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    角蛋白支架聯(lián)合TGF-β3基因過表達(dá)載體質(zhì)粒轉(zhuǎn)染的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞對(duì)軟骨缺損的修復(fù)效果

    2021-09-22 01:27:38孫永杰龐偉蘋葉發(fā)剛
    精準(zhǔn)醫(yī)學(xué)雜志 2021年4期
    關(guān)鍵詞:大白兔角蛋白軟骨

    孫永杰 龐偉蘋 葉發(fā)剛

    (1 青島大學(xué)醫(yī)學(xué)部臨床醫(yī)學(xué)系,山東 青島 266003; 2 青島大學(xué)附屬醫(yī)院創(chuàng)傷外科;3 單縣中心醫(yī)院骨三科; 4 青島大學(xué)附屬醫(yī)院嶗山院區(qū)心內(nèi)科)

    軟骨缺損是骨科常見的疾病之一,如果不及時(shí)治療,會(huì)導(dǎo)致骨性關(guān)節(jié)炎(OA)發(fā)生和進(jìn)展,嚴(yán)重影響患者的運(yùn)動(dòng)功能和降低生活質(zhì)量[1-3]。骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(BMSC)是干細(xì)胞組織工程中常見的種子細(xì)胞,具有來源廣泛、無排異反應(yīng)的特點(diǎn)[4-5]。既往也有應(yīng)用BMSC移植促進(jìn)軟骨缺損修復(fù)的研究,但是因?yàn)楦杉?xì)胞具有多分化潛能,轉(zhuǎn)化為軟骨細(xì)胞的效率較低[6-7]。而轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子-β3(TGF-β3)可以特異性誘導(dǎo)BMSC向軟骨細(xì)胞分化[8-9]。角蛋白支架系統(tǒng)是組織工程領(lǐng)域較為先進(jìn)的支架結(jié)構(gòu),具有組織兼容性好、硬度適合、易分解的特點(diǎn)[10-11]。本研究利用新西蘭大白兔構(gòu)建脛骨側(cè)軟骨缺損動(dòng)物模型,將TGF-β3基因的過表達(dá)載體質(zhì)粒轉(zhuǎn)染BMSC并聯(lián)合角蛋白支架對(duì)軟骨缺損部位進(jìn)行填充,利用蘇木精-伊紅(HE)染色、番紅-固綠染色和免疫組織化學(xué)染色等方法檢測(cè)軟骨缺損的修復(fù)情況,以期為臨床上軟骨缺損的治療提供新的思路和方法。

    1 材料與方法

    1.1 動(dòng)物來源

    新西蘭種大白兔20只購自濟(jì)南實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心,清潔級(jí)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物,雄性,年齡為(12.97±1.21)月,合格證書為(SCXK(魯)2018-1119)。本研究方案通過青島大學(xué)附屬醫(yī)院動(dòng)物倫理委員會(huì)的批準(zhǔn)[批準(zhǔn)號(hào):CN(魯)B2020-7845]。

    1.2 試劑

    DMEM培養(yǎng)基、胰蛋白酶和HE染液均購自北京碧云天科技有限公司,胎牛血清(FBS)購自以色列BI公司,Aggrecan和Ⅱ型膠原蛋白一抗購自英國Abcam生物技術(shù)有限公司。

    1.3 兔源BMSC的提取和鑒定

    大白兔1只,采用含體積分?jǐn)?shù)0.10的水合氯醛(2~3 mL/kg)腹腔注射麻醉后抽取股骨骨髓2~3 mL。然后加入4 mL含體積分?jǐn)?shù)0.20的FBS的DMEM培養(yǎng)基,接種在細(xì)胞培養(yǎng)瓶中,置于37 ℃、含體積分?jǐn)?shù)0.15的CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。每3 d更換DMEM培養(yǎng)基一次,待細(xì)胞融合率達(dá)80%時(shí),進(jìn)行細(xì)胞傳代。培養(yǎng)72 h后,倒置光學(xué)顯微鏡下觀察原代BMSC和P3代BMSC,對(duì)P3代BMSC按照試劑盒說明書要求,采用流式細(xì)胞儀檢測(cè)BMSC表面CD34、CD45、CD90和CD44蛋白的表達(dá)水平。

