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    超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法快速測(cè)定水稻中的13種植物激素含量

    2021-10-09 05:19:44張慶李誠(chéng)至林鈺涓于曉章
    現(xiàn)代食品科技 2021年9期
    關(guān)鍵詞:赤霉素甲酸乙腈

    張慶,李誠(chéng)至,林鈺涓,于曉章

    (桂林理工大學(xué)環(huán)境科學(xué)與工程學(xué)院,廣西桂林 541006)

    植物激素是植物產(chǎn)生的痕量的并對(duì)植物生長(zhǎng)發(fā)育起至關(guān)重要作用的信號(hào)分子物質(zhì)[1-3]。吲哚乙酸(IAA)、脫落酸(ABA)、赤霉素3(GA3)參與了植物從種子休眠、萌發(fā)、營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)到生殖生長(zhǎng),以及成熟和衰老的整個(gè)生命過(guò)程,茉莉酸(JA)、水楊酸(SA)是2 種主要的脅迫激素,受到脅迫的調(diào)控,在植物的脅迫耐受性和抗逆性中發(fā)揮著重要作用[4-6]。但是,植物激素在大多數(shù)組織中的含量很低[7,8],通常在10-6~10-9g 之間,性質(zhì)不穩(wěn)定,與其共存的成分非常復(fù)雜,檢測(cè)時(shí)容易受到干擾。同時(shí)有些植物材料非常珍貴,材料量少,因此要求檢測(cè)的方法必須簡(jiǎn)便、快速、靈敏、專(zhuān)一[9-11]。

    目前植物激素的使用不當(dāng)或?yàn)E用現(xiàn)象導(dǎo)致的食品安全問(wèn)題日益增多[3],從食品安全的角度來(lái)看,建立一種實(shí)用準(zhǔn)確的水稻中植物激素殘留分析方法顯得非常必要。目前,植物激素的測(cè)定主要采用色譜/質(zhì)譜聯(lián)用技術(shù)[12-18]。氣相色譜(GC)/質(zhì)譜(MS)聯(lián)用在靈敏度問(wèn)題上能滿足植物激素的測(cè)定要求,但樣品需要純化、濃縮和衍生化處理,增加了樣品前處理步驟[19,20]。超高效液相色譜(UPLC)-串聯(lián)質(zhì)譜(MS/MS)具有高靈敏度和高選擇性,可以滿足植物粗提液中植物激素的定量測(cè)定,同時(shí)還很大程度上簡(jiǎn)化了樣品前處理程序。

    目前,基于液相色譜(LC)-串聯(lián)質(zhì)譜(MS/MS)聯(lián)用方法對(duì)植物激素的分析,大多集中在生長(zhǎng)素(IAA)、赤霉素3(GA3)、脫落酸(ABA)、茉莉酸(JA)和水楊酸(SA)等幾種植物激素,存在可檢測(cè)的植物激素種類(lèi)偏少等問(wèn)題[2,4,7]。本實(shí)驗(yàn)采用超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法,建立一種同時(shí)測(cè)定水稻中赤霉素3(GA3)、赤霉素1(GA1)、異戊烯基腺嘌呤(IPA)、水楊酸(SA)、吲哚乙酸(IAA)、脫落酸(ABA)、茉莉酸(JA)、赤霉素7(GA7)、赤霉素4(GA4)、茉莉酸異亮氨酸(JA-ILe)、油菜素甾酮(CS)、12 氧代植物二烯酸(12-OPDA)和香蒲甾醇(TY)等13 種植物激素含量的分析方法,為水稻中植物激素的分析提供參考。

    1 實(shí)驗(yàn)部分

    1.1 儀器與試劑

    Agilent 1290 超高液相色譜儀串聯(lián)AB SCIEX 5500 Qtrap 質(zhì)譜儀。美國(guó)MET QL-866 渦旋混勻儀(13111-V-220)。冷凍離心機(jī)(H1650-W)。色譜柱Waters,ACQUITY UPLC BEH C18(2.1 mm×100 mm,i.d.1.7 μm)。甲酸購(gòu)自Fluka,乙腈、甲醇購(gòu)自Merck。所有植物激素的標(biāo)準(zhǔn)品均購(gòu)自O(shè)lchemim。實(shí)驗(yàn)用水均為Milli-Q plus 去離子水。

