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    三角梅CHS基因的克隆及表達(dá)分析

    2021-10-29 09:31:24高靜雷姜少娟王勝男
    關(guān)鍵詞:苞片三角梅花色

    孫 蓉,劉 姍,高靜雷,刁 毅,姜少娟,王勝男

    (攀枝花學(xué)院 生物與化學(xué)工程學(xué)院,四川攀枝花 617000)

    三角梅是中央種子目(Centrospermae)紫茉莉科(Nyctaginaceae)葉子花屬(Bougainville)的一類常綠藤狀灌木[1]。其色澤艷麗,花量繁盛,花型獨(dú)特,四季開花,且耐旱耐鹽,少病蟲害,抗逆性強(qiáng),可用于盆栽、綠籬也可用于園林綠化等[2]。作為景觀植物,花色改良是其重要的育種目標(biāo),目前三角梅觀賞品種約有100多個[3-4],有紅色系、橙色系、粉紫色系及白色系等[5],但缺乏稀有的藍(lán) 色花。

    安田斉[6]認(rèn)為藍(lán)色花色的產(chǎn)生需要多個條件結(jié)合,包括大量的飛燕草素,適合的液泡pH及適量的助色素等,其中飛燕草素的積累是主要條件。研究表明利用基因工程技術(shù)向非藍(lán)色花植物中引入飛燕草素合成途徑關(guān)鍵酶基因可實(shí)現(xiàn)藍(lán)色花色的培育,例如Holton[7]和Fukui等[8]將紫羅蘭中飛燕草素合成的關(guān)鍵基因類黃酮-3′-5′-羥基化酶(flavonoid-3′,5′-hydroxylase,F3′5′H)轉(zhuǎn)入白色康乃馨后獲得了藍(lán)紫色的花。同樣地Katsumoto等[9]在月季中轉(zhuǎn)入外源F3′5′H基因后飛燕草素開始積累,最終得到了藍(lán)色的月季。而篩選適合的外源基因轉(zhuǎn)入受體是關(guān)鍵。

    查爾酮合酶(chalcone synthase,CHS)是花青素苷合成途徑中的第一個關(guān)鍵酶及限速酶[10](圖1),催化3分子丙二酰輔酶A(malnoyl CoA)與1分子4-香豆酰輔酶A(4-coumaroyl-CoA)生成查爾酮(chalcone),可為飛燕草素的合成提供基本的碳骨架。因此本研究基于前期三角梅轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù),篩選克隆CHS基因,利用MEGA5.05、ProParam、DNAMAN、Swiss-Model等生物信息學(xué)工具預(yù)測其蛋白的分子特性,并采用qRT-PCR技術(shù)分析基因表達(dá)特異性,為該基因的表達(dá)調(diào)控及功能驗(yàn)證提供基礎(chǔ)材料,為藍(lán)色三角梅轉(zhuǎn)基因受體的篩選提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)材料

    選擇1~2 a生完全木質(zhì)化,粗細(xì)長短相近的各色系單色單瓣三角梅[白色的‘新加坡大白(B.glabra‘Singapore White’)’,粉紅色的‘中國麗人(B.×buttiana‘China Beauty’)’,紅色的‘花葉大紅(B.×buttiana‘Brilliant Variegata’)’,橙色的‘寶老橙(B.×buttiana‘Baolao Cheng’)’,黃色的‘黃蝶(B.×spectoglabra‘Ratana Yellow’)’及紫色的‘安格斯(B.‘Elizabeth Angus’)’]枝條于2018年6月扦插種植于攀枝花學(xué)院苗圃,以盛花期的苞片和葉片為試驗(yàn)材料。