    1.4 TGF-β3基因過表達(dá)載體質(zhì)粒構(gòu)建和轉(zhuǎn)染

    TGF-β3基因過表達(dá)載體的構(gòu)建和篩選由上海吉瑪生物有限公司完成。TGF-β3基因引物序列為5′-AATTGCCTAAAAGTCCTGCC-3′。將目的基因擴(kuò)增序列加入線性化表達(dá)載體,選取上海吉?jiǎng)P生物技術(shù)有限公司提供的hU6-MCS-CMV-EGFP慢病毒載體作為酶切對(duì)象,加入過表達(dá)載體序列后進(jìn)行克隆測(cè)定,然后進(jìn)行質(zhì)粒的抽提,慢病毒包裝后轉(zhuǎn)染BMSC,同時(shí)將綠色熒光蛋白(GFP)包裹于慢病毒載體質(zhì)粒中。TGF-β3基因過表達(dá)載體質(zhì)粒通過慢病毒轉(zhuǎn)染BMSC后,利用倒置熒光顯微鏡分別于熒光下和白光下觀察BMSC細(xì)胞及其數(shù)量,計(jì)算慢病毒的轉(zhuǎn)染率,轉(zhuǎn)染率=熒光下細(xì)胞數(shù)/白光下細(xì)胞數(shù)×100%。

    1.5 鹽瀝濾法構(gòu)建角蛋白支架

    將10 g/L的角蛋白與500 μm NaCl顆粒充分混合,室溫下風(fēng)干、成形。根據(jù)軟骨缺損的大小進(jìn)行修剪和塑形。消毒后備用,再利用透射電子顯微鏡(TEM)不同視窗觀察角蛋白支架形態(tài)。

    1.6 動(dòng)物分組與處理

    根據(jù)處理方式不同將20只新西蘭種大白兔分為4組,每組5只。模型組(A組)僅進(jìn)行膝關(guān)節(jié)脛骨側(cè)軟骨造模手術(shù):將大白兔腹腔注射水合氯醛麻醉后,分別備皮2個(gè)后肢膝關(guān)節(jié),切開關(guān)節(jié)腔,暴露脛骨側(cè)軟骨;用口腔鉆在軟骨上制作一3 mm×2 mm×1 mm大小的錐形軟骨缺損,生理鹽水沖洗后,逐層縫合切口,靜脈注射頭孢呋辛鈉抗感染處理。支架組(B組)大白兔膝關(guān)節(jié)脛骨側(cè)軟骨缺損造模成功后,于軟骨缺損處填充角蛋白支架,然后進(jìn)行縫合和抗感染處理;聯(lián)合BMSC組(C組)大白兔膝關(guān)節(jié)脛骨側(cè)軟骨缺損造模成功后,于軟骨缺損處填充角蛋白支架聯(lián)合BMSC復(fù)合物,然后進(jìn)行縫合和抗感染處理;聯(lián)合過表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染BMSC組(D組):大白兔膝關(guān)節(jié)脛骨側(cè)軟骨缺損造模成功后,于軟骨缺損處填充角蛋白支架聯(lián)合TGF-β3基因過表達(dá)載體轉(zhuǎn)染的BMSC復(fù)合物,然后進(jìn)行縫合和抗感染處理。處理完成后,兔正常飲食,12-12 h明暗交替光照,24 ℃恒溫、安靜環(huán)境中飼養(yǎng)1個(gè)月。然后所有兔均以耳緣靜脈注射空氣方式處死,取后肢軟骨缺損部分,以石臘包埋。

    1.7 缺損軟骨修復(fù)情況觀察

    將石蠟包埋標(biāo)本切片,嚴(yán)格按照說明書要求進(jìn)行HE染色后,置于倒置光學(xué)顯微鏡下觀察,利用改良O′Driscoll評(píng)分系統(tǒng)評(píng)估缺損軟骨修復(fù)情況。將切片標(biāo)本按照番紅-固綠染色說明書要求進(jìn)行染色后,利用改良Mankin評(píng)分系統(tǒng)評(píng)估缺損軟骨修復(fù)情況。切片標(biāo)本中加入Ⅱ型膠原蛋白一抗4 ℃濕盒避光孵育過夜,PBS溶液沖洗3次;羊抗兔IgG二抗避光孵育30 min,PBS溶液沖洗3次;中性樹膠固定,倒置光學(xué)顯微鏡下觀察染色的強(qiáng)度。

