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    電解多維對(duì)大黃魚仔稚魚尾部骨骼發(fā)育的致畸性初探

    2021-09-23 12:26:22柯巧珍余訓(xùn)凱張文兵黃匡南翁華松包欣源劉興彪劉家富
    漁業(yè)信息與戰(zhàn)略 2021年3期
    關(guān)鍵詞:稚魚仔魚大黃魚

    陳 佳,柯巧珍,余訓(xùn)凱,張文兵,黃匡南,翁華松,包欣源,劉興彪,劉家富*

    (1.大黃魚育種國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,寧德市富發(fā)水產(chǎn)有限公司,福建寧德 352103;2.中國(guó)海洋大學(xué)水產(chǎn)學(xué)院,山東青島 266071)

    大黃魚(Larimichthys crocea)是目前我國(guó)養(yǎng)殖規(guī)模最大的海水魚類,2019年養(yǎng)殖產(chǎn)量達(dá)22.55×104t,年育苗量達(dá)34.16億尾[1]。在以往大黃魚育苗過(guò)程中,由于仔稚魚期大黃魚苗尚未或少量攝食人工顆粒飼料,育苗戶時(shí)常往育苗池潑灑魚用電解多維(魚用多種維生素預(yù)混合料),以保障仔稚魚對(duì)各種維生素的正常需求。魚用電解多維富含大黃魚苗生長(zhǎng)發(fā)育所必需的多種維生素,但育苗場(chǎng)施用電解多維后,大黃魚仔稚魚發(fā)育畸形現(xiàn)象時(shí)有發(fā)生,且目前未見(jiàn)相關(guān)研究報(bào)道。2014年至今,寧德市多家育苗場(chǎng)培育的大黃魚仔稚魚出現(xiàn)尾部發(fā)育畸形,對(duì)生產(chǎn)造成重大損失。因此,本研究初步探討電解多維對(duì)大黃魚仔稚魚尾部骨骼發(fā)育致畸性原理,通過(guò)實(shí)驗(yàn)結(jié)果為指導(dǎo)生產(chǎn)中電解多維的最佳使用策略提供基礎(chǔ)資料,進(jìn)而指導(dǎo)大黃魚苗種安全生產(chǎn)。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)條件與材料

    實(shí)驗(yàn)用魚卵:閩-粵東族大黃魚受精卵。

    養(yǎng)殖設(shè)施:100 m3育苗池(長(zhǎng)×寬×深=10 m×5 m×2 m)。

    實(shí)驗(yàn)用水:過(guò)濾海水充分曝氣,鹽度23~24,水溫維持在(25±0.5)℃,pH為7.8~8.2,溶氧量≥5 mg·L-1。

    實(shí)驗(yàn)藥劑:電解多維(粉劑);產(chǎn)品名稱:魚用維生素預(yù)混合飼料(JG352);生產(chǎn)廠家:湖北省金谷藥業(yè)有限公司;產(chǎn)品批準(zhǔn)文號(hào):鄂飼(預(yù))字(2014)178131;每千克成分含量:維生素A≥1 200 000 IU,維生素D3≥300 000 IU,維生素E≥4 000 mg,維生素B1≥3 500 mg,維生素B2≥4 000 mg,維生素B6≥3 000 mg,維生素B12≥5 mg,維生素C≥4 000 mg,煙酸≥8 000 mg,葉酸≥500 mg,水分≤10%。

    1.2 實(shí)驗(yàn)方法

    設(shè)置實(shí)驗(yàn)組1、實(shí)驗(yàn)組2、實(shí)驗(yàn)組3和對(duì)照組,每組2個(gè)重復(fù),每個(gè)重復(fù)在單口100 m3育苗池中放入3 kg大黃魚受精卵,進(jìn)行正常的受精卵孵化和苗種培育操作。通過(guò)預(yù)實(shí)驗(yàn),各組選擇以孵化后3 d(初孵仔魚開(kāi)口期)或20 d(稚魚初始期)為電解多維浸泡或投喂起始時(shí)間。實(shí)驗(yàn)組1潑灑電解多維的起止時(shí)間為受精卵孵化后的第3~10 d,電解多維濃度5.0 mg·L-1;實(shí)驗(yàn)組2潑灑電解多維的起止時(shí)間為受精卵孵化后的第20~27 d,電解多維濃度5.0 mg·L-1;實(shí)驗(yàn)組3拌料投喂電解多維起止時(shí)間為受精卵孵化后的第20~27 d,電解多維每天投入量占仔稚魚體質(zhì)量的比重為30 mg·kg-1;對(duì)照組不潑灑也不拌料投喂電解多維。

    實(shí)驗(yàn)開(kāi)始時(shí),每口育苗池中分別加入增溫海水,保持曝氣,根據(jù)大黃魚消化系統(tǒng)發(fā)育情況,3~19 d以輪蟲、豐年蟲和橈足類飽食投喂魚苗,20 d后以人工微顆粒飼料飽食投喂魚苗。每24 h更換等電解多維濃度的實(shí)驗(yàn)用水一次,顯微鏡下觀測(cè)并記錄大黃魚仔稚魚尾柄發(fā)育情況,及時(shí)撈除死亡個(gè)體。

