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    T細胞受體信號轉(zhuǎn)導(dǎo)機制

    2021-11-13 16:27:48徐曉敏李華
    藥學(xué)進展 2021年8期
    關(guān)鍵詞:信號

    徐曉敏 ,李華

    (1. 中國科學(xué)院分子細胞科學(xué)卓越創(chuàng)新中心,上海 200031;2. 國科大杭州高等研究院,浙江 杭州 310000)

    目前,以T細胞受體工程化T細胞(T cell receptor-engineered T cell,TCR-T)和嵌合抗原受體T細 胞(chimeric antigen receptor T cell,CAR-T)療法為主流的過繼性T細胞免疫療法成為腫瘤免疫治療的一大熱點。通過向天然的T細胞中轉(zhuǎn)入識別腫瘤抗原的T細胞受體(T cell receptor,TCR)α/β異二聚體或嵌合抗原受體(chimeric antigen receptor,CAR),T細胞便能夠高效地識別靶抗原,在體內(nèi)發(fā)揮抗腫瘤免疫功能。CAR-T療法是過繼性免疫療法中研究較為火熱的一員,目前已上市的產(chǎn)品以及處于臨床階段的CAR-T產(chǎn)品多針對于血液瘤,對于實體瘤的治療效果較差。分析其中原因,主要在于實體瘤的細胞療法存在不少難點,例如不同類型實體瘤的異質(zhì)性大、缺乏獨特的腫瘤相關(guān)抗原作為治療靶點、T細胞無法定向遷移到腫瘤部位、CAR-T的增殖能力和抗凋亡能力等持續(xù)性不夠以及腫瘤內(nèi)復(fù)雜的微環(huán)境對TCR有抑制作用等。雖然CAR-T與TCR-T都與通用的細胞治療兼容,并且能夠誘導(dǎo)有效的抗腫瘤反應(yīng),但TCR-T顯示出一些獨特的特性,使其在治療具有挑戰(zhàn)性的實體瘤時具有獨特的優(yōu)勢,但這種優(yōu)勢背后具體的分子機制尚不完全清楚。因此本文主要針對現(xiàn)有的文獻報道,從TCR和CAR本身結(jié)構(gòu)和信號轉(zhuǎn)導(dǎo)差異等方面出發(fā)來理解這種臨床治療上的差異,這對于理解TCR-T針對實體瘤的治療優(yōu)勢具有重要意義。

    1 T細胞受體的結(jié)構(gòu)

    TCR是所有T細胞表面表達的由基因重排產(chǎn)生的天然抗原受體,它與CAR之間存在許多不同。與CAR的單鏈結(jié)構(gòu)不同,TCR由2條高度可變肽鏈組成異二聚體,包括TCR2(α/β)和TCR1(γ/δ)。由于攜帶αβ肽鏈的T細胞占了絕大多數(shù)(98%),所以接下來提及的TCR都默認(rèn)為TCR2(α/β)。TCRα鏈和β鏈均各有1個可變抗原結(jié)合區(qū)、1個恒定區(qū)和1個跨膜結(jié)構(gòu)域。但TCR鏈并不具備獨立傳遞信號的能力,這是由于TCR的2條肽鏈(αβ)胞內(nèi)區(qū)很短,無法獨立傳遞信號(見圖1)。這種結(jié)構(gòu)特性使得其必須通過跨膜區(qū)(帶正電荷)與分化簇3(cluster of differentiation 3,CD3)分子帶負(fù)電的跨膜區(qū)非共價結(jié)合,形成TCR-CD3復(fù)合物,進而將TCR識別抗原的信號傳遞到胞內(nèi),將抗原特異性識別與效應(yīng)反應(yīng)結(jié)合起來,啟動一系列信號反應(yīng)。TCR通過1個抗原識別亞基(TCRαβ)和3個CD3信號亞基(CD3δε,CD3γε和CD3ζζ)形成八聚體,而CD3γ,CD3δ和CD3ε鏈各含有1個免疫受體酪氨酸活化基序(immunoreceptor tyrosinebased activation motif,ITAM)基序,CD3ζ鏈含有3個ITAM基序,因此1個TCR-CD3復(fù)合物共含有10個ITAM基序和20個關(guān)鍵的酪氨酸磷酸化位點[1](見圖1)。這些ITAM基序中的酪氨酸磷酸化在TCR信號轉(zhuǎn)導(dǎo)過程中發(fā)揮重要作用。2019年,Dong等[2]報道了配體未結(jié)合狀態(tài)下人TCR-CD3復(fù)合物的冷凍電鏡(cryo-EM)結(jié)構(gòu),分辨率為3.7 ?,并以TCRαβ/CD3δε/CD3γε/CD3ζζ的化學(xué)計量1∶1∶1∶1進行組裝,這與生化實驗所得結(jié)果相呼應(yīng),進一步證實了TCR-CD3復(fù)合物的結(jié)構(gòu)組成。