    1.2 查爾酮合酶基因的克隆

    根據(jù)干熱河谷特色生物資源開發(fā)四川省高校重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室測序獲得的白色三角梅苞片轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù),以注釋信息、基因表達(dá)豐度、序列長度等為條件,篩選花青素合成途徑中的CHS基因,手動篩除不同注釋庫的重復(fù)項(xiàng),并通過BLAST(https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi)比對確定完整性。根據(jù)所得序列設(shè)計(jì)一對特異引物,上游引物BsCHSF:ATGAATTCTCCATCACTTGATGAAA及下游引物BsCHSR:TTATAGTGGAACACTATGAAGCACA。以白色三角梅葉片cDNA第一鏈為模板,利用PrimeSTAR Max DNA Polymerase (TaKaRa)擴(kuò)增BsCHS基因cDNA全長,25 μL反應(yīng)體系中PrimeSTAR Max Premix (2×) 12.5 μL,BsCHSF (10 μmol/L) 0.5 μL,BsCHSR(10 μmol/L) 0.5 μL,模板cDNA 1 μL,ddH2O 10.5 μL;PCR反應(yīng)程序:98 ℃變性10 s;55 ℃退火 5 s,72 ℃延伸30 s,30個循環(huán)后,為保證充分?jǐn)U增72 ℃繼續(xù)延伸10 min。利用超薄DNA產(chǎn)物純化試劑盒(天根)純化回收PCR產(chǎn)物,送上海英濰捷基貿(mào)易有限公司測序驗(yàn)證。

    1.3 序列分析

    利用DNAMAN軟件結(jié)合WebLoGo (http://weblogo.berkeley.edu/logo.cgi)在線系統(tǒng)解析CHS保守基序的序列特征;通過SMART (http://smart.embl.de/)在線工具搜索功能結(jié)構(gòu)域;采用ExPASy系統(tǒng)的ProtParam (https://web.expasy.org/protparam/)和SWISS-MODEL (https://swissmodel.expasy.org/)工具分析表達(dá)蛋白的基本理化性質(zhì)及三級結(jié)構(gòu);應(yīng)用CBS研究所在線預(yù)測服務(wù)系統(tǒng)的TMHMM (http://www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM- 2.0/)和SignalP (http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP/)工具預(yù)測表達(dá)蛋白的跨膜區(qū)域及信號肽;SOPMA (https://npsa-prabi.ibcp.fr/cgi-bin/npsa_automat.pl?page=npsa_sspred.html)方法用于預(yù)測二級結(jié)構(gòu);使用MEGA 5.05軟件構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹,建樹方法為比鄰法(Neighbor-Joining),自舉重復(fù)(Bootstrap replications)的重復(fù)次數(shù)為1 000次。

    1.4 基因表達(dá)量分析

    1.5 數(shù)據(jù)處理

    每個花色葉片及苞片進(jìn)行2次生物學(xué)重復(fù),3次技術(shù)重復(fù)。以表達(dá)量最低的材料為對照,利用2-ΔΔCT法計(jì)算目的基因在不同花色中的相對表達(dá)量,并通過SPSS 20.0進(jìn)行顯著性分析,Origin 2018軟件繪制柱狀圖。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 三角梅CHS基因的克隆

    根據(jù)三角梅轉(zhuǎn)錄組注釋信息庫的基因名稱和功能注釋,成功篩選獲得了1條CHS基因序列(Bs104454),通過BLAST比對顯示Bs104454基因開放閱讀框完整且與其他植物CHS同源,根據(jù)該序列設(shè)計(jì)引物,擴(kuò)增獲得了一條長為1 176 bp的cDNA序列,編碼392個氨基酸,測序結(jié)果與預(yù)期相吻合,將其命名為BsCHS,提交GenBank,登錄號為MT302539(圖2)。

    2.2 BsCHS蛋白基本理化性質(zhì)分析

    根據(jù)ProtParam工具預(yù)測,BsCHS理論相對分子質(zhì)量為43.96 ku,等電點(diǎn)為6.24,含量最多的氨基酸為亮氨酸(Leu)含10.5%,其總負(fù)電荷殘基數(shù)為50,正電荷殘基數(shù)為45,分子式為C1964H3129N537O568S19,總原子數(shù)為6217,不穩(wěn)定系數(shù)及平均總親水系數(shù)分別為53.18和-0.067,表明BsCHS為不穩(wěn)定的親水性蛋白。

    2.3 BsCHS蛋白結(jié)構(gòu)分析

    2.3.1 保守結(jié)構(gòu)域 不同植物間,查爾酮合酶蛋白較為保守,相似性為74%~98%,多序列比對結(jié)果(圖3)與此相符合,BsCHS與其余植物中CHS序列相似性為85.43%,具有CHS特有的保守基序(圖4),在這些區(qū)域存在4個活性中心位點(diǎn),其中Cys164是底物4-香豆酰輔酶A(4-coumaroyl-CoA)的結(jié)合位點(diǎn);His303和Asn336主要參與催化底物丙二酰輔酶A(malnoyl CoA)脫羧的反應(yīng);Phe215與底物特異性選擇相關(guān)[12]。

