìn)行沉積物氮釋放通量的模擬實(shí)驗(yàn)。有機(jī)玻璃柱下端封閉,上端帶有密封蓋子,沉積物(高度5 cm)灌入有機(jī)玻璃柱以后,通過虹吸法(防止底泥擾動(dòng))將去離子水緩慢注入有機(jī)玻璃柱,高度20 cm。實(shí)驗(yàn)4個(gè)點(diǎn)位沉積物釋放模擬反應(yīng)器分別放入恒溫培養(yǎng)箱。實(shí)驗(yàn)開始后,每天采樣1次,每次采樣位置為水面下10 cm處,每次采完水樣,立即向玻璃柱中注入等量的去離子水;同時(shí),采取模擬反應(yīng)器表層沉積物樣品2~5 g,用于沉積物DNA提取。實(shí)驗(yàn)持續(xù)41 d,每組實(shí)驗(yàn)均設(shè)置3組平行。
1.4.1 DNA提取 根據(jù)Mobio Powersoil Isolation Kit試劑盒的操作說明,對(duì)沉積物樣本進(jìn)行基因組DNA抽提。
1.4.2 PCR擴(kuò)增 AOB的PCR擴(kuò)增采用引物為CTO189fAB-GC(CCGCCGCGCGGCGGGCGGGGCGGG GGCACGGGGGGAGRAAAGCAGGGGATCG)、CTO189f C-GC(CGCCCGCCGCGCGGCGGGCGGGGCGGGGGCA CGGGGGGAGGAAAGTAGGGGATCG)和CTO654r(CTAGCYTTGTAGTTTCAAACGC)[14-15],40 μL的反應(yīng)體系組成如下:20 μL BioLinker 2×Taq Mix,引物上游各1 μL,引物下游1 μL,模板1 μL 和適量的雙蒸水補(bǔ)足40 μL。反應(yīng)條件:94 ℃,2 min;94 ℃,30 s; 56.4 ℃,30 s;72 ℃,30 s,30個(gè)循環(huán),最后在72 ℃下延伸5 min。
1.4.3 變性梯度凝膠電泳 (1)將20 μL PCR產(chǎn)物加入到8%(w/v)的聚丙烯酞胺凝膠(37.5∶1)中,凝膠的變性范圍為40%~60%[本研究中凝膠的100%變性為含有7 mol尿素和40%(v/v)的去離子甲酰胺(deionized Formamide)聚丙烯酰胺凝膠];(2)將Bio-Rad制膠裝置傾斜放置,通過Bio-Rad Model475 Gradient Delivery System灌膠系統(tǒng)以從頂部注入凝膠的填充方式進(jìn)行梯度灌膠;下層膠凝固1~1.5 h后,灌上層0%膠;凝膠灌制完畢后,插入梳子;放置1~1.5 h,待膠凝固后,移除梳子,將凝膠裝置放于Bio-Rad水浴系統(tǒng)中,使溫度保持60 ℃;(3)電泳條件為:溫度60 ℃,電壓80 V,緩沖液l × TAE,電泳時(shí)間16.5 h,電泳完畢后,取出凝膠裝置,置于磁鋼容器中,加入400 mL Biolinker DNA Red染色液進(jìn)行染色40 min;(4)置于Bio-Rad凝膠成像系統(tǒng)中觀察拍照,進(jìn)行凝膠影響分析。
1.4.4 樣品指標(biāo)的測(cè)定 水樣中各形態(tài)氮濃度采用國標(biāo)法《水和廢水檢測(cè)分析方法(第四版)》[16]測(cè)定;沉積物中TN過硫酸鉀消解法測(cè)定;底泥的pH值通過質(zhì)量與體積比1∶2.5的泥和水(0.01 mol/L KCl溶液)混合后測(cè)定渾濁液中的pH值[17];底泥中有機(jī)質(zhì)(OM)含量通過樣品在550 ℃下煅燒4 h,樣品質(zhì)量差進(jìn)行測(cè)定[18];樣品的金屬氧化物成分通過X射線熒光分析儀來測(cè)定。
