侯 興 王 穎 劉天紅 杜美榮 高亞平 姜娓娓 李鳳雪 董世鵬 李文豪 蔣增杰,4①
(1. 中國水產(chǎn)科學(xué)研究院黃海水產(chǎn)研究所 農(nóng)業(yè)農(nóng)村部海洋漁業(yè)可持續(xù)發(fā)展重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 山東 青島 266071;2. 上海海洋大學(xué)水產(chǎn)與生命學(xué)院 上海 201306;3. 山東省海洋生物研究院 山東 青島 266104;4. 青島海洋科學(xué)與技術(shù)試點(diǎn)國家實(shí)驗(yàn)室海洋漁業(yè)科學(xué)與食物產(chǎn)出過程功能實(shí)驗(yàn)室 山東 青島 266071)
二甲基硫(DMS)是海洋中重要的揮發(fā)性生源硫 化物,被認(rèn)為是一種“負(fù)溫室氣體”,其進(jìn)入大氣的氧化產(chǎn)物增加大氣云凝結(jié)核的數(shù)量,提高云層對(duì)太陽光的反射率,使全球熱量收入減少,進(jìn)而緩解全球氣候變暖(Charlsonet al, 1987)。二甲基巰基丙酸(DMSP)是DMS 的重要前體物質(zhì),其主要分布在浮游植物和大型藻類中,是滲透壓調(diào)節(jié)物質(zhì)(Kirst, 1996)。浮游植物通過浮游動(dòng)物攝食、微生物的新陳代謝、病毒侵蝕、藻細(xì)胞的衰老等途徑在 DMSP 裂解酶作用下產(chǎn)生DMS (Daceyet al, 1986; Malinet al, 1994; 楊桂朋等,2009; Belvisoet al, 1990;Christakiet al, 1996)。其中,浮游動(dòng)物攝食作用是導(dǎo)致DMS 產(chǎn)生的重要途徑,浮游植物細(xì)胞中DMSP 和DMSP 裂解酶分別處在不同細(xì)胞隔室內(nèi),浮游動(dòng)物攝食使分隔的DMSP 和DMSP裂解酶在其食物液泡中得以混合,從而促進(jìn)DMS 的釋放(張瑜, 2013);另外,浮游植物細(xì)胞內(nèi)的DMSP 不易通過正常的細(xì)胞膜滲透到細(xì)胞外,經(jīng)浮游動(dòng)物攝食作用使浮游植物細(xì)胞破裂,促進(jìn)了DMSP 的釋放,造成了DMSP 和酶的相互作用(Daceyet al, 1986)。Wolfe等(1996)研究認(rèn)為,浮游動(dòng)物攝食促進(jìn)了浮游植物細(xì)胞中DMSP 裂解酶的活性,從而促進(jìn)DMS 的釋放。
我國是海水養(yǎng)殖大國,貝類占海水養(yǎng)殖總產(chǎn)量的70%以上,其中,牡蠣(Ostrea gigas)、蛤、扇貝和貽貝(Mytilus edulis)等濾食性貝類占貝類總產(chǎn)量的90%以上(中國漁業(yè)統(tǒng)計(jì)年鑒, 2019)。濾食性貝類與浮游動(dòng)物生態(tài)位相似,食物來源均以浮游植物為主,通過鰓絲和其上著生的前纖毛、前側(cè)纖毛、側(cè)纖毛的相互配合攝取食物顆粒(董波等, 2000),濾食性貝類攝食活動(dòng)對(duì)浮游植物產(chǎn)生二甲基硫化物[DMS(P)]可能存在重要影響,然而,目前有關(guān)濾食性貝類、浮游植物、DMS(P)三者之間作用關(guān)系的研究較少,僅有Hill 等(2007)研究了靜水條件下,紫貽貝(Mytilus edulis)和海灣扇貝(Argopecten irradians)攝食扁藻(Tetraselmissp.)對(duì) DMS(P)的影響。本研究以長牡蠣(Crassostrea gigas)、櫛孔扇貝(Chlamys farreri)、紫貽貝、菲律賓蛤仔(Ruditapes philippinarum) 4 種主要經(jīng)濟(jì)濾食性貝類為研究對(duì)象,以DMSP 含量較高的球等鞭金藻(Isochrysis galbana)作為餌料藻種,探討了靜水和擾動(dòng)條件下,水體的DMS(P)變化以及貝類糞便DMS(P)釋放的影響,研究結(jié)果將為深入探討貝類攝食活動(dòng)對(duì)海洋硫循環(huán)的影響提供數(shù)據(jù)支撐,并拓展氣候變化背景下養(yǎng)殖貝類生態(tài)功能的認(rèn)識(shí)。