    1.3 實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)處理

    利用Olympus公司CX31型數(shù)碼顯微鏡和尼康圖像軟件開(kāi)展圖像采集,并分析電解多維對(duì)大黃魚仔魚期和稚魚期尾部骨骼發(fā)育的影響。

    2 實(shí)驗(yàn)結(jié)果

    實(shí)驗(yàn)組1、2、3和對(duì)照組的仔稚魚3 d時(shí)尾桿骨均呈平直形,尾鰭發(fā)育正常(圖1-A)。

    10 d時(shí)實(shí)驗(yàn)組1的仔魚尾柄全部呈現(xiàn)形狀因子減小、面積減小,其外形表現(xiàn)為尾部骨骼畸形,尾鰭無(wú)法發(fā)育,尾部外形趨向于圓形(圖1-B);10 d后停止?jié)姙㈦娊舛嗑S,14 d、21 d和27 d時(shí)仍觀察到實(shí)驗(yàn)組1仔稚魚的尾柄畸形現(xiàn)象(圖1-C,圖1-D,圖2-A)。表明仔魚期大黃魚對(duì)電解多維非常敏感,并發(fā)生明顯的發(fā)育畸變效應(yīng),且仔魚畸變后表現(xiàn)為不可逆。

    實(shí)驗(yàn)組2、3和對(duì)照組的仔魚尾鰭3~27 d均正常發(fā)育,21 d和27 d時(shí)尾鰭的尾上骨和尾下骨均清晰可見(jiàn),尾桿發(fā)育正常(如圖1-D,圖2-B,圖2-C,圖2-D),表明實(shí)驗(yàn)組2和3稚魚期(受精卵孵化20 d后)大黃魚對(duì)電解多維不敏感,即無(wú)論以浸泡或拌料投喂方式施用電解多維,與對(duì)照組大黃魚苗相比,實(shí)驗(yàn)組2和實(shí)驗(yàn)組3的大黃魚苗未發(fā)生任何畸變。

    圖1 孵化后3~21 d實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組大黃魚仔稚魚尾部骨骼特征示例Fig.1 Characteristics of caudal skeletons of Larimichthys crocea larvae(3-21 dph)in experimental group and control group

    圖2 孵化27 d后實(shí)驗(yàn)組1、2、3和對(duì)照組大黃魚仔稚魚尾部骨骼分化發(fā)育情況示例Fig.2 Examples of differentiation and ontogeny in the caudal skeletons of Larimichthys crocea larvae(27 dph)in experimental group and control group

    3 討論

    3.1 電解多維對(duì)大黃魚仔稚魚的致畸性原理分析

    在魚類發(fā)育的仔稚魚期,遺傳、營(yíng)養(yǎng)、水環(huán)境和疾病都是導(dǎo)致骨骼發(fā)育畸形的主要影響因子[2]。魚類的脊索和尾部骨骼是畸形發(fā)生率最高的部位[3]。其中尾部骨骼畸形主要表現(xiàn)為尾上骨、尾下骨分化受抑制,尾椎骨畸形等[4]。在人工培育條件下,可通過(guò)篩除表型畸形的親本,從而杜絕遺傳因素造成的畸形;因此環(huán)境和營(yíng)養(yǎng)因素是仔稚魚骨骼發(fā)育畸形的主要誘因[5-6]。

    電解多維中維生素A、D是人和動(dòng)物生長(zhǎng)發(fā)育中所必需的維生素,這兩種維生素同為脂溶性維生素[7],其進(jìn)入機(jī)體后均在小腸部位被吸收,其中一種維生素過(guò)量會(huì)打破內(nèi)分泌系統(tǒng)的平衡,進(jìn)而在轉(zhuǎn)錄水平和翻譯水平影響到骨骼礦化相關(guān)蛋白的表達(dá)與活性,影響機(jī)體對(duì)其他維生素的吸收利用,在生命周期的前兩周容易發(fā)生將一些成骨細(xì)胞轉(zhuǎn)化為脂肪細(xì)胞的變化,而成骨細(xì)胞的缺失很可能導(dǎo)致了骨骼畸形,最終影響生物的正常骨骼發(fā)育[8]。