1.5.1 底泥各形態(tài)氮釋放通量 采用公式(1)和(2)進(jìn)行計(jì)算[19]。
(1)
(2)
式中Mn——每次測(cè)定期內(nèi)的釋放量,mg;
V——泥樣上覆水的體積,L;
Cn——第n次采樣時(shí)水中營養(yǎng)鹽濃度,mg/L;
C0——泥樣上覆水的初始營養(yǎng)鹽濃度,mg/L;
Vn——每次采集水樣體積,L;
N——采樣次數(shù)。
1.5.2 香農(nóng)指數(shù)(Shannon) 用來估算樣品中微生物的多樣性指數(shù)之一,其公式為:
(3)
H為香農(nóng)指數(shù),S為DGGE膠中條帶數(shù)量,Pi為第i條帶灰度占該樣品總灰度的比率。豐富度指數(shù)(S)即為某個(gè)樣本中所有條帶的總和。
1.5.3 均勻度指數(shù)(E) 用來描述群落中個(gè)體數(shù)量在物種中的分布均勻狀況,亦是群落多樣性指數(shù)之一,其公式為[20]:
E=H/Hmax=H/lnS
(4)
1.5.4 辛普森指數(shù)(D) 用來測(cè)定群落中物種多樣性指數(shù)之一,其公式為[21]:
(5)
式中Ni為物種個(gè)體數(shù),N為總個(gè)體數(shù)。
同時(shí)采用Quantiy one對(duì)微生物群落DGGE圖譜進(jìn)行分析、Canoco4.5用于主成分分析(PCA)和冗余分析(RDA),Mothur等軟件開展基于PCR-DGGE技術(shù)的氨氧化菌群落多樣性研究。
4種沉積物的理化性質(zhì)見表1。
表1 4種沉積物的理化特性(均值±標(biāo)準(zhǔn)誤差)Table 1 Physicochemical properties(mean value± standard deviation) of four sediments
由表1可知,相比其他點(diǎn)位沉積物,#3沉積物中TN含量較高,其可能造成該點(diǎn)位較高的氮釋放通量。有研究指出[22-24],較高的有機(jī)質(zhì)和金屬氧化物含量有利于沉積物對(duì)各形態(tài)氮的吸附,因此會(huì)導(dǎo)致上覆水中氮含量的減小,其中#1沉積物含有較高的金屬氧化物含量,該點(diǎn)位沉積物對(duì)上覆水中各形態(tài)氮有較強(qiáng)的吸附能力,可能會(huì)影響實(shí)驗(yàn)中沉積物氮的釋放。沉積物中pH會(huì)影響AOB群落結(jié)構(gòu),AOB最適生長pH為7.5~8.0,因此,#2和#3沉積物中AOB群落多樣性會(huì)相對(duì)較高。
見圖2(a),NH4-N釋放通量在實(shí)驗(yàn)第1 d達(dá)到最高值1.25 mg/(m2·d),且#3的NH4-N釋放通量遠(yuǎn)大于其他三個(gè)點(diǎn)位底泥的釋放通量,這可能由于該點(diǎn)位沉積物TN含量最高所導(dǎo)致。此外,在第25 d,NH4-N的釋放通量幾乎接近0 mg/(m2·d),這說明在25 d時(shí),底泥已不再向上覆水釋放NH4-N,且上覆水中NH4-N的濃度也較低;由圖2(a)可知,在底泥NH4-N釋放過程中,NH4-N的釋放通量在0~7 d是快速減小階段,在8~25 d內(nèi),其釋放通量是緩慢減小階段,直至趨于0;當(dāng)釋放通量接近于0時(shí),這表明上覆水中的NH4-N濃度也處于一個(gè)相對(duì)低的狀態(tài),這可能是由于在整個(gè)模擬底泥釋放的系統(tǒng)中,底泥表層的硝化菌,尤其是AOB在起作用。