實(shí)驗(yàn)所用球等鞭金藻由中國水產(chǎn)科學(xué)研究院黃海水產(chǎn)研究所微藻培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)室提供。采用脫脂棉過濾后的滅菌自然海水,pH 為8.0,鹽度為35,使用f/2培養(yǎng)液,將藻液置于光照培養(yǎng)箱中培養(yǎng)至指數(shù)生長期待用。光暗周期為12∶12,培養(yǎng)溫度為18℃,每天輕搖2 次,使用血球計(jì)數(shù)板測定微藻密度。
實(shí)驗(yàn)貝類選用長牡蠣、櫛孔扇貝、紫貽貝、菲律賓蛤仔,殼長分別為 6.5~7.6、6.0~6.8、5.6~6.4、3.0~3.3 cm,放于水溫為18℃流水池中充氧暫養(yǎng),每天投喂2 次金藻。預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,貝類攝食作用會(huì)導(dǎo)致糞便DMSP 的產(chǎn)生,因此,在正式實(shí)驗(yàn)前進(jìn)行饑餓處理24 h。選擇規(guī)格相似、活性良好的貝類,除去體表附著物,對(duì)于紫貽貝和櫛孔扇貝2 種具有足絲的貝類,將其足絲沿貝殼邊緣小心剪除。
1.2.1 不同濃度餌料實(shí)驗(yàn) 為了探究貝類攝食不同濃度的金藻對(duì)水體DMS(P)的影響,選用紫貽貝作為實(shí)驗(yàn)貝類,將指數(shù)生長期的金藻稀釋,分成濃度分別為2×105、3×105、4×105和5×105cells/mL 進(jìn)行投喂。
選用5.6 L 高約30 cm 的聚乙烯塑料桶作為實(shí)驗(yàn)容器,向其中加入藻液至滿,水溫為18℃時(shí)向?qū)嶒?yàn)組容器底部放入1 個(gè)貽貝,以不添加貽貝組作為對(duì)照組,并向其中充入等量的微量O2,保證溶解氧(DO)>8.0 mg/L,氣石置于貝類上方,確保貽貝進(jìn)行正常的攝食活動(dòng)并不擾動(dòng)糞便。向液面頂部覆蓋保鮮膜以盡量避免與外界接觸,攝食過程避光進(jìn)行。每組設(shè)置3 個(gè)平行。通過預(yù)實(shí)驗(yàn)得知,饑餓處理的貝類并不會(huì)增加去DMS 海水的DMS(P)濃度。
實(shí)驗(yàn)以貽貝開始攝食計(jì)時(shí),持續(xù)21 h。實(shí)驗(yàn)結(jié)束后,在無擾動(dòng)的條件下,虹吸上層水體約1 L,測定DMS、總DMSP(DMSPt)、溶解態(tài)DMSP(DMSPd)濃度和顆粒態(tài)DMSP(DMSPp)。使用均質(zhì)儀將剩余含貝類糞便的少量水體(100~200 mL)混勻,測定糞便DMSP(DMSPf)濃度。通過預(yù)實(shí)驗(yàn)得知,對(duì)照組DMSPp在21 h 內(nèi)變化很小,被攝食DMSPp采用對(duì)照組和實(shí)驗(yàn)組DMSPp的差值表示(下同)。
1.2.2 不同貝類攝食實(shí)驗(yàn) 為了探討不同貝類攝食金藻對(duì)水體DMS(P)的影響,選擇長牡蠣、櫛孔扇貝、紫貽貝、菲律賓蛤仔作為實(shí)驗(yàn)貝類,投喂與1.2.1中相同批次濃度為4×105cells/mL 的金藻。采用相同的實(shí)驗(yàn)條件和測定方法。
為了探究擾動(dòng)條件下貝類糞便對(duì)水體DMS(P)的影響,選擇紫貽貝作為攝食貝類,貝類及金藻與1.2.1中批次相同,在1.2.2 靜置攝食實(shí)驗(yàn)結(jié)束后,取出紫貽貝,選用貝類攝食后的水體,進(jìn)行原水總水體擾動(dòng)實(shí)驗(yàn);另選平行組進(jìn)行定量糞便擾動(dòng)實(shí)驗(yàn)。