    2.3.2 信號肽及跨膜結(jié)構(gòu) 信號肽的主要作用是引導(dǎo)新合成的多肽在胞內(nèi)運(yùn)輸,以到達(dá)不同的細(xì)胞器內(nèi),具有指導(dǎo)多肽跨膜轉(zhuǎn)移的作用。經(jīng)SignalP 5.0在線工具預(yù)測顯示BsCHS不含有信號肽序列,TMHMM跨膜結(jié)構(gòu)的預(yù)測結(jié)果也與此相符,不含有跨膜結(jié)構(gòu)。進(jìn)一步利用ProtCompv.9.0預(yù)測其亞細(xì)胞定位,發(fā)現(xiàn)定位于細(xì)胞質(zhì),該結(jié)果與上述結(jié)果相吻合。說明BsCHS為非分泌型的細(xì)胞質(zhì)蛋白。

    2.3.3 功能結(jié)構(gòu)域及二級結(jié)構(gòu) 結(jié)構(gòu)域是一種介于二級和三級結(jié)構(gòu)之間的蛋白功能單元,不同的結(jié)構(gòu)域往往與不同的功能相聯(lián)系,結(jié)構(gòu)域信息對于預(yù)測蛋白質(zhì)間相互作用具有重要價(jià)值[13]。利用SMART在線工具預(yù)測BsCHS結(jié)構(gòu)域,結(jié)果顯示其含有4個結(jié)構(gòu)域,其中Chal_sti_synt_N和Chal_sti_synt_C為查爾酮合酶特征結(jié)構(gòu)域,富含活性位點(diǎn),與底物特異結(jié)合有關(guān),C端的活性差異與N端序列的差異有關(guān)。另外兩個為FAE1_CUT1_RppA和ACP_syn_Ⅲ與脂肪酸合成 相關(guān)。

    由SOPMA預(yù)測結(jié)果可知(圖5),BsCHS二級結(jié)構(gòu)組成中比例最高的為α螺旋,占44.25%;其次為無規(guī)則卷曲占36.06%,延伸鏈占 14.32%,最少的為β轉(zhuǎn)角占5.37%。

    2.3.4 BsCHS三級結(jié)構(gòu)預(yù)測 蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)決定著蛋白質(zhì)的功能,因此研究其高級結(jié)構(gòu)對認(rèn)識蛋白質(zhì)功能,了解蛋白質(zhì)作用方式具有重要意義[14]。利用SWISS-MODEL在線預(yù)測系統(tǒng)的同源建模法構(gòu)建BsCHS的三級結(jié)構(gòu),參考模板為水稻(OryzaSativa)中的4yjy.1.A查爾酮合酶,序列相似性為57.62%。結(jié)果顯示(圖6)BsCHS為二聚體蛋白,各二級結(jié)構(gòu)含量也與SOPMA預(yù)測結(jié)果相吻合。

    2.4 BsCHS蛋白的分子進(jìn)化分析

    以單子葉植物玉米CHS蛋白序列為外類群,與薔薇目的大豆、綠豆,管狀花目的煙草、黃芩,百合超目的虎眼萬年青、黑麥,蓼目的虎杖、苦蕎麥,以及中央種子目的甜菜、菠菜、石竹等中的CHS蛋白序列構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹,結(jié)果顯示(圖7)雖BsCHS蛋白單獨(dú)聚為一支,但與同為中央種子目的植物親緣關(guān)系較近,符合系統(tǒng)進(jìn)化關(guān)系。

    2.5 BsCHS在不同花色中的表達(dá)模式

    利用qRT-PCR技術(shù)檢測BsCHS基因在不同顏色三角梅苞片及葉片中的表達(dá)情況(圖8),以表達(dá)量最低的紅色葉片為參照,進(jìn)行其他材料中表達(dá)量的計(jì)算。結(jié)果顯示BsCHS基因在黃色、白色及紫色三角梅中表達(dá)量較高,其中在黃色三角梅葉片及苞片中的表達(dá)量是紅色葉片的24倍及22倍,而粉色苞片中的表達(dá)量是葉片中的10倍。大部分苞片表達(dá)量高于葉片,因此推測苞片比葉片更適用于研究三角梅花青素合成途徑,且黃色及白色可優(yōu)先考慮作為藍(lán)色三角梅轉(zhuǎn)基因受體,但還需進(jìn)一步對其色素種類及含量進(jìn)行研究來確定。

