張峰慧,薛迎春,許興榮,邵冬雪,張晨陽(yáng),劉巖,蘇敬陽(yáng),胡慧媛,郝麗英
(中國(guó)醫(yī)科大學(xué)藥學(xué)院藥物毒理學(xué)教研室,沈陽(yáng) 110122)
NaV1.5是主要心肌鈉通道,高表達(dá)于心房、心室肌細(xì)胞和浦肯野纖維。NaV1.5通道由28個(gè)外顯子組成,其C末端包含243個(gè)氨基酸(1773-1940a.a.),近端部分由6個(gè)α螺旋(αⅠ~αⅥ)構(gòu)成,αⅥ包含能與鈣調(diào)蛋白(calmodulin,CAM)結(jié)合的IQ基序[1-5]。IQ基序是細(xì)胞內(nèi)Ca2+調(diào)節(jié)NaV1.5的關(guān)鍵元件,是耦合EFhand結(jié)構(gòu)域和CAM與Ca2+相互作用的分子開(kāi)關(guān)[6]。鈣離子作為細(xì)胞生長(zhǎng)中的第二信使,參與多種生理過(guò)程,如鈣穩(wěn)態(tài)調(diào)節(jié)、心臟傳導(dǎo)和基因表達(dá)等[7]。同時(shí),編碼基因SCN5A突變導(dǎo)致NaV1.5通道結(jié)構(gòu)或功能異常,引起心肌細(xì)胞動(dòng)作電位除極期間通道表達(dá)水平降低,進(jìn)而引發(fā)多種心血管系統(tǒng)疾病,如長(zhǎng)QT綜合征(long QT syndrome,LQTS)、Brugada綜合征和心房顫動(dòng)等。有研究[8]顯示,LQTS已被證明與IQ基序中Ser1904leu突變干擾通道失活并促進(jìn)通道重新開(kāi)放有關(guān),Ala1924Thr突變導(dǎo)致BrS,但具體機(jī)制尚未闡明。本研究制備了NaV1.5鈉通道C末端IQ基序的重組蛋白,為進(jìn)一步探討NaV1.5鈉通道的分子調(diào)控機(jī)制及相關(guān)心血管疾病的研究提供了重要的物質(zhì)基礎(chǔ)。
pGEX-6P-3/IQ重組質(zhì)粒、TOP10穿刺菌、BL21化學(xué)感受態(tài)細(xì)菌委托武漢金開(kāi)瑞生物工程有限公司合成;AxyPrep質(zhì)粒DNA抽提試劑盒購(gòu)自江蘇康寧生命科學(xué)(吳江)有限公司;限制性內(nèi)切酶BamHⅠ和XhoⅠ購(gòu)自美國(guó)New England Biolabs公司;胰蛋白胨、酵母提取物均購(gòu)自英國(guó)Oxoid公司;異丙基硫代-β-D-半乳糖苷(isopropyl-beta-D-thiogalactopyranoside,IPTG)、氨芐西林、溶菌酶、N-lauroylsarcosine、二硫蘇糖醇(DL-dithiothreitol,DTT)購(gòu)自美國(guó)Sigma公司;Precission Protease、Glutathione-Sepharos 4B 購(gòu)自美國(guó)GE Healthcare公司;其他試劑均購(gòu)自中國(guó)Biosharp公司。
將武漢金開(kāi)瑞生物工程有限公司提供的表達(dá)有pGEX-6P-3/IQ重組質(zhì)粒的TOP10菌種(20 μL)置于20 mL含0.14 mmol/L氨芐西林的LB液體培養(yǎng)基中,37 ℃、120 r/min搖床振搖培養(yǎng)12 h。當(dāng)其吸光度值(λ=600)在0.8~0.9時(shí),于12 000g離心1 min,收集菌液。按照AxyPrep質(zhì)粒DNA小量抽提試劑盒說(shuō)明書(shū)抽提質(zhì)粒,測(cè)定質(zhì)粒DNA濃度。