    與TCR-CD3復(fù) 合 物 相比,1個CAR分 子通常由1個包含輕重鏈可變區(qū)域的單鏈可變區(qū)片段(single-chain variable fragment,scFv)抗體的胞外抗原識別結(jié)構(gòu)域、跨膜區(qū)和胞內(nèi)區(qū)組成(見圖1)。CAR的跨膜區(qū)與T細胞的跨膜區(qū)功能一樣,具有錨定作用,可以將CAR固定在T細胞膜上,使其穩(wěn)定地發(fā)揮信號轉(zhuǎn)導(dǎo)功能。CAR的胞內(nèi)區(qū)則由1個(二代CAR)或2個(三代CAR)共刺激受體和CD3ζ胞內(nèi)結(jié)構(gòu)域構(gòu)成。與TCR一樣,CAR信號序列上同樣具有多個ITAM,能將CAR接收到的抗原信號轉(zhuǎn)化為活化信號,激活T細胞,使其增殖并分化為效應(yīng)性的T細胞,發(fā)揮抗腫瘤等免疫應(yīng)答功效。但是與天然的TCR相比,CAR僅含有3個ITAM。一項對小鼠TCR信號轉(zhuǎn)導(dǎo)的研究表明,低多樣性的ITAM足以誘導(dǎo)細胞因子的產(chǎn)生,但TCR驅(qū)動的細胞增殖需要高多樣性ITAM,從而揭示了TCR信號轉(zhuǎn)導(dǎo)具有分級性質(zhì)[3]。此外,更大的ITAM多樣性能夠介導(dǎo)更強的下游信號轉(zhuǎn)導(dǎo)[4],以確保更高比例的細胞在抗原刺激下被激活,而不是簡單地放大單個T細胞的信號強度。因此,合適的ITAM數(shù)量也許在T細胞功能發(fā)揮中具有重要作用。表1對TCR與CAR的特性做了比較。

    表1 T細胞受體和嵌合抗原受體的特性對比Table 1 Comparison of characteristics between T cell receptor and chimeric antigen receptor

    圖1 T細胞受體和嵌合抗原受體的結(jié)構(gòu)示意圖Figure 1 Structure diagrams of T cell receptor and chimeric antigen receptor

    2 T細胞受體的抗原識別

    TCR和CAR識別的抗原類型不同。TCR能夠識別由主要組織相容性復(fù)合物(major histocompatibility complex,MHC)呈遞的抗原,CAR則利用其scFv識別細胞表面分子。目前的生物信息學(xué)預(yù)測表明,大約27%的人類蛋白質(zhì)組包含膜整合結(jié)構(gòu),這些結(jié)構(gòu)可能在細胞表面表達,因此這些蛋白質(zhì)能夠被CAR識別[12-13]。這同時也意味著有很大一部分表達在癌細胞內(nèi)的潛在靶點因不能被CAR有效識別而不適用于CAR-T療法。相比之下,TCR可以識別來自整個蛋白質(zhì)組的抗原表位,包括位于細胞表面、細胞質(zhì)和細胞核內(nèi)的靶標(biāo)分子。因此,相對于CAR,TCR可以識別更為廣泛的抗原類型,不僅僅局限于細胞表面分子。這也許正是TCR-T在治療實體瘤方面具有更好療效的原因之一。

    TCR和CAR對抗原的親和力不同。在工程化的T細胞中,TCR對抗原的親和力至關(guān)重要,能夠決定T細胞治療的安全性和有效性[6]。使用scFv識別域的CAR對抗原的親和力通常在納摩爾(nmol · L-1)級別[5]。相比之下,天然TCR的親和力的數(shù)量級通常在微摩爾(μmol · L-1)級別[14]。基于此,許多學(xué)術(shù)界和工業(yè)界研究人員想利用CAR-T對抗原的高親和性來獲得良好的抗腫瘤功效。然而許多實驗結(jié)果顯示,與高親和力的CAR相比,具備低親和力CAR結(jié)構(gòu)的CAR-T顯示出更強的增殖能力和抗凋亡等持續(xù)性和抗腫瘤能力[15-16]。因此,抗原親和力是否與抗腫瘤功能呈現(xiàn)正相關(guān)仍是一個有待商榷的問題。