1.3.1 原水總水體擾動(dòng)實(shí)驗(yàn) 使用數(shù)顯恒溫磁力攪拌器(85-2 型, 丹瑞),設(shè)定5 個(gè)擾動(dòng)速度0 (對(duì)照組)、15、70、200、500 r/min,對(duì)原水總水體(糞便及水體)進(jìn)行5 min 擾動(dòng)處理。整個(gè)實(shí)驗(yàn)期間,水溫未出現(xiàn)明顯升高現(xiàn)象,始終穩(wěn)定在18℃~19℃之間,測定各組實(shí)驗(yàn)前后的DMS、DMSPt和DMSPd的濃度,每組各設(shè)置3 個(gè)平行。
1.3.2 定量糞便擾動(dòng)實(shí)驗(yàn) 將上層水體虹吸移除,僅保留糞便,使用改裝后的一次性塑料滴管小心移取,使用分析天平稱量5 份0.08 g 紫貽貝糞便,分別置于2 L 聚乙烯塑料桶中,加入1 L 經(jīng)高溫滅菌處理后的去DMS 海水,使用數(shù)顯恒溫磁力攪拌器,設(shè)定5 個(gè)擾動(dòng)速度0 (對(duì)照組)、15、70、200、500 r/min,對(duì)水體進(jìn)行5 min 擾動(dòng)處理。整個(gè)實(shí)驗(yàn)期間,水溫未發(fā)生明顯變化,始終穩(wěn)定在18℃~19℃之間,測定各組DMS、DMSPt和DMSPd的濃度。
1.4.1 檢測方法建立及工作曲線繪制 使用固相微萃取-氣相色譜與質(zhì)譜聯(lián)用法(solid-phase microextraction and gas chromatography-mass spectrometry)測定DMS,具體操作方法及工作曲線繪制如下:
QP2010SE 氣相色譜與質(zhì)譜聯(lián)用儀(島津,日本)搭配 AOC-5000 自動(dòng)進(jìn)樣器(CTC),使用 60 m ×0.32mm 1.8 μm Vocol 色譜柱(Supleco)進(jìn)樣口溫度為210℃,使用分流模式,分流比為7.5∶1,離子源溫度為 200℃,載氣為高純氦氣(99.999%),流速為3mL/min,進(jìn)樣時(shí)間為1 min,柱前壓為85.0 kPa,柱箱溫度為35℃,保持3 min 后,以3℃/min 的速率升到40℃,保持1 min 后,以10℃/min 的速率升到100℃,再以20℃/min 的速率升到210℃,保持10 min,溶劑延遲時(shí)間為1 min,MS 檢測器電壓為100 eV,檢測和數(shù)據(jù)采集選擇SIM 模式,質(zhì)荷比m/z 選擇47和62。萃取溫度為24℃,萃取時(shí)間為20 min,解析時(shí)間為 2 min,使用Carboxen/Polydimethylsiloxane(CAR/PDMS)萃取纖維(75 μm, Supleco)。
將DMS 標(biāo)準(zhǔn)品(色譜純,Sigma-Aldrich)加入甲醇(色譜純,ThermoFisher 公司,美國)中,配制成1.0 g/L的標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液,-20℃避光保存。繪制工作曲線時(shí),取10.0 mL 去DMS 海水裝于預(yù)先加入2.5 g NaCl (分析純)的20.0 mL 頂空瓶中,再加入一定量的DMS 儲(chǔ)備液配制成一系列濃度的標(biāo)準(zhǔn)品,擰緊瓶蓋,使用外標(biāo)法定量并繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。在10~100,000 ng/L 的范圍內(nèi)均展現(xiàn)出良好的線性,方法的性能參數(shù)見表1。