1.3.1 酶切鑒定:重組質(zhì)粒有BamHⅠ和XhoⅠ2個(gè)限制性酶切位點(diǎn),故采用雙酶切法處理純化后的重組質(zhì)粒DNA。根據(jù)限制酶使用說(shuō)明書(shū),取4 μg質(zhì)粒DNA加入到50 μL酶切體系中,單酶切組加入4 μL的BamHⅠ限制酶,雙酶切組分別加入4 μL的BamHⅠ和XhoⅠ限制酶,用滅菌ddH2O補(bǔ)足體積。單酶切條件為37 ℃,10 min,雙酶切條件為初始37 ℃,10 min,后65 ℃,20 min。酶切處理后的質(zhì)粒DNA樣品進(jìn)行瓊脂糖電泳鑒定。
1.3.2 測(cè)序鑒定:取4 μg經(jīng)上述方法提取的質(zhì)粒DNA送至武漢金開(kāi)瑞生物工程有限公司進(jìn)行測(cè)序,測(cè)序結(jié)果經(jīng)PubMed網(wǎng)站的BLAST軟件比對(duì)同源性。
利用I-TASSER同源建模服務(wù)器對(duì)NaV1.5鈉通道C末端IQ基序和鈣蛋白酶抑素N末端結(jié)構(gòu)域(CSL蛋白)進(jìn)行同源建模,加州大學(xué)蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)在線檢測(cè)服務(wù)器對(duì)建模結(jié)果進(jìn)行評(píng)估,利用分子模擬及藥物設(shè)計(jì)綜合軟件(molecular operating environment,MOE)軟件對(duì)IQ基序和CSL蛋白進(jìn)行去氧加氫等預(yù)處理,使用DOCK分子對(duì)接程序模擬IQ基序與CSL蛋白結(jié)合,對(duì)結(jié)合模型進(jìn)行評(píng)分。
根據(jù)課題組前期對(duì)CaV1.2不同蛋白片段提取方法的總結(jié),本研究采用超聲破碎法提取IQ蛋白[9]。取60 μL轉(zhuǎn)化有IQ基序重組質(zhì)粒并擴(kuò)增后的BL21菌液,加入到400 mL含有氨芐西林的LB液體培養(yǎng)基中,37 ℃、85 r/min振搖培養(yǎng)12~16 h,待測(cè)定菌液吸光度至0.6~1.0時(shí),加入400 μL 的1 mmol/L IPTG于37℃、120 r/min搖床振搖4 h,誘導(dǎo)重組蛋白表達(dá)。離心收集細(xì)菌,加入200 μL 1 mol/L溶菌酶、200 μL 1 mol/L DTT、2 mL 15% N-lauroylsarcosine,冰上處理30 min,超聲粉碎細(xì)菌,加入667 μL 30% TritonX-100,冰上處理30 min,收集上清,分裝備用。
將蛋白上清液與GS-4B beads 于旋轉(zhuǎn)培養(yǎng)儀4 ℃孵育過(guò)夜,800 r/min離心3 min 后棄上清,Tris Buffer洗滌3次后,收集蛋白。用上述同樣方法提取純化CSL蛋白[15],CSL蛋白與GS-4B beads孵育后用5 μL Precission蛋白酶切去GST標(biāo)簽。用Bradford試劑盒測(cè)定蛋白濃度。
采用pull down方法檢測(cè)GST-IQ蛋白與CSL蛋白的結(jié)合活性。取40 μL連接有GST-IQ蛋白GS-4B beads置于2 mL EP管中,分別加入3 μL 1 mmol/L的CaCl2(Ca2+終濃度為10 μmol/L)溶液和不同濃度的CSL蛋白,使其終濃度分別為0、0.1、0.3、1、3、5、10、30 mmol/L,用Tris Buffer(pH 8.0)補(bǔ)充至總體系300 μL,旋轉(zhuǎn)培養(yǎng)儀4 ℃孵育4 h。將經(jīng)15% SDA-PAFE電泳分離后的蛋白凝膠進(jìn)行考馬斯亮藍(lán)染色,脫色后掃描凝膠圖片。