    TCR和CAR在抗原識別的敏感性方面也不盡相同。雖然基于scFv的CAR相對于TCR對其目標(biāo)抗原具有更高的內(nèi)在親和力,但TCR-T可以感受并響應(yīng)靶細胞上更少的分子,即能夠?qū)O少的抗原肽-MHC復(fù)合物(peptide-major histocompatibility complex,pMHC)產(chǎn)生反應(yīng),甚至單一抗原pMHC即可將其激活[17]。相反,CAR修飾的T細胞需要高好幾倍數(shù)量級的抗原刺激才能實現(xiàn)與TCR-T同等水平的細胞因子釋放。Harris等[18]通過將傳統(tǒng)的α/β異二聚體或CAR與CAR胞內(nèi)信號基序結(jié)合,比較了TCR和CAR在相同靶抗原的刺激下兩者信號的差異,結(jié)果表明盡管TCR在膜表面的水平低于CAR,但TCR信號對抗原的敏感度是CAR信號的10 ~ 100倍;另外,定量的單分子活細胞成像結(jié)果顯示TCR的敏感性是CAR的1 000倍[7]。這種敏感性數(shù)量級上的差異的內(nèi)在機制尚不完全清楚,其中一種解釋為相對低親和力的TCR比相對高親和力的scFv擁有更快的抗原解離速率(off-rate),因而能夠連續(xù)不斷地與單個pMHC進行反應(yīng)從而擴大下游信號[19]。這種快速的抗原識別可能對實體瘤的殺傷更有利。

    3 T細胞受體的信號啟動

    盡管關(guān)于TCR信號轉(zhuǎn)導(dǎo)的機制方面的研究層出不窮,但TCR的觸發(fā)機制仍不完全清楚,目前主要有以下幾種機制(不一定相互排斥)被提出。

    3.1 動態(tài)隔離模型

    當(dāng)TCR復(fù)合物與pMHC復(fù)合物結(jié)合后,會與抗原提呈細胞之間形成免疫突觸。動態(tài)隔離模型(kinetic segregation model)可描述為在免疫突觸中,TCR處于中心位置并形成“緊密結(jié)合區(qū)域”(close contact zones),進而排斥一些大分子蛋白,如磷酸酶CD45分子[20]。這種機制最終導(dǎo)致的結(jié)果即為TCR/CD3近端的激酶和磷酸酶平衡失調(diào),從而使得CD3被磷酸化,促進T細胞活化和信號轉(zhuǎn)導(dǎo)。在CAR與靶細胞特異性表達抗原結(jié)合的表面,CD45同樣處于被排除狀態(tài)以促進信號轉(zhuǎn)導(dǎo)。因此,動態(tài)隔離模型在CAR信號中也許同樣重要[21]。

    3.2 動力學(xué)校對機制

    動力學(xué)校對機制(kinetic proofreading mechanism)是指pMHC和不同的TCR相互作用過程中,不停地結(jié)合和解離,進行動力學(xué)校對;當(dāng)TCR與pMHC相互作用的半衰期(t1/2)可以維持足夠長的時間,便可以引發(fā)下游信號事件的發(fā)生。近年來利用光遺傳學(xué)技術(shù)的研究也支持TCR的動力學(xué)校對機制,該項研究利用光來調(diào)控TCR或CAR與抗原的相互作用時間。研究表明,CAR具有類似于TCR的校對機制,因此TCR與CAR僅在其以足夠的強度與配體結(jié)合時才響應(yīng),以確保有足夠的時間與抗原接觸[22]。這種可能性對于優(yōu)化CAR設(shè)計的靈敏度和特異性具有重要意義。

    3.3 串行參與模型

    串行參與模型(serial engagement model)常與動力學(xué)校對機制并列提及。該模型闡述TCR與pMHC達成緊密結(jié)合就像接力一樣,即單個pMHC可與多個TCR進行連續(xù)性的接觸,而這些連續(xù)性接觸積累起來的結(jié)果,使得TCR與pMHC達到緊密結(jié)合,最終導(dǎo)致T細胞的完全活化[23-24]。

    3.4 構(gòu)象形變模型

    TCR屬于精巧組裝的復(fù)合物。構(gòu)象形變模型指出,pMHC的刺激會引起TCR分子產(chǎn)生構(gòu)象形變,而微小的構(gòu)象改變都可引發(fā)不同的功能。TCR的構(gòu)象改變發(fā)生在其胞外區(qū)、跨膜區(qū)和胞內(nèi)區(qū)。越來越多的證據(jù)表明,TCR作為機械傳感器,當(dāng)相應(yīng)配體與其特異性結(jié)合后,TCR-CD3復(fù)合物在其胞外區(qū)發(fā)生依賴于力的結(jié)構(gòu)改變[25]。這種機械力來源于細胞外和細胞內(nèi)。關(guān)于細胞外機械力(external force),一方面,位于細胞表面的TCR能夠受到血液剪切力的影響;另一方面,細胞極化會使得T細胞接收來自細胞前沿產(chǎn)生機械外力[25]。另外,在T細胞與抗原呈遞細胞(antigen presenting cell,APC)或靶細胞形成免疫突觸時,細胞骨架重組導(dǎo)致的逆行流動則會對TCR施加大量內(nèi)在機械力(internal force)[26]。TCR可以利用機械力引發(fā)pMHC構(gòu)象變化,多步級聯(lián)放大激動型和非激動型抗原的差別,從而在面臨多樣性的抗原時,保持與特定pMHC緊密的錨定,實現(xiàn)精準(zhǔn)的抗原識別[27]。對于CAR而言,目前尚不清楚是否存在同樣的機制。但是,CAR分子結(jié)構(gòu)是支持其進行力依賴的分子內(nèi)結(jié)構(gòu)改變的。TCR跨膜區(qū)的構(gòu)象改變涉及CD3ζ,TCRα以及TCRβ跨膜區(qū)。CAR的跨膜區(qū)由CD8α或CD28的跨膜區(qū)構(gòu)成,目前關(guān)于CAR跨膜區(qū)構(gòu)象形變引發(fā)其功能改變的研究尚未見報道。