表1 方法的性能參數(shù)Tab.1 Performance parameter of SPME-GC/MS
1.4.2 樣品分析 DMS 的分析:待測樣品采取與DMS 標(biāo)準(zhǔn)品同樣的操作方法,吸取10 mL 待測樣品注入到裝有2.5 g NaCl 的頂空瓶中,擰緊瓶蓋,放于自動(dòng)進(jìn)樣器中待測。
DMSP 的分析:DMSP 在強(qiáng)堿作用下(pH≥13)會(huì)按1∶1 的比例完全轉(zhuǎn)化為DMS 和丙烯酸(Daceyet al,1987),故通過測定DMS 含量即可間接得到DMSP 的含量。DMSP 樣品(濃度過高時(shí)進(jìn)行稀釋)分成2 份,取10 mL DMSP 樣品直接加入預(yù)先裝有2.5 g NaCl 的頂空瓶中,加入0.5 mL 10.0 mol/L 的NaOH,密封玻璃瓶,4℃避光保存24 h,使DMSP 完全堿解為DMS,通過測定DMS 含量間接得到DMSPt的含量;另一份DMSP 樣品經(jīng)0.45 μm Whatman GF/F 濾膜進(jìn)行小體積重力過濾(SVDF)(Kieneet al, 2006),濾液使用相同處理方法測定DMSPd。DMSPp由DMSPt減去DMSPd得到。DMSPf測定步驟同DMSPt,注意扣除水體DMS和DMSPt濃度。
數(shù)據(jù)處理和柱狀圖繪制采用Excel 2016 軟件,差異顯著采用SPSS 19.0 分析軟件。
2.1.1 靜水條件下,貽貝攝食不同濃度金藻對(duì)DMS(P)產(chǎn)生的影響 從圖1 可以看出,不同濃度餌料實(shí)驗(yàn)中,金藻濃度分別為2×105、3×105、4×105、5×105cells/mL,實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組的DMS 濃度分別為(177.93±7.42)和(181.83±8.50)、(240.33±9.50)和(230.03±10.05)、(299.09±9.67)和(297.17±12.00)、(391.93±17.04)和(384.69±16.06) nmol/L。與對(duì)照組相比,實(shí)驗(yàn)組的DMS 變化范圍在97.0%~104.6%之間,差異不顯著(P>0.05) (圖1a)。
DMSPd實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組的濃度分別為(27.93±11.24)和(36.10±16.15)、(45.33±17.00)和(40.38±15.73)、(39.67±18.44)和(30.33±19.73)、(45.01±14.11)和(45.33±11.50) nmol/L。各實(shí)驗(yàn)組均并未有顯著的升高或者降低現(xiàn)象(P>0.05),且無論對(duì)照組還是實(shí)驗(yàn)組,相對(duì)于DMSPp,DMSPd的濃度較低,約為DMSPp的1% (圖1b)。
DMSPp實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組的濃度分別為(40.99±40.29)和(3234.83±208.90)、(81.97±91.06)和(4908.58±318.25)、(97.58±55.29)和(6503.17±458.98)、(968.67±463.19)和(8220.42±302.08) nmol/L。與對(duì)照組相比,實(shí)驗(yàn)組DMSPp濃度均呈顯著降低趨勢(P<0.01),且貝類的攝食百分比越高,對(duì)應(yīng)的DMSPp降低程度越大(圖1c)。
DMSPf分 別 為 1305.8、 1421.8、 3259.6、2507.5 nmol/L,分別占據(jù)攝入 DMSPp的 40.9%、29.5%、50.9%和34.6% (圖1d)。貽貝攝食量分別占投喂總量的99.0%、98.7%、99.0%和87.2% (圖1e)。