    1.2 標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)的配制

    準(zhǔn)確稱(chēng)取1.0 mg 的赤霉素3、赤霉素1、異戊烯基腺嘌呤、水楊酸、吲哚乙酸、脫落酸、茉莉酸、赤霉素7、赤霉素4、茉莉酸異亮氨酸、油菜素甾酮、12氧代植物二烯酸和香蒲甾醇溶解在甲醇溶液中,配制成濃度為1 mg/mL 的單標(biāo)儲(chǔ)備溶液。取適量的單標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備溶液,配制成混合標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備溶液。其中,各植物激素濃度為1 μg/mL。將上述溶液用甲醇逐級(jí)稀釋?zhuān)糜诶L制標(biāo)準(zhǔn)工作曲線。

    1.3 色譜質(zhì)譜條件

    色譜條件:流動(dòng)相,A 液為0.04%甲酸-水溶液,B 液為0.04%甲酸-乙腈溶液。樣品置于4℃自動(dòng)進(jìn)樣器中,柱溫45℃,流速為400 μL/min,進(jìn)樣量4 μL。梯度洗脫設(shè)置如下:0~10 min,B 液從2%線性變化到98%,A 液相應(yīng)的從98%線性變化到2%;10~11.1 min,B 液從98%線性變化至2%,A 液相應(yīng)的從2%線性變化到98%;11.1~13 min,B 液維持在2%,A 液相應(yīng)的維持在98%。

    質(zhì)譜條件:電噴霧電離子源(ESI),掃描方式為負(fù)離子掃描多反應(yīng)監(jiān)測(cè)模式(MRM)。ESI 條件如下:Source Temperature(離子源溫度):500℃;Ion Source Gas1(輔助加熱氣1):45;Ion Source Gas2(輔助加熱氣2):45;Curtain Gas(氣簾氣):30;Ion Sapary Voltage Floating(電噴霧電壓):-4500 V。

    1.4 植物激素的提取

    植物激素的提取參考文獻(xiàn)[21,22]。具體實(shí)驗(yàn)方法如下,將水稻葉片組織樣品液氮研磨,取100 mg 樣品于2 mL 離心管中,加入1 mL 甲醇-乙腈-水溶液(40:40:20,V/V),震蕩混勻2 min;4℃避光抽提12 h,14000 r/min 離心10 min,取上清液800 μL,氮?dú)獯蹈?,?00 μL 甲醇-水溶液(50:50,V/V)定溶,14000 r/min 離心10 min,取上清液進(jìn)樣分析。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 定容溶劑選擇

    實(shí)驗(yàn)比較了水、甲醇-水(50:50,V/V)、甲醇、乙腈、甲醇-乙腈(50:50,V/V)和乙腈-水(50:50,V/V)6 種定容溶液的對(duì)植物激素峰形、響應(yīng)強(qiáng)度以及出峰時(shí)間的影響[21,22],結(jié)果分別如圖1a、1b、1c、1d、1e 和1f 所示。結(jié)果表明,純水作為定容溶劑,部分目標(biāo)分析物(3 號(hào)峰異戊烯基腺嘌呤和10 號(hào)峰茉莉酸異亮氨酸)響應(yīng)強(qiáng)度較低(圖1a)。甲醇作為定容溶劑,出峰時(shí)間較早的目標(biāo)分析物如赤霉素3、赤霉素1等的色譜峰出現(xiàn)明顯分叉(圖1c)。含有乙腈的溶液[乙腈-水(50:50,V/V)、乙腈和甲醇-乙腈(50:50,V/V)],出峰時(shí)間普遍較長(zhǎng)(圖1d、1e 和1f),并且吲哚乙酸、12 氧代植物二烯酸、香蒲甾醇峰形拖尾嚴(yán)重。定容溶劑選擇甲醇-水(50:50,V/V)時(shí)目標(biāo)分析物的響應(yīng)強(qiáng)度較高,且目標(biāo)分析物峰形均較好(圖1b)。綜合考慮,本文以甲醇-水(50:50,V/V)為定容溶劑。