    在TCR-CD3復(fù) 合 物 中,CD3ε的 胞 內(nèi) 區(qū) 含有1個富含堿性氨基酸的區(qū)域(basic residue rich sequence,BRS)、1個富含脯氨酸的區(qū)域(proline rich sequence,PRS)和1個ITAM;CD3ζ的胞內(nèi)區(qū)含有3個ITAM,以及2個夾在其間的BRS;CD3γ和CD3δ的胞內(nèi)區(qū)各含1個ITAM。研究表明,帶正電的CD3ε和CD3ζ的BRS可以與質(zhì)膜內(nèi)葉中帶負(fù)電的酸性磷脂相結(jié)合,暗示兩者能夠在pMHC結(jié)合時進行動態(tài)的結(jié)合與釋放,并且這種動態(tài)化的變化與CD3ε和CD3ζ的ITAM基序的磷酸化機制密切相關(guān)。在T細胞靜息狀態(tài)下,CD3ε的BRS區(qū)域可以與細胞質(zhì)膜上的酸性磷脂發(fā)生靜電相互作用,從而使得整個CD3ε的胞內(nèi)區(qū)被屏蔽在膜脂雙層中。這種膜屏蔽機制既屏蔽了CD3ε的酪氨酸位點,同時也阻止了BRS區(qū)與淋巴細胞特異性蛋白酪氨酸激酶(lymphocyte-specific protein tyrosine kinase,Lck)的相互作用,達到抑制TCR整體磷酸化的效果[28]。當(dāng)TCR與特異性的抗原肽-MHC復(fù)合物結(jié)合后,會使得TCR發(fā)生形變,CD3ε胞內(nèi)區(qū)從膜上解離下來,暴露其中的酪氨酸磷酸化位點。此外,由于T細胞活化導(dǎo)致細胞內(nèi)鈣離子濃度的上升,內(nèi)流的鈣離子可以通過中和酸性磷脂負(fù)電荷的方式使得未直接接觸抗原的TCR中的CD3ε胞內(nèi)區(qū)從膜上解離[29];于是,暴露于胞質(zhì)的游離CD3ε ITAM進一步被下游的蛋白質(zhì)酪氨酸激酶磷酸化,進而發(fā)生一系列磷酸化級聯(lián)反應(yīng),從而放大TCR活化信號。另外,還有學(xué)者指出pMHC與TCR的結(jié)合會暴露CD3ε的PRS區(qū)域,這一暴露的PRS區(qū)域可以為含有SH3結(jié)構(gòu)域的非催化域酪氨酸激酶(non-catalytic region of tyrosine kinase,Nck)提供結(jié)合位點并進一步放大TCR信號[30-31]。但不管是BRS還是PRS,都暗示TCR信號轉(zhuǎn)導(dǎo)不是簡單的磷酸化級聯(lián)反應(yīng),其中必定存在尚不清楚的復(fù)雜結(jié)構(gòu)變化,因此,對pMHC與TCR結(jié)合后,導(dǎo)致TCR復(fù)合物磷酸化及其結(jié)構(gòu)變化的理解仍然是一個非常大的挑戰(zhàn)。近期以機械力為參數(shù)的研究另辟蹊徑,利用TCR與激動型pMHC配體的結(jié)合具有機械力依賴性的特點,通過觀測TCR與pMHC配體結(jié)合時形成“捕獲鍵(catch bond)”還是“滑移鍵(slip bond)”,研究人員能夠推測下游信號激活的差異[32]。

    受體聚集也是導(dǎo)致構(gòu)象形變的機制之一。配體結(jié)合會導(dǎo)致膜蛋白的聚集或構(gòu)象改變。Janeway于1995年首次提出TCR的活化伴隨TCR的聚集和構(gòu)象改變。由于常規(guī)T細胞的激活并不需要pMHC多聚體[33],因此受體聚集可能并不是TCR激活的主要機制。而CAR啟動信號傳遞必須依賴CAR蛋白分子聚集[34-35],因此這種機制可能在CAR中發(fā)揮更為關(guān)鍵的作用。

