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    黃芩苷通過Notch通路糾正細(xì)支氣管炎模型小鼠Th17/Treg失衡*

    2021-10-20 08:02:32吳琳琳梁東閣何倩倩
    中國病理生理雜志 2021年9期
    關(guān)鍵詞:小鼠水平

    吳琳琳, 梁東閣, 何倩倩, 曹 歡

    (鄭州大學(xué)附屬兒童醫(yī)院/河南省兒童醫(yī)院/鄭州兒童醫(yī)院呼吸科,河南鄭州 450053)

    細(xì)支氣管炎(bronchiolitis,BC)為多發(fā)于嬰幼兒的急性呼吸道感染性疾病,可能導(dǎo)致哮喘等后遺癥,威脅兒童健康。呼吸道合胞病毒(respiratory syncytial virus,RSV)是導(dǎo)致BC 的主要病原菌之一,具有高度傳染性和致病性,且機體無法對其產(chǎn)生充足的免疫反應(yīng),可能重復(fù)感染,目前仍缺乏相應(yīng)的疫苗[1]。研究發(fā)現(xiàn),發(fā)揮促炎作用的輔助性T 細(xì)胞17(T helper 17 cells,Th17)與抑炎作用的調(diào)節(jié)性T細(xì)胞(regulator T cells,Treg)的比例失衡,進一步導(dǎo)致機體Th2 免疫應(yīng)答增強,引起炎癥反應(yīng)[2]。因此,抑制Th17 細(xì)胞分化,誘導(dǎo)Treg 分化可能有效改善BC 癥狀。而Notch 通路的激活可促進Th17 分化,抑制Treg 分化,在調(diào)節(jié)T 細(xì)胞分化中發(fā)揮重要作用[3]。另有研究證實,Notch 通路在BC 模型動物中處于激活狀態(tài),且抑制Notch 通路可減輕BC 大鼠氣道炎癥[4]。

    黃芩苷為傳統(tǒng)中藥黃芩分離的黃酮類物質(zhì),具有消炎和抗病毒等活性[5]。多項研究表明,黃芩苷對柯薩奇B3 病毒[6]和乙肝病毒[7]等所致疾病均具有改善作用。最近研究顯示,黃芩苷在體內(nèi)和體外都可抑制RSV 病毒復(fù)制[8],但具體作用機制并未明確。本研究采用黃芩苷治療RSV 感染的BC 模型小鼠,并通過檢測Notch 通路相關(guān)蛋白的表達、Th17 和Treg細(xì)胞比例及轉(zhuǎn)錄因子和細(xì)胞因子表達水平,分析Notch 通路在黃芩苷糾正BC 模型小鼠Th17/Treg 失衡中的作用。

    材 料 和 方 法

    1 材料

    1.1 實驗動物 40 只健康雄性BALB/c 小鼠,7 周齡,體重20~24 g,購自河南省實驗動物中心,許可證號為SCXK(豫)2017-0001。

    1.2 病毒 將RSV 接種于HeLa 細(xì)胞中進行增殖培養(yǎng),所用培養(yǎng)基為RPMI-1640(含10%胎牛血清),待細(xì)胞病變達80%左右時,收集病毒上清備用,另收集未接種RSV 的細(xì)胞空白培養(yǎng)基上清備用。經(jīng)空斑試驗測得本實驗中RSV滴度為1.0×1010PFU/L。

    1.3 主要試劑及儀器 黃芩苷和羧甲基纖維素鈉(sodium carboxymethyl cellulose,CMC-Na)均 購 自Sigma;Notch1 激活劑重組小鼠Jagged1 蛋白、兔抗Hes1 和β-actin 單抗、兔抗Hey2 和activated Notch1 多抗及羊抗兔和大鼠IgG Ⅱ抗(Abcam);抗CD4-APC、IL-17-PE、CD4-FITC、CD25-PE 和 叉 頭 框 蛋 白P3(forkhead box protein P3,F(xiàn)OXP3)-APC(Invitrogen);視黃酸受體相關(guān)孤兒受體γt(retinoic acid receptorrelated orphan receptor γt,RORγt)大鼠單抗(BD Biosciences);HE 試劑盒及小鼠轉(zhuǎn)化生長因子β(transforming growth factor-β,TGF-β)、白細(xì)胞介素22(interleukin-22,IL-22)、IL-17 和IL-10 ELISA 試劑盒(上海生工)。轉(zhuǎn)膜系統(tǒng)和酶標(biāo)儀(Bio-Rad);熒光顯微鏡(Olympus);多功能酶標(biāo)儀和流式細(xì)胞儀(BioTek);切片機(Leica)。