    圖1 不同定容溶劑時(shí)13 種植物激素的總離子流圖 Fig.1 Total ion chromatogram (TIC) of thirteen plant hormones at different solvents

    2.2 色譜柱的選擇

    對(duì)于植物激素這類(lèi)弱極性物質(zhì),實(shí)驗(yàn)選擇Waters ACQUITY UPLC BEH C18 色譜柱。ACQUITY UPLC BEH C18 色譜柱具備pH=1~12 范圍內(nèi)的化學(xué)穩(wěn)定性,能夠影響可電離化合物的保留性、選擇性和靈敏性,同時(shí)還能在低pH 和高pH 條件下保持優(yōu)異的柱穩(wěn)定性。

    2.3 色譜條件優(yōu)化

    考察了流動(dòng)相對(duì)分離的影響,直接以乙腈-水溶液作為流動(dòng)相時(shí),13 種植物激素的混合標(biāo)準(zhǔn)樣品不能完全分離,色譜峰拖尾嚴(yán)重。甲酸可以抑制樣品基質(zhì)的電離,改善色譜峰的拖尾現(xiàn)象,因此流動(dòng)相中需要加入甲酸。

    實(shí)驗(yàn)對(duì)流動(dòng)相中甲酸的用量(0.01%、0.02%、0.03%、0.04%、0.05%)進(jìn)行了考察,發(fā)現(xiàn)甲酸含量為0.04%時(shí)分離效果最佳,既保證了13 種植物激素混合標(biāo)樣的有效分離,又改善了拖尾現(xiàn)象。因此最終確定流動(dòng)相A 為甲酸-水溶液(0.04:99.6),B 為甲酸-乙腈溶液(0.04:99.6),并采用梯度洗脫方式進(jìn)行洗脫。

    2.4 質(zhì)譜條件優(yōu)化

    植物激素的檢測(cè)有采用正離子模式,也有采用負(fù)離子模式[12,13]。在正離子模式下,部分物質(zhì)產(chǎn)生了[M+Na]+、[M+K]+的離子峰。其中,[M+Na]+和[M+K]+可能是水中的Na+,K+引起的。在負(fù)離子模式ESI(-)下,13 種植物激素都產(chǎn)生了響應(yīng)較強(qiáng)的[M-H]-。綜合考慮,本實(shí)驗(yàn)選擇負(fù)離子模式[ESI(-)]。其次,優(yōu)化化合物的子離子和碰撞能量,選擇豐度較高的兩個(gè)子離子作為化合物的特征離子對(duì),并對(duì)電噴霧電壓、離子源溫度、碰撞氣、掃描駐留時(shí)間,去簇電壓及碰撞電壓等參數(shù)優(yōu)化,確定出最佳的質(zhì)譜參數(shù)。所有植物激素的質(zhì)譜參數(shù)見(jiàn)表1。最佳色譜質(zhì)譜條件下的13 種植物激素總離子流圖如圖1b 所示。

    表1 13 種植物激素的質(zhì)譜參數(shù) Table 1 The mass spectrum of thirteen plant hormones

    2.5 線性關(guān)系和檢出限

    標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)儲(chǔ)備液用甲醇稀釋配制成10 μg/mL 標(biāo)準(zhǔn)溶液,然后再稀釋至ng/mL 標(biāo)準(zhǔn)工作液系列。以上述色譜質(zhì)譜條件,對(duì)系列標(biāo)準(zhǔn)工作液進(jìn)行分析,以植物激素濃度為x 軸,所對(duì)應(yīng)的峰面積為y 軸,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,并進(jìn)行線性回歸,得到回歸方程和相關(guān)系數(shù)(R2),以信噪比(S/N)為3 確定化合物的檢出限(LOD),具體見(jiàn)表2。線性范圍在1~500 ng/mL 之間,R2均大于0.9980,LOD 最低至0.310 ng/mL。

    表2 13 種植物激素的線性方程、相關(guān)系數(shù)、檢出限(LOD)Table 2 Linearity,correlation coefficient (R2) and detection limits of thirteen plant hormones