    4 T細胞受體和嵌合抗原受體免疫突觸的形成

    上文提到,TCR和CAR信號轉(zhuǎn)導(dǎo)的起始伴隨受體聚集。對于天然TCR而言,當(dāng)TCR與pMHC結(jié)合后,T細胞和APC之間會形成復(fù)雜而有序的超分子結(jié)構(gòu),稱為超分子激活聚集體(supramolecular activation cluster,SMAC),即免疫突觸。這種細胞與細胞之間的接觸包括“immunological kinapse”(IK)和“immunological synapse”(IS)。其中kinapse是TCR在受體遷移尋找相應(yīng)配體pMHC的過程中形成的一種瞬時且不穩(wěn)定的結(jié)構(gòu),synapse則是TCR與pMHC識別后形成的穩(wěn)定長時間接觸面[36]。TCR刺激和共刺激信號水平、T細胞的分化狀態(tài)以及靶細胞的表型共同決定了細胞是否形成對稱、穩(wěn)定的IS或瞬時的IK,或在2種模式之間過渡[37]。IS由3種不同類型的受體組成,包括TCR、黏附受體和共刺激或共抑制受體,以及它們相關(guān)的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)分子。在TCR與pMHC識別過程中,T細胞和APC之間會形成約為15 nm的間隙,這為受體和配體形成IS提供了空間[38]。黏附分子通過將細胞膜緊密連接在一起來支持IS的結(jié)構(gòu),這對于持續(xù)的抗原識別必不可少。另外,IS招募的共刺激受體或共抑制受體可以顯著調(diào)節(jié)T細胞的激活。T細胞與B細胞或平面抗原呈遞底物相互作用的免疫熒光成像顯示,SMAC由3個同心圓環(huán)組成,類似于“牛眼(bull,s eye)”[39](見圖2)。中央SMAC(cSMAC)形成中心環(huán),外圍SMAC(pSMAC)和遠端SMAC(dSMAC)在其外圍環(huán)繞。每個環(huán)都有自己特殊的組成和功能。cSMAC包含一定濃度的TCR和共刺激分子CD28,負(fù)責(zé)伴隨突觸形成的關(guān)鍵T細胞激活信號事件;pSMAC包含一系列黏附分子,如淋巴細胞功能相關(guān)抗原-1(lymphocyte functionassociated antigen-1,LFA-1),負(fù)責(zé)穩(wěn)定細胞間的相互作用;dSMAC由絲狀肌動蛋白組成,有助于對突觸施加機械力,另外,dSAMC還聚集許多酪氨酸磷酸酶,最典型的即為CD45[40]。

    CAR-T突觸并不像SMAC那樣具有高度組織性。相反,它們是雜亂無章的、零散的信號簇,缺乏明確的結(jié)構(gòu)。除了不形成較小且不典型的F-肌動蛋白環(huán)之外,CAR形成的免疫突觸缺乏黏附環(huán)并且Lck激酶簇呈散亂分布[9,41](見圖2)。因此,CAR-T與其靶細胞形成的免疫突觸在結(jié)構(gòu)上不同于經(jīng)典免疫突觸[9,21]。這也可能是兩者具有殺傷能力差異的重要原因之一。

    圖2 T細胞受體和嵌合抗原受體免疫突觸的比較Figure 2 Comparison of immune synapses between T cell receptor and chimeric antigen receptor

    CAR-T突觸和經(jīng)典pMHC/TCR突觸之間的這些結(jié)構(gòu)差異會導(dǎo)致功能差異。對突觸形成后TCR-T介導(dǎo)的殺傷與CAR-T介導(dǎo)的殺傷的時程比較顯示,CAR-T的信號強度比TCR-T信號更強且上升更快,穿孔素(perforin)和顆粒酶B(granzyme B)的釋放更快,脫落也明顯更快。因此,與細胞毒性T淋巴細胞(cytotoxic T lymphocyte, CTL)相比,CAR-T殺死靶細胞的速度更快[9,41]。而無序的CAR-T突觸可能就是其快速殺傷活性的結(jié)構(gòu)基礎(chǔ)[42]。需要指出的是,這里CAR-T的快速殺傷活性建立在高抗原密度的基礎(chǔ)上。在低抗原密度下,CAR-T近端信號弱且常受限于其活化閾值而不能夠?qū)Π屑毎M行有效殺傷[7]。這種對靶抗原的低敏感性正好能夠解釋在CAR-T免疫治療中由于腫瘤抗原低表達或無法檢測而導(dǎo)致癌癥復(fù)發(fā)的現(xiàn)象[43]。