采用CS Analyzer軟件對(duì)電泳條帶進(jìn)行灰度值數(shù)字化,Prism軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。采用t檢驗(yàn)進(jìn)行差異比較,P< 0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
將預(yù)先設(shè)計(jì)好的人源IQ基序(135 bp)于 pGEX-6P-3質(zhì)粒載體(4 983 bp)的BamHⅠ/XhoⅠ處插入,其中,BamHⅠ酶切位點(diǎn)位于質(zhì)粒載體的945 bp處,XhoⅠ酶切位點(diǎn)位于質(zhì)粒載體的968 bp處,故重組質(zhì)粒全長(zhǎng)5 095 bp,經(jīng)BamHⅠ/XhoⅠ雙酶切后產(chǎn)生2個(gè)基因片段,分別是IQ基序片段135 bp和載體片段4 960 bp。瓊脂糖凝膠電泳的3條泳道內(nèi)分別為完整的IQ重組質(zhì)粒,經(jīng)BamHⅠ單酶切和經(jīng)BamHⅠ/XhoⅠ雙酶切后的質(zhì)粒片段,結(jié)果顯示,雙酶切組4 960 bp和135 bp處出現(xiàn)明顯條帶,其分子量與計(jì)算所得理論值相符,見(jiàn)圖1。
圖1 重組IQ質(zhì)粒酶切鑒定瓊脂糖凝膠電泳圖Fig.1 Validation of recombinant IQ plasmid construction by agarose gel electrophoresis of restriction enzyme digests
圖2 重組質(zhì)粒測(cè)序結(jié)果Fig.2 Verification of recombinant plasmid by DNA sequencing
經(jīng)PubMed網(wǎng)站的BLAST程序比對(duì),重組質(zhì)粒與人類基因同源性為100 %,插入方向正確,讀碼方向正確,無(wú)移碼突變,進(jìn)一步證明本研究重組質(zhì)粒構(gòu)建成功。
采用MOE分子對(duì)接程序模擬IQ基序與CSL蛋白結(jié)合,結(jié)果顯示,2種蛋白分子對(duì)接評(píng)分為47.67,E值為12.63 Kcal/mol。IQ基序與CSL蛋白有2個(gè)結(jié)合位點(diǎn),分別是IQ基序的Arg1910與CSL蛋白模型的Glu14結(jié)合、IQ基序的Arg1913與CSL蛋白模型的His13結(jié)合。Arg1910、Arg1913與CSL蛋白之間的非鍵作用力是氫鍵,結(jié)合能分別是-1.0、-1.0 kcal/mol。由此可見(jiàn),CSL蛋白可以與NaV1.5鈉通道C末端IQ基序結(jié)合,見(jiàn)表1。
表1 IQ基序與CSL蛋白的分子對(duì)接結(jié)果Tab.1 Results of docking of CSL with the IQ motif
經(jīng)SMS在線DNA和蛋白序列處理工具預(yù)測(cè)得的GST-IQ融合蛋白的表觀分子量為30 000。以GST蛋白作為對(duì)照,GST-IQ融合蛋白在30 000左右處可見(jiàn)特異性條帶,且雜帶較少,表明提取純化后獲得純度較高的IQ蛋白,與預(yù)期結(jié)果一致,見(jiàn)圖3。
圖3 純化后IQ蛋白的SDS-PAGE電泳圖Fig.3 SDS-PAGE of purified IQ protein