    維生素A是魚類骨代謝的關(guān)鍵營(yíng)養(yǎng)因子,其可能影響仔稚魚階段骨骼發(fā)育[9-10]。維生素A的代謝是通過(guò)兩組核內(nèi)受體進(jìn)行[11],這些受體能夠與維生素D受體或過(guò)氧化物酶體增殖物激活受體(peroxisome proliferators-activated receptors,PPARs)形成多聚體功能單元,并與骨化或骨骼代謝相關(guān)基因的DNA結(jié)合區(qū)域結(jié)合,對(duì)其進(jìn)行調(diào)控[12]。餌料中添加超劑量的維生素A會(huì)打破營(yíng)養(yǎng)平衡,造成仔魚椎骨融合等骨骼發(fā)育畸形[13-14]。此外,在青鳉(Oryzias latipes)的研究中發(fā)現(xiàn),視黃酸能夠通過(guò)視黃酸受體介導(dǎo)多環(huán)芳香烴受體基因的表達(dá),進(jìn)而調(diào)控青鳉骨骼的發(fā)育和形成[15]。本研究發(fā)現(xiàn),在對(duì)照組大黃魚仔魚期,魚苗通過(guò)攝食輪蟲、豐年蟲和橈足類,其骨骼即可正常發(fā)育,這應(yīng)該與輪蟲、豐年蟲和橈足類體內(nèi)含有豐富的維生素A等營(yíng)養(yǎng)成分有很大的相關(guān)性。同時(shí),20~27 d大黃魚仔稚魚在接受電解多維5.0 mg·L-1的水體濃度潑灑或每天按占仔稚魚體質(zhì)量比30 mg·kg-1的濃度拌料投喂,均未出現(xiàn)骨骼畸形,這進(jìn)一步說(shuō)明電解多維誘發(fā)骨骼畸形與大黃魚個(gè)體發(fā)育階段存在關(guān)聯(lián)。

    維生素D是維持骨骼中鈣和磷平衡、維護(hù)骨骼完整的物質(zhì)[16]。維生素D能夠通過(guò)維生素D結(jié)合蛋白和維生素D受體促進(jìn)各種鈣結(jié)合蛋白與轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白的表達(dá),調(diào)節(jié)鈣元素的攝取以保持一定的血鈣含量,進(jìn)而維持骨骼中礦物元素穩(wěn)態(tài)和骨骼礦化[17-18],能直接參與成骨細(xì)胞的分裂、分化以及礦化作用等過(guò)程[19]。歐洲海鱸(Dicentrarchus labrax)幼魚在骨骼形成過(guò)程中,對(duì)低水平的維生素D含量變化也表現(xiàn)出高度敏感性,幼魚飲食中攝入過(guò)量的維生素D(>27.6 IU·g-1)會(huì)引發(fā)2個(gè)骨細(xì)胞分化、成熟的重要因子——骨形態(tài)測(cè)定蛋白-4(BMP-4)和類胰島素樣生長(zhǎng)因子-1(IGF-1)的基因表達(dá)不同步,主要是IGF-1受抑制表達(dá)水平低,從而造成骨鈣素表達(dá)低,骨骼礦化程度低[17-18]。維生素D的缺乏和過(guò)量添加均會(huì)造成海水養(yǎng)殖魚類初孵仔魚脊柱和鰓骨發(fā)育異常[4,20]。本研究中實(shí)驗(yàn)組1的3~10 d大黃魚仔魚骨骼發(fā)育出現(xiàn)畸形,其成因或可從上述維生素D攝入不均衡而造成實(shí)驗(yàn)對(duì)象骨細(xì)胞關(guān)鍵分化因子表達(dá)異常的結(jié)果得到啟示。

    維生素C是魚類重要的微量營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)之一,它是合成骨膠原的必需成分[21]。維生素C缺乏癥會(huì)引起骨骼去礦化,引起仔稚魚骨骼畸形[22]。如在閃光鴨嘴鯰(Pseudoplatystoma coruscans)的研究中發(fā)現(xiàn),飼料中缺乏維生素C時(shí),魚的頭部和頜骨的骨骼變形,同時(shí)魚鰭也呈現(xiàn)脆弱性[23]。此外,有研究表明,在缺乏維生素E的情況下,維生素C可以在一定程度上起到補(bǔ)償作用,從而降低大口黑鱸(Micropterus salmoides)骨骼畸形發(fā)生率[24],但長(zhǎng)期高劑量的維生素C也有礙骨細(xì)胞的形成。本研究發(fā)現(xiàn)潑灑5.0 mg·L-1的電解多維能夠造成3~10 d大黃魚仔魚發(fā)育致畸性達(dá)100%,但對(duì)于這種骨骼發(fā)育畸形的分子機(jī)制和細(xì)胞分化轉(zhuǎn)化機(jī)制等仍需要進(jìn)一步深入探究,以為以后營(yíng)養(yǎng)性預(yù)防奠定基礎(chǔ)。

    3.2 預(yù)防電解多維對(duì)大黃魚仔稚魚致畸的措施

    本研究表明,在大黃魚仔稚魚培育過(guò)程中,維生素使用過(guò)量(濃度5.0 mg·L-1)會(huì)對(duì)仔魚(1~10 d)骨骼發(fā)育造成嚴(yán)重脅迫,致畸性可達(dá)100%。正常情況下,大黃魚仔魚通過(guò)攝食輪蟲和豐年蟲即可正常發(fā)育,無(wú)需施用電解多維強(qiáng)化營(yíng)養(yǎng),因此,對(duì)于仔魚(1~10 d)不建議施用;20 d后使用電解多維對(duì)大黃魚稚魚骨骼發(fā)育無(wú)顯著影響。此外,對(duì)于特定維生素過(guò)量造成大黃魚仔稚魚骨骼發(fā)育的影響,需要進(jìn)一步定量研究后,才能用以指導(dǎo)不同苗種培育時(shí)期維生素的正確施用劑量,從而保障大黃魚苗種繁育工作健康發(fā)展。

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