    2.6 回收率和精密度

    在處理的樣品中添加標(biāo)準(zhǔn)混合溶液,制備1、50、100 ng/mL 三個(gè)濃度加標(biāo)水平的樣品,每個(gè)濃度水平設(shè)3 個(gè)平行樣品。用本方法進(jìn)行測(cè)定,平均回收率和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差見(jiàn)表3。添加3 個(gè)不同濃度(1、50、100 ng/mL)的植物激素標(biāo)準(zhǔn)溶液,13 種植物激素的平均加標(biāo)回收率為81.90%~118.80%,RSD 均小于8.12%,方法的準(zhǔn)確度和精密度均符合檢測(cè)要求。各植物激素在保留時(shí)間區(qū)域內(nèi)無(wú)干擾,故本方法具有較好的選擇性。

    表3 回收率與相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差試驗(yàn)結(jié)果 Table 3 Recovery and relative standard deviation (RSD) of thirteen plant hormones (n=3)

    2.7 實(shí)際樣品分析

    研究選取湘早秈45 號(hào)、汕優(yōu)63 號(hào)和桂朝2 號(hào)三個(gè)品種的水稻樣品。將測(cè)得的植物激素的峰面積代入上述工作曲線中,經(jīng)過(guò)換算,得到相應(yīng)的水稻中植物激素含量,如表4 所示。從表4 中可以看出,三個(gè)品 種水稻中GA3 和ABA 含量較多,研究表明GA3 和植物生長(zhǎng)、細(xì)胞伸長(zhǎng)相關(guān)并且促進(jìn)代謝,而ABA 對(duì)植物成花的誘導(dǎo)和發(fā)育具有重要調(diào)控作用[21]。此外,GA4 是具有生物活性的赤霉素,能夠促進(jìn)莖的生長(zhǎng)[21];GA7 可以打破某些種子的休眠,提高結(jié)實(shí)率[22];JA-ILe 可以增強(qiáng)植物遭遇損傷或者蟲(chóng)鳥(niǎo)取食后產(chǎn)生局部防御反應(yīng)能力[22];CS 是一種能促進(jìn)植物莖桿伸長(zhǎng)和細(xì)胞分裂的高活性物質(zhì),亦可防御環(huán)境脅迫[23,24]。最后,通過(guò)比較可以看出,不同品種的水稻中植物激素含量有些差異。

    表4 水稻樣品中的13 種植物激素含量 Table 4 The content of thirteen plant hormones in rice samples

    2.8 方法對(duì)比分析

    將本研究所得的結(jié)果與文獻(xiàn)中的檢測(cè)方法檢出限進(jìn)行了對(duì)比,結(jié)果如表5 所示。從表5 中我們可以看出,本研究建立的多種激素測(cè)定方法大部分都比文獻(xiàn)中所報(bào)道的檢測(cè)方法檢出限更低,并且檢出的植物激素種類(lèi)更多。關(guān)于GA1、IPA、GA4、GA7、JA-ILe、CS、12-OPDA 和TY 含量測(cè)定的方法文獻(xiàn)中鮮有報(bào)道。本研究建立的測(cè)定方法,能夠很好地應(yīng)用于GA1、IPA、GA4、GA7、JA-ILe、CS、12-OPDA 和TY 等植物激素含量的檢測(cè)。

    表5 植物激素測(cè)定方法的檢出限對(duì)比 Table 5 Detection limit comparsion of plant hormones

    3 結(jié)論

    本研究建立了超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法同時(shí)測(cè)定水稻組織中赤霉素3,赤霉素1,異戊烯基腺嘌呤,水楊酸,吲哚乙酸,脫落酸,茉莉酸,赤霉素7,赤霉素4,茉莉酸異亮氨酸,油菜素甾酮,12 氧代植物二烯酸和香蒲甾醇的方法。該方法簡(jiǎn)便快速,能夠滿足水稻中植物激素含量的要求,具有一定的實(shí)際應(yīng)用價(jià)值。這將對(duì)深入研究水稻生長(zhǎng)與發(fā)育過(guò)程、揭示水稻響應(yīng)生物與非生物環(huán)境機(jī)制、提高水稻產(chǎn)量和品質(zhì)以及鑒定植物激素殘留限量等方面具有重要的實(shí)際應(yīng)用與參考價(jià)值。

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