由圖2(b)可知,#2的NO2-N釋放通量在第4 d達(dá)到了最高,0.03 mg/(m2d),其他3個(gè)點(diǎn)位底泥均在第5 d時(shí)釋放通量達(dá)到最高,依次為#3[0.09 mg/(m2d)]>#4[0.04 mg/(m2d)]>#1[0.035 mg/(m2d)],其中#3沉積物NO2-N的釋放通量最大,在第6~15 d內(nèi),NO2-N的釋放通量又迅速下降,趨向平衡。NO2-N的釋放通量呈現(xiàn)先增加后減小的趨勢(shì),這主要是由于實(shí)驗(yàn)開始階段,沉積物向上覆水釋放大量的NH4-N,經(jīng)過一定時(shí)間,NH4-N被氧化成NO2-N,在反應(yīng)器內(nèi),AOB是導(dǎo)致該現(xiàn)象的主要原因。
圖2 NH4-N和NO2-N釋放通量的變化曲線Fig.2 Changes of NH4-N and NO2-N fluxes
4個(gè)點(diǎn)位在不同時(shí)間點(diǎn)AOB群落結(jié)構(gòu)的多樣性指數(shù)見表2。
由表2可知,#1的Shannon Wiener指數(shù)呈現(xiàn)一個(gè)先增后減的趨勢(shì),在第13 d時(shí)達(dá)到2.434,說明#1的AOB數(shù)量和種類達(dá)到一定程度“飽和”后開始下降。#2的Shannon Wiener指數(shù)在第4 d時(shí)達(dá)到最大值2.280,這可能是因?yàn)?2的底泥性質(zhì)導(dǎo)致AOB的繁殖速度較快所造成。#3的Shannon Wiener指數(shù)較小,在1.446~1.887之間,且前13 d內(nèi),指數(shù)大小變化不大(約為1.5),在第21 d時(shí),指數(shù)大小迅速增大,說明AOB群落的多樣性上升。#4的Shannon Wiener指數(shù)所呈現(xiàn)的規(guī)律與#3相似,前13 d指數(shù)大小在2.005~2.170之間,變化不大,第21 d時(shí)指數(shù)大小增加至2.341,說明AOB群落的多樣性上升。Simpson指數(shù)亦是反映群落多樣性的一項(xiàng)指標(biāo),見表2,Simpson指數(shù)與Shannon Wiener指數(shù)的變化趨勢(shì)基本一致。
表2 AOB多樣性指數(shù)表Table 2 Diversity values of AOB
豐富度指數(shù)是指樣品中所有條帶數(shù)總和,由表2可知,第13 d時(shí),#1的豐富度指數(shù)最大,即條帶數(shù)最多,此時(shí)#1的樣品中AOB物種數(shù)量最多,這也從側(cè)面反映了#1在第13 d的AOB群落的多樣性最高,和Shannon Wiener指數(shù)變化所呈現(xiàn)的趨勢(shì)一樣。#2的豐富度指數(shù)在16~18之間,變化不大,AOB物種數(shù)量變化較小。#3在前13 d內(nèi),各樣品條帶數(shù)相同,說明物種數(shù)量基本不變,在第21 d時(shí),條帶數(shù)量迅速上升,說明#3樣品中AOB物種數(shù)量增加,群落多樣性也隨之發(fā)生變化。#4的豐富度指數(shù)則呈現(xiàn)一個(gè)上升的趨勢(shì),物種數(shù)量也穩(wěn)步增加。