    2 方法

    2.1 模型的制備及分組 將小鼠隨機分為4 組,每組10 只。正常組連續(xù)2 d 每日經(jīng)鼻滴入100 μL 空白培養(yǎng)基上清,每日腹腔注射10 mL/kg 0.5% CMC-Na溶液,共7 d。BC 組連續(xù)2 d 每日經(jīng)鼻滴入100 μL 病毒培養(yǎng)基上清[9],每日腹腔注射10 mL/kg 0.5%CMC-Na 溶液,共7 d。黃芩苷組連續(xù)2 d 每日經(jīng)鼻滴入100 μL 病毒培養(yǎng)基上清,每日腹腔注射10 mL/kg黃芩苷混懸液(按200 mg/kg 的劑量[8]溶于0.5%CMC-Na 溶液),共7 d。BC+黃芩苷+Jagged1 組連續(xù)2 d每日經(jīng)鼻滴入100 μL病毒培養(yǎng)基上清,每日腹腔注射10 mL/kg黃芩苷和Jagged1的混懸液(按200 mg/kg 黃芩苷+1 mg/kg Jagged1 的劑量溶于0.5% CMCNa 溶液),共7 d。末次給藥24 h 后,取肺組織,左肺組織用于病毒滴度測定、炎癥因子及蛋白表達檢測,右肺組織部分用于流式細(xì)胞術(shù)分析,部分浸入4%多聚甲醛中固定制作組織切片。

    2.2 HE 染色 將2.1 中右肺切片(4 μm),遵循試劑盒說明分別與蘇木素染液和伊紅染液孵育后,光鏡下觀察并進行病理學(xué)評分。

    2.3 流式細(xì)胞術(shù)檢測 采用Percoll 液分離2.1 中右肺組織單個核細(xì)胞,用流式緩沖液將細(xì)胞濃度調(diào)整為1×109L-1,取100 μL 加入流式管,與抗CD4-APC和IL-17-PE 單抗避光孵育20 min,取400 μL 上流式細(xì)胞儀進行檢測,設(shè)門CD4 和IL-17 檢測Th17 細(xì)胞數(shù)量,即CD4+IL-17+;另外與CD4-FITC、CD25-PE 和FOXP3-APC 單抗避光孵育20 min,設(shè)門CD4、CD25和FOXP3檢測Treg數(shù)量,即CD4+CD25+FOXP3+。

    2.4 空斑實驗 取100 mg 左肺組織按照1 g/mL 的比例加入RPMI-1640 培養(yǎng)液制備勻漿液,取上清液接種于HeLa 細(xì)胞,孵育60 min 后,棄去上清,加入含有1.5% CMC-Na 的培養(yǎng)液,37 ℃培養(yǎng)箱中孵育7 d,用0.1%的結(jié)晶紫溶液染色后計數(shù)空斑數(shù)量,以此表示肺組織中病毒滴度。

    2.5 Western blot 實驗 取100 mg 左肺組織,使用RIPA 緩沖液裂解后離心,保存上清液并用BCA 法定量蛋白濃度。每組取30 μg蛋白煮沸后上樣電泳,電泳結(jié)束后將蛋白轉(zhuǎn)至PVDF 膜并用5%脫脂奶粉封閉,然后分別與Ⅰ抗[Hes1(1∶300)、Hey2(1∶250)、activated Notch1(1∶500)、RORγt(1∶250)、FOXP3(1∶500)和β-actin(1∶500)]4 ℃過夜反應(yīng),洗膜3 次后,在室溫下與Ⅱ抗(1∶1 000)反應(yīng)1 h,加入ECL 顯影1 min,放入TANON成像系統(tǒng)曝光并拍照分析。

    2.6 ELISA 取100 mg左肺組織,加入預(yù)冷的PBS,勻漿、離心后保留上清液,遵循TGF-β、IL-22、IL-17和IL-10 ELISA 試劑盒說明依次加入相應(yīng)試劑,在酶標(biāo)儀上檢測各組在450 nm處的吸光度(A),參考標(biāo)準(zhǔn)曲線計算各組樣品中TGF-β、IL-22、IL-17和IL-10水平。

    3 統(tǒng)計學(xué)處理

    采用SPSS 24 和GraphPad Prism 8.0 行統(tǒng)計分析。實驗數(shù)據(jù)用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示。多組間均數(shù)比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用SNK-q檢驗。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    結(jié) 果