    了解突觸的形成機制并鑒定其質(zhì)量非常有必要。基于玻璃制成的平面脂質(zhì)雙層系統(tǒng)的成像系統(tǒng)已被用于預(yù)測IS的質(zhì)量,并證明IS的質(zhì)量與CAR-T功能相關(guān)聯(lián)[44]。更有數(shù)據(jù)表明,在病理條件下,高IK頻率表明T細胞無能化,進入免疫耐受狀態(tài)而阻止腫瘤免疫[45]。由此可見,合適的IS形成是T細胞抗腫瘤功能發(fā)揮的必要條件。然而,目前IS在T細胞中的形成機制仍未完全了解,還有許多關(guān)鍵問題有待回答。例如CAR-T這種無序IS結(jié)構(gòu)產(chǎn)生的機制尚不清楚。有研究人員將具有高親和力識別結(jié)構(gòu)的CAR與天然的TCR融合或連接后發(fā)現(xiàn),改造后的T細胞能夠與相應(yīng)的靶細胞形成典型的穩(wěn)定的IS結(jié)構(gòu)[46-47]。因此,這種IS結(jié)構(gòu)的混亂也許并不是由于CAR對抗原的高親和力及它的非MHC限制性性質(zhì)所導(dǎo)致。鑒于IS結(jié)構(gòu)的重要性,仍需進一步了解其在抗腫瘤作用中的地位。

    5 T細胞受體的近端信號轉(zhuǎn)導(dǎo)

    TCR通過其配體識別亞基與APC上特異性表達的pMHC復(fù)合物結(jié)合,激活TCR信號通路。SRC家族蛋白酪氨酸激酶Lck是TCR信號起始的關(guān)鍵因子,它能夠與CD4和CD8共受體的胞質(zhì)結(jié)構(gòu)域結(jié)合,并分別通過CD8或CD4與MHC I類或MHC II類復(fù)合物的共結(jié)合募集至TCR。處于活化構(gòu)象的Lck可以磷酸化ITAM,每個ITAM具有2個可被磷酸化的關(guān)鍵酪氨酸殘基,被雙磷酸化的ITAM可以招募相對分子質(zhì)量為70 000的ζ鏈相關(guān)蛋白激酶(zeta-chain-associated protein kinase-70,ZAP-70),使蛋白酪氨酸激酶ZAP-70結(jié)合到CD3鏈中[48]。這里需要說明的是,Lck激酶包括游離狀態(tài)和與共受體偶聯(lián)的2類群體,它們均能在TCR活化后磷酸化CD3,但游離狀態(tài)的激活態(tài)Lck會被更早地招募至TCR起始信號傳遞[49]。換言之,由Lck介導(dǎo)的TCR活化可以分為2個階段:首先,游離態(tài)Lck激酶最先被招募到TCR并磷酸化CD3 ITAM;接著,與共受體偶聯(lián)的Lck被招募,一方面能夠促進TCR與pMHC的結(jié)合,另一方面起到放大信號的作用[49-51]。隨后,與ITAM結(jié)合的ZAP-70被磷酸化并招募更多的ZAP-70分子且進一步傳遞信號。由此可見,Lck和ZAP-70之間存在著非常嚴(yán)格的層級關(guān)系,Lck位于ZAP-70的上游[24]。

    Lck在TCR的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)起始中發(fā)揮非常重要的功能,它將細胞外TCR與pMHC的結(jié)合事件與細胞內(nèi)生物化學(xué)事件聯(lián)系在一起。研究發(fā)現(xiàn),Lck的定位和構(gòu)象變化是TCR信號轉(zhuǎn)導(dǎo)的重要決定因素[52-53]。Lck由1個UD結(jié)構(gòu)域(unique domain)、2個調(diào)節(jié)結(jié)構(gòu)域(SH3和SH2)和1個激酶結(jié)構(gòu)域(kinase domain)組成,它包含若干個磷酸化位點,其激酶活性受2個關(guān)鍵調(diào)節(jié)性酪氨酸位點Y394和Y505的磷酸化和去磷酸化控制。Y394位于Lck激酶環(huán)中,其自磷酸化可以穩(wěn)定催化結(jié)構(gòu)域的活性構(gòu)象。而C末端Src激酶(C-terminal Src kinase, Csk)能夠?qū)ck的活性負(fù)向調(diào)控,它通過對Lck羧基末端Y505殘基的磷酸化,促進Y505與Lck SH2結(jié)構(gòu)域的分子相互作用,從而穩(wěn)定了使催化結(jié)構(gòu)域失活的折疊構(gòu)象。CD3ε ITAM存在部分單磷酸化現(xiàn)象,這種單磷酸化的CD3ε能夠招募抑制性激酶Csk,發(fā)揮抑制性作用[54]。另外,跨膜酪氨酸磷酸酶CD45可使Lck磷酸化的Y505和Y394去磷酸化,因此,CD45可以直接調(diào)節(jié)控制Lck活性。上文中已經(jīng)提到,在T細胞活化早期,游離的活化型Lck最先被招募至TCR附近磷酸化CD3鏈以及一些關(guān)鍵的激酶來起始T細胞活化,這可能是由于游離的Lck比與共受體結(jié)合的Lck具有更高的流動性、更多的Y394磷酸化以及更強的激酶活性[55],因而游離的Lck對于TCR的早期活化非常重要;但當(dāng)共受體結(jié)合的Lck不能被招募到TCR周圍時,T細胞同樣不能被有效地活化[56]。另外,作為早期活化的重要成分,ITAM和ZAP-70的磷酸化都需要具有活性的Lck的存在,因此活化型的Lck必須位于TCR:pMHC附近足夠長的時間,以確保這些事件的發(fā)生。綜上,Lck的定位和構(gòu)象變化都將影響免疫突觸的形成和穩(wěn)定性。