氨氧化菌DGGE電泳圖見圖3(a),從第1 d起,到第9 d,AOB條帶總數(shù)、種類及灰度都發(fā)生了較大的變化,尤其是第9 d到第21 d過程中,條帶數(shù)遠(yuǎn)大于前5個(gè)時(shí)期,說明在第21 d時(shí),4個(gè)點(diǎn)位泥-水界面AOB的群落較為豐富,且結(jié)構(gòu)發(fā)生了較大的變化。同時(shí)部分條帶的灰度增大也說明了相關(guān)種群在泥-水界面占據(jù)了一定優(yōu)勢(shì)。在沉積物氮釋放的前9 d,NH4-N的釋放通量大幅度減小,除#3沉積物,其他3個(gè)點(diǎn)位沉積物NH4-N的釋放通量在第9 d 時(shí)均趨向于0,沉積物-水界面AOB活躍,因此1~13 d的AOB條帶總數(shù)變化較大。9~21 d期間,可能是由于硝化菌中的亞硝酸鹽氧化菌的活躍導(dǎo)致條帶數(shù)的增多。
見圖3(b),相較第21 d時(shí)AOB群落結(jié)構(gòu),#1、#2、 #3和#4均在第6 d時(shí)菌群結(jié)構(gòu)變化最大,與第21 d 的相似度分別降至58.9%,76.9%,69.5%,57.6%;#1、#2、#3和#4底泥在第1,4,6,9 d菌群結(jié)構(gòu)變化較為平緩,AOB種群結(jié)構(gòu)無明顯變化,在前9 d 的4個(gè)時(shí)間段與第21 d的相似度分別維持在58%~65%,76%~79%,69%~74%和57%~69%,這表明在9 d以內(nèi),不同種類的AOB在適應(yīng)環(huán)境變化的此消彼長,9 d以后,AOB種群結(jié)構(gòu)發(fā)生變化,這也是導(dǎo)致前9 d NH4-N的釋放通量快速減小,NO2-N的釋放通量先增加后減小,變化不穩(wěn)定的主要原因之一;此外,#1和#4,在整個(gè)實(shí)驗(yàn)過程中,前9 d的AOB菌群結(jié)構(gòu)與第21 d相比變化較大,主要是由于這兩個(gè)點(diǎn)位沉積物pH值較低,迫使AOB群落不斷適應(yīng)環(huán)境而導(dǎo)致結(jié)構(gòu)變化。
圖3 氨氧化菌DGGE凝膠電泳圖像(a)和經(jīng)過Quantity One處理過后的電泳圖(b)Fig.3 DGGE pattern of AOB(a) and DGGE pattern after the treatment by Quantity One(b)1~6樣品分別表示第1,4,6,9,13,21 d樣品
圖4(a)為各點(diǎn)位AOB主成分分析,第一主成分可以解釋總變量的57.2%,第二主成分可以解釋總變量的20.4%,兩個(gè)主成分共同解釋隨時(shí)間AOB群落變化的77.6%。4個(gè)點(diǎn)位的AOB群落結(jié)構(gòu)在圖上分別成簇出現(xiàn),同一點(diǎn)位各時(shí)間段樣品在主成分1和2上無明顯差異,各點(diǎn)位之間在主成分1和2上表現(xiàn)差異明顯。#3與其他3個(gè)點(diǎn)位在主成分1上有顯著差異,說明#3沉積物-水界面AOB對(duì)主成分1代表的群落分布結(jié)構(gòu)與其他3個(gè)點(diǎn)位不同。#2和#4沿PC2軸兩端分布,#2和#4兩個(gè)點(diǎn)位群落在主成分2上有顯著差異,說明#2泥-水界面AOB對(duì)主成分2代表的群落分布結(jié)構(gòu)與#4不同[25-26]。