    1 黃芩苷對小鼠肺組織的影響

    正常組肺組織形態(tài)正常,肺泡壁間隔均勻,未見血管破裂;BC 組肺泡壁和肺泡間隙可見較多炎癥浸潤,肺泡壁增寬和血管破壞,病理評分明顯高于正常組(P<0.05);黃芩苷治療可減輕上述組織損傷,病理評分明顯降低(P<0.05);而Notch 激活劑Jagged1 可逆轉(zhuǎn)黃芩苷的改善作用,見圖1、表1。

    Figure 1. Morphological Observation of lung tissue in mice(HE staining).圖1 小鼠肺組織形態(tài)觀察

    2 黃芩苷對小鼠肺組織RSV載量的影響

    正常組未檢測到RSV;BC 組肺組織RSV 載量為(10.53±2.81)×104PFU/(g tissue);黃芩苷治療后肺組織RSV 載量降低至(4.72±1.43)×104PFU/(g tissue),顯著低于BC 組(P<0.05);而BC+黃芩苷+Jagged1 組RSV 載量顯著高于BC+黃芩苷組(P<0.05),見表1。

    表1 小鼠肺組織病理評分及RSV載量Table 1. Pathological score and RSV load of lung tissue in mice(Mean±SD. n=10)

    3 黃芩苷對小鼠肺組織Th17 和Treg 細(xì)胞比例及其細(xì)胞因子水平的影響

    與正常組相比,BC 組Th17 細(xì)胞比例及IL-17 和IL-22水平升高,Treg細(xì)胞比例及IL-10和TGF-β水平降低(P<0.05);與BC 組相比,BC+黃芩苷組Th17 細(xì)胞比例及IL-17 和IL-22 水平降低,Treg 細(xì)胞比例及IL-10 和TGF-β 水平升高(P<0.05);與BC+黃芩苷組相比,BC+黃芩苷+Jagged1 組Th17 細(xì)胞比例及IL-17和IL-22 水平升高,Treg 細(xì)胞比例及IL-10 和TGF-β水平降低(P<0.05),見圖2、表2。

    表2 小鼠肺組織Th17細(xì)胞比例、Treg細(xì)胞比例及其細(xì)胞因子水平的比較Table 2. Comparison of Th17 proportion,Treg proportion and their cytokine levels in lung tissues of the mice(Mean±SD. n=10)

    Figure 2. Proportion of Th17 and Treg cells in lung tissue of mice detected by flow cytometry.圖2 流式細(xì)胞術(shù)分析小鼠肺組織Th17和Treg細(xì)胞的比例

    4 黃芩苷對小鼠肺組織FOXP3、RORγt 和Notch通路蛋白表達的影響

    Western blot 結(jié)果顯示,與正常組相比,BC 組的FOXP3 蛋白水平降低,RORγt 蛋白水平升高(P<*P<0.05vsnormal group;#P<0.05vsBC group;△P<0.05vsBC+baicalin group.0.05);與BC 組相比,BC+黃芩苷組的FOXP3 蛋白水平水平升高,RORγt蛋白水平降低(P<0.05);與BC+黃芩苷組相比,BC+黃芩苷+Jagged1 組的FOXP3 蛋白水平水平降低,RORγt 蛋白水平升高(P<0.05)。與 正 常 組 相 比,BC 組 的activated Notch1、Hes1 和Hey2 蛋白水平升高(P<0.05);與BC 組相比,BC+黃芩苷組的activated Notch1、Hes1 和Hey2 蛋白水平降低(P<0.05);與BC+黃芩苷組相比,BC+黃芩苷+Jagged1 組的activated Notch1、Hes1 和Hey2 蛋白水平升高(P<0.05)。見圖3。

    Figure 3. Effect of baicalin on the expression of FOXP3,RORγt and Notch pathway-related proteins. A:normal group;B:BC group;C:BC+baicalin group;D:BC+baicalin+Jagged1 group. Mean±SD. n=10.*P<0.05 vs A;#P<0.05 vs B;△P<0.05 vs C.圖3 黃芩苷對FOXP3、RORγt和Notch通路相關(guān)蛋白表達的影響

    討 論

    在受到外源性病毒感染后,機體的T 細(xì)胞可識別病毒抗原,激活抗體介導(dǎo)的免疫反應(yīng)和細(xì)胞毒性反應(yīng),進而控制病毒感染,CD4+T 細(xì)胞在該過程中發(fā)揮協(xié)調(diào)作用。T細(xì)胞受體被激活后,CD4+T細(xì)胞進一步分化為Th1、Th2、Th17 和Treg 等細(xì)胞亞群,目前研究已確定Th17/Treg 失衡在病毒感染類疾病中發(fā)揮重要作用[10]。