    關(guān)于CAR,與TCR共享相同的CD3ζ胞內(nèi)區(qū)的同時,它還包含CD28和腫瘤壞死因子超家族成員4-1BB等共刺激結(jié)構(gòu)域。因此CAR與TCR之間,以及包含不同共刺激結(jié)構(gòu)域的CAR之間的近端信號傳導(dǎo)不盡相同。例如,在包含CD28或4-1BB的2種二代CAR中,配體結(jié)合后,CD3ζ ITAM的磷酸化雖然位置相同,但強度不同,包含CD28的CAR在早期時間點檢測到更強的磷酸化信號。這可能是因為CD28含有1個可以結(jié)合Lck的脯氨酸富含區(qū),使其能夠像共受體一樣招募Lck[57]。有關(guān)CAR的近端信號傳導(dǎo)仍屬于活躍的研究領(lǐng)域。

    6 T細胞受體的下游信號轉(zhuǎn)導(dǎo)

    在上述提及的一系列酪氨酸激酶初始激活后,T細胞活化銜接因子(the linker of active T cells, LAT)和含SH2結(jié)構(gòu)域相對分子質(zhì)量為76 000的白細胞磷酸化蛋白(SH2 domain-containing leukocyte phosphoprotein of 76 000, SLP-76)被磷酸化,活化T細胞,募集多個銜接因子和效應(yīng)分子,形成LAT信號轉(zhuǎn)導(dǎo)體來調(diào)節(jié)下游信號[58]。LAT的磷酸化由ZAP-70介導(dǎo),而兩者的連接通過Lck激酶的SH2作為橋梁所介導(dǎo)[59]。隨后,磷酸化的LAT招募磷脂酶C-γ(phospholipase C-γ, PLC-γ)、生長因子受體結(jié)合蛋白2(growth factor receptor-bound protein 2, GRB 2)和Shc下游GRB相關(guān)接頭蛋白(GRB-related adaptor downstream of Shc, Gads)。LAT相關(guān)效應(yīng)分子的活化導(dǎo)致信號通過3種主要信號通路進行轉(zhuǎn)導(dǎo):鈣調(diào)蛋白、絲裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPK)和核因子κ-B(nuclear factor kappa-B,NF-κB)信號通路。鈣調(diào)蛋白信號轉(zhuǎn)導(dǎo)會導(dǎo)致活化T細胞核因子(nuclear factor of activated T cells,NFAT)發(fā)生核轉(zhuǎn)移。MAPK信號轉(zhuǎn)導(dǎo)導(dǎo)致肌動蛋白聚合以及轉(zhuǎn)錄因子FOS,JUN和激活蛋白-1(activator protein-1,AP-1)的激活;NF-κB信號轉(zhuǎn)導(dǎo)使REL和NF-κB轉(zhuǎn)錄因子核移位;這些轉(zhuǎn)錄因子協(xié)同作用引起T細胞增殖和遷移、細胞因子分泌、免疫突觸的形成以及相關(guān)效應(yīng)功能。由此可見,LAT是T細胞信號轉(zhuǎn)導(dǎo)的必需支架蛋白。

    由于CAR是利用CD3ζ作為信號基序去激活T細胞的效應(yīng)功能,因此普遍認(rèn)為CAR存在與TCR相同的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)機制。許多著眼于CAR下游的磷酸化事件的研究結(jié)果顯示CAR-T和TCR-T的磷酸化事件雖然在量級和動力學(xué)上存在差異,但CAR-T中并未出現(xiàn)新的通路[57,60-61]。CAR利用相同的分子機制去轉(zhuǎn)導(dǎo)信號,包括PLC-γ,ZAP-70,LAT和Src家族蛋白激酶等。但也有研究表明,CAR和TCR擁有不同的信號通路,即CAR的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)可以繞過LAT[10]。此外,CAR-T對抗原刺激之后的表現(xiàn)仍有無法解釋的方面。例如,與TCR相比,CAR觸發(fā)下游信號分子的酪氨酸磷酸化更快,細胞毒性顆粒釋放更快[62]。通過直接將TCR和CAR表達在同一細胞中進而比較它們的信號過程,發(fā)現(xiàn)盡管TCR信號與CAR信號相比更緩慢和更微弱,但TCR信號更為持久[9]。另外,兩者對抗原的敏感性不同。已有許多研究指出,TCR的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)具有高度的敏感性,在只有單個抗原pMHC存在的情況下,就足以激活T細胞反應(yīng)[8,63]。然而,CAR的激活需要更多的抗原分子刺激[62]。有學(xué)者解釋這種低敏感性是由于CAR活化時近端信號明顯減弱導(dǎo)致,盡管CAR在免疫突觸內(nèi)的抗原結(jié)合親和力方面表現(xiàn)優(yōu)于TCR,但其胞內(nèi)區(qū)CD3ζ鏈的酪氨酸蛋白激酶ZAP-70的招募效率很低[7]。CAR的這種信號轉(zhuǎn)導(dǎo)缺陷,一方面限制了CAR-T療法治療表面抗原密度低的腫瘤的療效;另一方面,這也許解釋了CAR-T臨床治療中患者由于腫瘤的抗原表達水平低或無法檢測到而出現(xiàn)癌癥復(fù)發(fā)的現(xiàn)象。