將DGGE圖譜數(shù)字化的4個(gè)點(diǎn)位各時(shí)間段AOB群落信息與實(shí)驗(yàn)系統(tǒng)中氨氮、亞硝氮、硝氮、pH和時(shí)間(Day)這5個(gè)外界環(huán)境因子進(jìn)行冗余分析,考察不同點(diǎn)位不同時(shí)間段AOB和NOB與環(huán)境因子變量之間的關(guān)系。分析結(jié)果見圖4(b),用箭頭表示各個(gè)環(huán)境因子,不同形狀的圖形表示不同點(diǎn)位樣品的群落結(jié)構(gòu)信息,箭頭的長度表示AOB群落結(jié)構(gòu)與該環(huán)境因子相關(guān)系數(shù)的大小,連線越長,相關(guān)性越高;箭頭和排序軸所構(gòu)成的夾角大小表示箭頭代表的環(huán)境因子與排序軸相關(guān)性大小,夾角度數(shù)越小,相關(guān)性越高,箭頭所處的象限表示該環(huán)境因子與排序軸相關(guān)系數(shù)的正負(fù)。
圖4 4個(gè)點(diǎn)位沉積物實(shí)驗(yàn)期間AOB群落多樣性PCA(a)和RDA(b)分析Fig.4 PCA(a) and RDA(b) of AOB community diversity for four sediments
由圖4(b)可知,本研究中,RDA分析結(jié)果的雙序圖表明了各環(huán)境因子對(duì)各點(diǎn)位各時(shí)間段樣品的影響:#4的大部分時(shí)間點(diǎn)樣品(組Ⅰ)受到了NH4-N的顯著影響,#2的4~21 d的時(shí)間點(diǎn)和#3的13~21 d 時(shí)間點(diǎn)樣品(組Ⅱ)主要受到pH和NO3-N的影響,且受pH影響顯著,#3的1~9 d和#1各樣品(組Ⅲ)受到了NO2-N的影響,但影響不顯著。
第一軸能解釋AOB群落結(jié)構(gòu)異變的28.4%,反映AOB群落結(jié)構(gòu)和環(huán)境因子的相關(guān)系數(shù)為0.814;第二軸能解釋AOB群落結(jié)構(gòu)異變的9.3%,反映AOB群落結(jié)構(gòu)和環(huán)境因子的相關(guān)系數(shù)為0.753,前兩軸解釋群落結(jié)構(gòu)變化達(dá)到37.7%。#2和#4各時(shí)間段樣品分別位于第一軸左右兩端,說明#2和#4各時(shí)間點(diǎn)對(duì)環(huán)境適應(yīng)的特點(diǎn)上相似;#1位于第二軸下端;#3則交替沿第二軸分布,說明#3各時(shí)間點(diǎn)樣品適應(yīng)環(huán)境的能力不同。NH4-N和pH與群落結(jié)構(gòu)之間呈現(xiàn)了較好的相關(guān)性,數(shù)值分別為0.549 5和-0.472 1,通過Monte Carlo法檢驗(yàn)后顯示,p值分別為0.02和0.016,皆達(dá)到顯著水平(p<0.05)。NO2-N、NO3-N和時(shí)間與AOB群落結(jié)構(gòu)相關(guān)性較低,且沒達(dá)到顯著水平(p>0.05)。根據(jù)最大相關(guān)性得出結(jié)論,pH和NH4-N對(duì)AOB群落分布結(jié)構(gòu)影響顯著[27-28]。
底泥表層AOB群落結(jié)構(gòu)隨著各形態(tài)氮釋放通量變化而不斷變化;PCR-DGGE技術(shù)分析發(fā)現(xiàn),隨著時(shí)間的變化,AOB群落在第9 d或13 d群落多樣性最豐富,這也是實(shí)驗(yàn)?zāi)M過程中,NH4-N釋放通量在開始的前9 d迅速減小,NO2-N釋放通量在13 d內(nèi)濃度達(dá)到最高值的主要原因;4個(gè)點(diǎn)位的AOB群落結(jié)構(gòu)在圖上分別成簇出現(xiàn),同一點(diǎn)位各時(shí)間段在主成分上無明顯差異;pH和NH4-N對(duì)AOB和NOB群落分布結(jié)構(gòu)影響顯著。