    3 討 論

    隨著人們生活水平的不斷提高,對新異花卉品種的追求越來越強(qiáng)烈,其中藍(lán)色花卉更是廣受歡迎。研究表明藍(lán)色花的形成需要一種花青素——飛燕草素及適合的呈色環(huán)境。三角梅之所以沒有藍(lán)色的花,主要原因是使其呈色的色素為甜菜色素,該色素與花青素排斥分布,在同一植物中無法同時合成這兩種色素[15]。但有報(bào)道顯示積累甜菜色素的植物也可以合成黃酮,類黃酮甚至原花青素,而其最后一步花青素合酶的缺失可能是導(dǎo)致其不能合成花青素的原因[16]。基于基因工程手段的分子育種可打破此現(xiàn)狀,通過對代謝途徑的調(diào)控改造達(dá)到目的產(chǎn)物的合成,從而實(shí)現(xiàn)花色定向培育。然而花青素合酶的轉(zhuǎn)化需要受體本身可以合成其催化底物。CHS作為花青素合成途徑的核心酶,一方面其可以為花青素苷的合成提供前體物質(zhì),另一方面其自身表達(dá)量的高低也會影響花色的呈現(xiàn)[17]。因此研究花卉CHS基因?qū)ㄉ牧季哂兄匾饬x。

    中央種子目植物(除了石竹科Caryophyllaceae和粟米草科Molluginaceae)是被子植物中唯一一個以甜菜色素為主要花色素的目,其中藜科已有CHS基因序列的相關(guān)報(bào)道,而紫茉莉科中尚未見報(bào)道,本研究首次從紫茉莉科植物中獲得了CHS基因。該基因含有一個1 176 bp的開放閱讀框,編碼43.96 ku的蛋白,對其三級結(jié)構(gòu)的預(yù)測表明其含有2個亞基,該結(jié)果與Springob等[18]的研究結(jié)果相符,他們通過X-射線衍射研究

    CHS蛋白三維結(jié)構(gòu)時發(fā)現(xiàn)CHS是一個二聚體蛋白,且每個亞基分子質(zhì)量在40~50 ku之間;對蛋白性質(zhì)預(yù)測結(jié)果表明BsCHS為親水性蛋白,與方建[19]及馮立娟等[20]對CHS基因克隆研究結(jié)果一致;通過信號肽、跨膜結(jié)構(gòu)及亞細(xì)胞定位分析,BsCHS屬于細(xì)胞質(zhì)蛋白符合前人報(bào)道[21];序列比對及結(jié)構(gòu)域分析表明BsCHS含有查爾酮合酶特征保守結(jié)構(gòu)域及活性中心保守氨基酸,以上結(jié)果顯示本研究篩選獲得的三角梅CHS基因符合植物CHS基因特性,具有CHS生物活性,可用于后續(xù)研究。

    次生代謝物的合成需要經(jīng)過多個復(fù)雜且多分支的途徑,對這些途徑中限速酶的研究鑒定是解析代謝途徑的關(guān)鍵步驟。關(guān)鍵酶基因表達(dá)量的高低會影響代謝產(chǎn)物的積累,因此本研究利用qRT-PCR技術(shù)檢測了BsCHS基因在不同花色三角梅中的表達(dá)情況,以期獲得最適的轉(zhuǎn)基因受體,結(jié)果顯示在黃色三角梅苞片及葉片中BsCHS的表達(dá)量均較高,推測其可以為飛燕草素的合成提供更多的前體物質(zhì),更適用于三角梅花青素合成途徑的研究,后續(xù)可通過高效液相色譜等方法進(jìn)行代謝物含量測定以驗(yàn)證該推測。

    花色改良一直是花卉育種者的研究熱點(diǎn),傳統(tǒng)育種方式受到多種因素的限制,難以有大突破,基于現(xiàn)代生物技術(shù)的分子育種為花卉育種提供了新思路。本研究對三角梅CHS基因的研究,為三角梅新花色的培育提供了新方向,但仍需進(jìn)一步對BsCHS基因功能進(jìn)行驗(yàn)證及研究如何抑制甜菜色素合成途徑讓代謝流進(jìn)入花青素合成途徑,才能最終達(dá)到對藍(lán)色三角梅培育的目的。

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