    CAR和TCR在激活后具有許多相似的下游信號事件,如它們都分泌穿孔素和顆粒酶B去誘導(dǎo)靶細胞的凋亡,并表達細胞因子和趨化因子來增強免疫功能或調(diào)控炎癥反應(yīng),然而,臨床報告卻顯示出不同的結(jié)果。細胞因子釋放綜合征(cytokine release syndrome,CRS)表現(xiàn)為CAR-T療法中最常見的毒性,其確切的機制尚不完全清楚;其潛在的原因可能是CAR異?;蜻^度活化的信號。在靜息態(tài)T細胞中,CD3ζ肽鏈對借助于其C末端的正電與質(zhì)膜上帶負(fù)電的酸性磷脂相互作用,從而達到屏蔽信號的作用[29]。而當(dāng)抗原不存在時,CAR-T仍存在很強的基底信號[64]。因此,高強度的基底信號也許放大了信號而促進細胞因子的產(chǎn)生,進而進一步導(dǎo)致細胞因子風(fēng)暴的產(chǎn)生而影響CAR-T療法的療效。此外,在天然的TCR復(fù)合物中,CD3ε ITAM可被單磷酸化,從而招募Csk磷酸酶,發(fā)揮負(fù)調(diào)控功能[54]。提示除了過強的活化信號,有關(guān)負(fù)調(diào)控信號在CAR中的缺失也可能是導(dǎo)致CRS的重要原因。總之,天然TCR復(fù)合物結(jié)構(gòu)遠比想象的更復(fù)雜,故應(yīng)當(dāng)意識到其在指導(dǎo)過繼性免疫療法中T細胞設(shè)計改造方面的重要性。

    7 結(jié)語

    TCR-T和CAR-T療法均為過繼性免疫療法治療癌癥的前沿技術(shù),且基本思路均為將T細胞在體外進行修飾、擴增后再植入患者體內(nèi),2種改造過的受體都能夠介導(dǎo)T細胞發(fā)揮腫瘤殺傷作用。但兩者顯然存在許多不同:包括結(jié)構(gòu)、抗原識別機制和識別類型、對抗原響應(yīng)的敏感度等。CAR-T療法已在難治性白血病和淋巴瘤患者中誘導(dǎo)了顯著的反應(yīng),并獲得了美國FDA的批準(zhǔn),因此其對血液瘤及淋巴瘤的功效毋庸置疑。但目前許多臨床數(shù)據(jù)均顯示TCR-T療法在治療實體瘤的能力方面比CAR-T療法略勝一籌??偟膩碚f,從2種細胞本身特點出發(fā):首先,CAR-T靶向腫瘤抗原,而TCR-T除了識別表面抗原之外,還能夠通過白細胞抗原(human leukocyte antigen, HLA)提呈進而靶向細胞內(nèi)蛋白質(zhì)組,這意味著TCR-T可以識別廣泛的腫瘤抗原,不限于膜表達抗原,還包括一些由體細胞突變產(chǎn)生的新抗原(neo-antigen)。此外,從患者體內(nèi)取出的T細胞所制備的TCR-T與患者HLA等位基因匹配,避免了移植后的免疫排斥反應(yīng)。最后,TCR-T有更好的腫瘤浸潤和分布,而CAR-T由于識別表面抗原傾向于分布在腫瘤周圍,使得TCR-T在治療實體瘤時更有效[11]。盡管如此,目前對于特異性腫瘤抗原靶點的發(fā)現(xiàn)還甚少,并且從病人體內(nèi)取出的T細胞無法在體外有效地大量擴增,體外的制備工序費時費力。另外,科學(xué)家們現(xiàn)在還無法很好地解決T細胞療法治療后的大量不良反應(yīng)。綜上所述,過繼性免疫細胞療法治愈癌癥任重而道遠。不論是CAR-T療法,還是TCR-T療法都仍存在一系列問題,因此很有必要清楚理解基本的TCR信號轉(zhuǎn)導(dǎo)機制,并為設(shè)計更好的T細胞產(chǎn)品提出新的策略,以求其在實體瘤臨床治療中得到進一步應(yīng)用。

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