圖1 貽貝攝食不同濃度金藻對(duì)DMS(P)產(chǎn)生和轉(zhuǎn)移的影響Fig.1 Effects of mussel feeding on I. galbana at different concentrations on production and transfer of DMS(P)
2.1.2 靜水條件下,不同貝類攝食金藻對(duì)DMS(P)產(chǎn)生的影響 從圖2 可以看出,對(duì)于DMS,在牡蠣、貽貝、扇貝、蛤仔的攝食下,實(shí)驗(yàn)組濃度分別為(288.17±12.35) 、 (299.01±9.55) 、 (305.17±17.23) 、(310.97±10.55) nmol/L,對(duì)照組DMS 濃度為(297.17±12.00) nmol/L,與對(duì)照組相比,實(shí)驗(yàn)組的DMS 變化范圍在 97.0%~104.6%之間,差異不顯著(P>0.05)(圖2a)。
DMSPd實(shí)驗(yàn)組濃度分別為(20.33±18.02)、(39.67±18.43)、(26.01±14.19)、(28.67±30.33) nmol/L,對(duì)照組濃度為(30.33±19.74) nmol/L。各實(shí)驗(yàn)組中均并未有顯著的升高或者降低現(xiàn)象(P>0.05),無論對(duì)照組還是實(shí)驗(yàn)組,相對(duì)于DMSPp,DMSPd的濃度較低,約為DMSPp的1% (圖2b)。
DMSPp實(shí) 驗(yàn) 組 濃 度 分 別 為(23.36±24.74)、(60.33±17.50)、(78.67±28.02)、(3433.44±451.09) nmol/L,對(duì)照組為(6304.2±384.32) nmol/L。與對(duì)照組相比,實(shí)驗(yàn)組DMSPp濃度均極顯著降低(P<0.01),并且貝類的攝食百分比越高,對(duì)應(yīng)的DMSPp濃度降低程度越大(圖2c)。
牡蠣、貽貝、扇貝和蛤仔組DMSPf濃度分別為2510.8、3467.8、3604.5 和1200.5 nmol/L,分別占據(jù)了攝入DMSPp的40.0%、55.5%、57.9%和41.8% (圖2d)。
牡蠣、貽貝、扇貝和蛤仔組攝食量分別占投喂總量的100.0%、99.0%、99.70%和49.4% (圖2e)。
圖2 不同貝類攝食金藻對(duì)DMS(P)產(chǎn)生和轉(zhuǎn)移的影響Fig.2 Effects of feeding on I. galbana by different bivalves on production and transfer of DMS(P)
2.2.1 原水總水體擾動(dòng) 不同擾動(dòng)程度對(duì)原水總水體DMS(P)的影響見圖3。從圖3 可以看出,在0、15、70、200 和500 r/min 轉(zhuǎn)速下,原水總水體DMS分別為(302.21±11.59)、(318±11.11)、(345.07±15.31)、(353.09±18.02)和(349.57 ±14.05) nmol/L。隨著擾動(dòng)程度的增加,DMS 濃度均有增加的現(xiàn)象,其中,70、200 和500 r/min 組與對(duì)照組相比差異顯著(P<0.05),擾動(dòng)能促進(jìn)糞便中DMS(P)的釋放而導(dǎo)致水體DMS 濃度顯著增加,最大可使原水總水體DMS 增加16.8%(圖3a)。
原水總水體DMSPd濃度分別為(38.01±19.08)、(29.98± 22.00)、(46.99±23.10)和(41.07±19.00) nmol/L,擾動(dòng)處理下,與對(duì)照組相比均未出現(xiàn)顯著的升高或者降低現(xiàn)象(圖3b)。