    Th17 細(xì)胞分化的主要調(diào)節(jié)因子為RORγt,可分泌IL-17 和IL-22 等,在RSV 感染期間可誘導(dǎo)黏液產(chǎn)生,增強Th2 應(yīng)答,刺激肺嗜中性粒細(xì)胞浸潤,抑制CD8+T 細(xì)胞對病毒的清除,促進RSV 所誘導(dǎo)的呼吸道炎癥和功能障礙,在BC 患兒疾病進展中發(fā)揮促進作 用[11]。而Treg 細(xì) 胞 可 拮 抗Th17 細(xì) 胞 的 功 能,F(xiàn)OXP3 為誘導(dǎo)其分化的關(guān)鍵轉(zhuǎn)錄因子,可通過分泌TGF-β 和IL-10 等抑炎因子,減輕炎癥浸潤,促進病毒清除,避免過度先天和細(xì)胞免疫應(yīng)答,抑制Th2 應(yīng)答,在抵抗胞外病原體入侵和抑制自身免疫中起著保護作用[12]。本研究發(fā)現(xiàn),黃芩苷治療后BC 小鼠肺組織炎性浸潤、肺泡壁增寬等損傷減輕,且Th17 細(xì)胞比例、IL-17、IL-22 水平及RORγt 蛋白水平明顯降低,Treg 細(xì)胞比例、IL-10、TGF-β 水平及FOXP3 蛋白水平明顯增高。Mangodt 等[13]指出,從Treg 向Th17轉(zhuǎn)化具有可塑性,RSV 感染期間,肺部Th17 比例升高,Treg 降低,導(dǎo)致病毒清除延遲和疾病嚴(yán)重性增加。因此,調(diào)控Th17/Treg 平衡可能有利于RSV 的清除。我們的研究提示黃芩苷在調(diào)節(jié)Th17/Treg 細(xì)胞分化中發(fā)揮作用,與蔡志波等[14]研究一致。Pang等[15]研究認(rèn)為,黃芩苷通過下調(diào)RLRs 信號通路,降低Th1/Th2 和Th17/Treg 比例,控制甲型流感病毒感染并改善預(yù)后。本研究推測,黃芩苷通過上調(diào)FOXP3 表達促進Treg 細(xì)胞分化,并下調(diào)RORγt 表達抑制Th17 分化,進而促進CD8+T 細(xì)胞對RSV 的清除[8],減輕BC小鼠呼吸道炎癥。

    Notch 通路是重要的信號傳導(dǎo)途徑,可以通過抑制細(xì)胞分化,調(diào)節(jié)機體炎癥反應(yīng)并維持免疫平衡。Notch 通路在CD4+T 細(xì)胞分化為Th17 和Treg 細(xì)胞及二者相互轉(zhuǎn)化中起重要調(diào)節(jié)作用[16]。本研究結(jié)果顯示,與正常組相比,BC 組activated Notch1、Hes1 和Hey2 蛋白水平升高,采用黃芩苷治療后,BC 小鼠肺組織activated Notch1、Hes1 和Hey2 蛋白水平均明顯降低,趨于正常組。臨床證據(jù)表明,在過敏性哮喘患兒中,Notch 蛋白高表達且Th17/Treg 比例升高;在支原體肺炎患兒中,Notch 通路蛋白Notch1 和Hes1 及Th17/Treg 轉(zhuǎn)錄因子Foxp3 和RORγt 均高表達,Th17細(xì)胞、Th17/Treg 比例增高,Treg 細(xì)胞比例較低[17-18]。Qin等[19]發(fā)現(xiàn),在RSV感染的模型動物肺組織中存在Notch 通路活化,并伴有高水平的Th17 分化,認(rèn)為Notch1 通路的活化誘導(dǎo)了氣道微環(huán)境中CD4+T 細(xì)胞向Th17 分化,從而導(dǎo)致RSV 相關(guān)哮喘的發(fā)生和發(fā)展。而靶向Notch 通路的抑制劑可通過抑制Th17 反應(yīng),增加Treg分化,減輕RSV 所致氣道高反應(yīng)性和肺部炎癥[20-21]。本研究進一步發(fā)現(xiàn),黃芩苷對BC 小鼠的改善作用及對Th17/Treg 比例的調(diào)節(jié)作用可被Notch1 激活劑阻斷,因此,推測黃芩苷可能通過對Notch通路的抑制而發(fā)揮對BC小鼠的治療作用。

    綜上所述,黃芩苷可能通過Notch 通路糾正Th17/Treg失衡來發(fā)揮對BC的治療作用,進一步豐富了其藥理機制。然而其它通路也可能在該過程中發(fā)揮作用,有待繼續(xù)探究。

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