    1.8 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

    2 結(jié) 果

    2.1 兔源BMSC的培養(yǎng)和細(xì)胞表面CD分子的表達(dá)水平

    原代BMSC呈多角形,貼壁生長(zhǎng),P3代BMSC呈長(zhǎng)梭形(圖1),表明細(xì)胞由幼稚的原代細(xì)胞已成長(zhǎng)為成熟的細(xì)胞;流式細(xì)胞儀檢測(cè)結(jié)果顯示,P3代BMSC表面的CD34、CD45、CD90、CD44蛋白表達(dá)比率分別約為0.002、0.006、0.720、0.669,表明BMSC培養(yǎng)成功。

    2.2 慢病毒的轉(zhuǎn)染率及角蛋白支架形態(tài)觀察

    TGF-β3基因過表達(dá)載體質(zhì)粒通過慢病毒轉(zhuǎn)染BMSC的轉(zhuǎn)染率為(92.11±4.22)%。GFP綠色熒光染色結(jié)果顯示,慢病毒轉(zhuǎn)染成功的BMSC呈綠色熒光,細(xì)胞形態(tài)正常,質(zhì)粒均勻表達(dá)于BMSC內(nèi);在同一白光下視野觀察到BMSC的細(xì)胞形態(tài)正常,呈梭形,無皺縮變形(圖2)。透射電子顯微鏡觀察角蛋白支架形態(tài),15 μm視窗下可見角蛋白纖維條索規(guī)則,100 μm和1 mm視窗下可見角蛋白支架表面有大小不一的凹陷(圖3)。

    2.3 各組兔缺損軟骨修復(fù)情況

    HE染色和番紅-固綠染色結(jié)果顯示,A組可見大面積軟骨缺損,基底部可見軟骨下骨增生活躍;B組缺損處有少部分軟骨組織長(zhǎng)入,但仍可見較大缺損;C組缺損處愈合較好,多為纖維愈合;D組軟骨缺損基本愈合,愈合處多為軟骨組織(圖4)。A組、B組、C組和D組O′Driscoll評(píng)分分別為18.45±2.65、14.09±1.59、13.02±1.33、10.02±0.59,各組間比較差異有顯著性(F=9.342,P<0.05),其中D組O′Driscoll評(píng)分明顯低于其他組(q=2.018~2.498,P<0.05);而B組和C組O′Driscoll評(píng)分比較差異無顯著性(P>0.05)。

    A組、B組、C組和D組的Mankin評(píng)分分別為0.21±0.02、0.59±0.07、0.56±0.08、1.22±0.13,各組間比較差異具有顯著性(F=8.549,P<0.05);其中D組Mankin評(píng)分明顯高于其他組(q=2.237~3.457,P<0.05);而B組和C組比較差異無顯著性(P>0.05)。見圖5。

    免疫組織化學(xué)染色結(jié)果顯示,A組和B組缺損軟骨處可見少量Ⅱ型膠原蛋白表達(dá),C組和D組缺損軟骨處均可見Ⅱ型膠原蛋白表達(dá),C組多為纖維愈合,D組棕色染色更深,多為軟骨組織愈合。見圖6。

    A:原代BMSC,B:P3代BMSC,200倍

    A:熒光下視野,B:白光下視野,GFP綠色熒光染色,400倍

    A~C分別為15、100 μm和1 mm視窗下結(jié)果

    A~D分別為A~D組,200倍

    A~D分別為A~D組,200倍

    A~D分別為A~D組,200倍

    3 討 論

    軟骨缺損在關(guān)節(jié)外科中比較常見,多由直接或間接外力引起,導(dǎo)致關(guān)節(jié)內(nèi)產(chǎn)生游離體,造成關(guān)節(jié)卡頓[12-13]。嚴(yán)重時(shí)可加劇關(guān)節(jié)磨損,可以造成OA的發(fā)生[14-15]。目前尚無有效的治療方案,主要通過關(guān)節(jié)鏡取出游離體、利用支具進(jìn)行保護(hù)以及口服硫酸氨基葡萄糖等藥物進(jìn)行治療,但臨床效果并不是非常理想[16-17]。即使手術(shù)后可以獲得短期的疼痛緩解,但從遠(yuǎn)期效果來看,OA的發(fā)生率增高[18]。所以,對(duì)于軟骨缺損修復(fù)的研究十分必要。