為了考察經(jīng)超聲破碎法提取的GST-IQ蛋白的生物學(xué)活性,并驗(yàn)證MOE預(yù)測(cè)結(jié)果,將純化后的GST-IQ蛋白與不同濃度的CSL蛋白在1 mmol/L Ca2+條件下共同孵育,經(jīng)pull down實(shí)驗(yàn)檢測(cè)發(fā)現(xiàn),GST-IQ蛋白能夠與CSL蛋白結(jié)合,且隨著CSL蛋白濃度的增加,兩者的結(jié)合量也呈遞增趨勢(shì)(圖4),提示經(jīng)本研究方法提取純化的GST-IQ蛋白具有較好的生物學(xué)活性,適合后續(xù)NaV1.5鈉通道的相關(guān)研究中。
圖4 IQ蛋白和CSL蛋白的pull down分析結(jié)果Fig.4 Pull down assay to assess binding of IQ protein to CSL protein
在哺乳動(dòng)物中,電壓門(mén)控鈉通道可以快速開(kāi)放和關(guān)閉,產(chǎn)生的動(dòng)作電位在快速電信號(hào)傳導(dǎo)中起重要作用[10]。有研究[4]表明,存在于心肌細(xì)胞的蛋白可作用于NaV1.5的不同結(jié)構(gòu)域而參與NaV1.5的生物合成、運(yùn)輸、活性調(diào)節(jié),如CAM等。其中,CAM可以在無(wú)Ca2+(apo)或Ca2+飽和條件下與NaV1.5的IQ基序結(jié)合,使鈉通道緩慢失活曲線右移,進(jìn)而引起動(dòng)作電位時(shí)程延長(zhǎng)[11]。
IQ基序廣泛分布于肌球蛋白和非肌球蛋白中,包括神經(jīng)元生長(zhǎng)蛋白、電壓門(mén)控通道、磷酸酶等,其生物功能廣泛,如參與神經(jīng)元生長(zhǎng)、有絲分裂、電壓門(mén)控通道的信號(hào)傳導(dǎo)等[12]。而位于心肌NaV1.5鈉通道C末端的IQ基序,不僅參與許多蛋白的Ca2+依賴性調(diào)節(jié),還可能包含一些心臟疾病的突變位點(diǎn)。已知IQ基序在所有鈉通道亞型中是高度保守的,而在CaV1.2中,C末端的IQ基序R1902C突變與家族性自閉癥有關(guān),這種突變被證明可以誘導(dǎo)Ca2+穩(wěn)態(tài)失活時(shí)的左移,同時(shí)影響IQ基序的構(gòu)象。NaV1.5是一些遺傳性心律失常相關(guān)疾病的突變位點(diǎn),在IQ基序中已經(jīng)發(fā)現(xiàn)了與LQTS3有關(guān)的4個(gè)突變位點(diǎn),分別是E1901Q、S1904L、Q1909R和R1913H[13]。
IQ基序具有廣泛的生理功能,但目前對(duì)于IQ基序與各種心臟疾病致病機(jī)制之間關(guān)系的研究尚不完善。本研究成功構(gòu)建了IQ基序的重組質(zhì)粒,該質(zhì)粒能夠在大腸桿菌BL21中表達(dá)高濃度蛋白,經(jīng)GS-4B beads純化后,具有較好的純度和生物學(xué)活性。IQ基序是CaM發(fā)揮鈣依賴性失活和鈣依賴性激活功能的主要結(jié)合區(qū)域,而CSL同CaM競(jìng)爭(zhēng)結(jié)合于CaV1.2的C末端的IQ區(qū)域,進(jìn)而達(dá)到調(diào)控通道活性的目的。基于IQ基序在CaV和NaV通道亞型中高度保守,通過(guò)成功構(gòu)建NaV1.5鈉通道的GST-IQ重組蛋白,并經(jīng)pull down 實(shí)驗(yàn)檢測(cè)純化后的GST-IQ蛋白是否具有生物學(xué)活性,同時(shí)檢測(cè)該結(jié)合作用的CSL蛋白濃度依賴性,結(jié)果表明,本研究成功制備出具有生物學(xué)活性的重組IQ蛋白,為心肌NaV1.5鈉通道的相關(guān)調(diào)節(jié)機(jī)制奠定了分子基礎(chǔ),也為后續(xù)鈉離子通道病的研究和相關(guān)藥物研發(fā)提供了新方向。