    干細(xì)胞是組織工程領(lǐng)域常見的種子細(xì)胞,因其具有的多分化潛能可以在一定條件下向骨細(xì)胞和軟骨細(xì)胞分化[19-20]。既往圍繞干細(xì)胞分化的研究較多,徐青鐳等[21]對(duì)兔源BMSC進(jìn)行分離培養(yǎng)后,利用堿性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子和TGF進(jìn)行細(xì)胞層面的誘導(dǎo)分化,結(jié)果發(fā)現(xiàn),堿性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子和TGF可以促進(jìn)BMSC向軟骨細(xì)胞分化,從而促進(jìn)半月板組織的修復(fù)。楊昆等[22]通過構(gòu)建WNT2B過表達(dá)載體,以慢病毒轉(zhuǎn)染BMSC,研究結(jié)果發(fā)現(xiàn)WNT2B過表達(dá)的載體可以誘導(dǎo)BMSC向軟骨細(xì)胞分化。本研究通過分離并培養(yǎng)兔源BMSC,P3代BMSC表面的CD90蛋白和CD44蛋白表達(dá)量高,而CD34和CD45的表達(dá)量低,符合BMSC的特點(diǎn),說明培養(yǎng)的細(xì)胞確為BMSC。然后以慢病毒攜帶TGF-β3基因過表達(dá)載體轉(zhuǎn)染BMSC,結(jié)果轉(zhuǎn)染率較高,說明TGF-β3基因過表達(dá)載體可以穩(wěn)定表達(dá)于BMSC。將兔按照不同的方法進(jìn)行處理,免疫組化染色結(jié)果顯示,D組軟骨缺損處Ⅱ型膠原蛋白染色明顯高于其他組,說明TGF-β3基因過表達(dá)載體轉(zhuǎn)染的BMSC促進(jìn)了成軟骨分化。

    對(duì)于組織工程中支架的選擇,往往大多關(guān)注支架的組織兼容性、細(xì)胞吸附性以及是否易降解、是否可引起免疫反應(yīng)等方面[23-24]。目前可供選擇的有水凝膠支架、角蛋白支架、絲蛋白支架等[25-26]。既往研究中,角蛋白支架大多用于神經(jīng)再生組織工程,孫泉等[27]利用鹽析法構(gòu)建角蛋白支架,將神經(jīng)干細(xì)胞接種于角蛋白支架上,結(jié)果顯示,角蛋白可以促進(jìn)神經(jīng)干細(xì)胞向神經(jīng)細(xì)胞的分化。部分研究表明,角蛋白可以作為骨組織工程和軟骨組織工程的支架[28-29]。本研究利用角蛋白作為支架,聯(lián)合BMSC,觀察其促軟骨分化情況,結(jié)果顯示,兔軟骨缺損處有少部分軟骨組織長(zhǎng)入,但仍可見有缺損存在;C組軟骨缺損愈合較好,但多為纖維愈合;D組軟骨缺損愈合完全,組織嚴(yán)密,修復(fù)處多為軟骨組織。同時(shí)本研究還利用改良O′Driscoll評(píng)分對(duì)軟骨缺損修復(fù)情況進(jìn)行評(píng)估,結(jié)果顯示,D組評(píng)分明顯低于其他組;Mankin評(píng)分結(jié)果顯示,D組評(píng)分明顯高于其他組,說明經(jīng)過TGF-β3基因過表達(dá)載體轉(zhuǎn)染的BMSC與角蛋白支架聯(lián)合處理后軟骨缺損修復(fù)組織多為軟骨組織,缺損軟骨愈合較好。

    綜上所述,本研究將TGF-β3基因過表達(dá)載體通過慢病毒轉(zhuǎn)染BMSC,聯(lián)合角蛋白支架制備復(fù)合物,填充于新西蘭大白兔的膝關(guān)節(jié)軟骨缺損處,探究其對(duì)軟骨缺損的修復(fù)作用,結(jié)果表明,聯(lián)合過表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染的BMSC干預(yù)后,軟骨缺損處基本愈合,組織嚴(yán)密,多為軟骨組織,說明角蛋白支架聯(lián)合TGF-β3基因過表達(dá)載體質(zhì)粒轉(zhuǎn)染的BMSC復(fù)合物可以有效促進(jìn)軟骨缺損的修復(fù),為臨床上軟骨缺損患者的治療提供了數(shù)據(jù)參考。但關(guān)于角蛋白支架聯(lián)合TGF-β3基因過表達(dá)載體質(zhì)粒轉(zhuǎn)染BMSC修復(fù)軟骨缺損的具體機(jī)制,還有待進(jìn)一步研究。

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