原水總水體DMSPf濃度分別為58.32、672.91、2200.40、2305.82 和2641.28 nmol/L,隨著水體擾動(dòng)程度的增加,糞便向水體的擴(kuò)散量增加,DMSPt濃度逐漸增加,最大可使原水總水體DMSPt增加38.5 倍(圖3c)。
圖3 不同擾動(dòng)程度對(duì)原水總水體DMS(P)的影響Fig.3 Effects of different disturbance velocity on total original water DMS(P)
2.2.2 定量糞便擾動(dòng) 不同擾動(dòng)程度水體中DMS(P)濃度變化情況見表2。從表2 可以看出,在0~500 r/min 轉(zhuǎn)速范圍內(nèi),隨著擾動(dòng)程度的加強(qiáng),水體中DMS 和DMSPt的濃度均呈現(xiàn)升高的趨勢,二者的濃度分別從靜置狀態(tài)下的7.6 和906.4 nmol/L 升高到最大21.3 和2505.9 nmol/L,分別增加了180%和174%。
表2 不同擾動(dòng)速度下糞便水體中DMS(P)濃度變化Tab.2 Variation of DMS(P) concentration in fecal water with different disturbance velocity
自Dacey 等(1986)首次通過室內(nèi)橈足類攝食鞭毛藻(Gymnodinium nelson)的研究表明,浮游動(dòng)物對(duì)浮游植物的攝食作用可促進(jìn)水體中DMS 的增加,已有眾多研究得到了類似的結(jié)論(Belvisoet al, 1990; Lecket al,1990; Christakiet al, 1996; 張瑜, 2013)。Kasamatsu等(2004)研究指出,浮游動(dòng)物的“Sloppy feeding”攝食方式,使其攝食過程中對(duì)浮游植物細(xì)胞攝食不完全,機(jī)械破碎導(dǎo)致DMS 的產(chǎn)生。與上述結(jié)果不同,Kwint等(1996)在橈足類近親真簾水蚤(Eurytemora affinis)攝食浮游三角褐指藻(Phaeodactylum tricornutum)和威氏海鏈藻(Thalassiosira weissflogii)研究中發(fā)現(xiàn),橈足類的攝食活動(dòng)并未導(dǎo)致水體中的DMS 增加,DMSP幾乎均以糞便顆粒的形式排出,進(jìn)一步分析表明,浮游動(dòng)物攝食最重要的作用是將浮游植物中的DMSP轉(zhuǎn)移到糞便顆粒中。Hill 等(2007)對(duì)靜水條件下,紫貽貝和海灣扇貝攝食扁藻(Tetraselmissp.)的研究也表明,濾食性貝類的攝食活動(dòng)對(duì)微藻DMS 的釋放未產(chǎn)生明顯的促進(jìn)作用,這與本研究結(jié)果相一致。產(chǎn)生這種現(xiàn)象的原因可能與濾食性貝類的攝食機(jī)制有關(guān),貝類通過選食器官(鰓、唇瓣、食物選擇盲囊)完成食物顆粒的收集、運(yùn)輸、截取和篩選后,進(jìn)入消化道進(jìn)行消化吸收,未消化的食物顆粒以糞便形式排出體外(董波等, 2000),這種攝食機(jī)制使得浮游植物以被鰓分泌黏液包裹的形式進(jìn)入消化器官內(nèi)完成同化,同時(shí),排出的糞便也被代謝產(chǎn)生的黏液包裹,使得靜水條件下,糞便中的DMS(P)難以通過固-液界面形成擴(kuò)散,由此導(dǎo)致靜水條件下,水體中DMS 沒有出現(xiàn)顯著增加的現(xiàn)象。對(duì)于紫貽貝和櫛孔扇貝等具有足絲的貝類來說,除了攝食活動(dòng)是影響水體DMS 濃度因素外,足絲腺分泌的足絲蛋白極強(qiáng)的吸附作用也是可能的因素之一。凌文康等(2019)研究表明,紫貽貝足絲分泌的足絲蛋白對(duì)海水中的重金屬等化學(xué)物質(zhì)具有很強(qiáng)的吸附能力,但關(guān)于足絲蛋白吸附作用與DMS 遷移和轉(zhuǎn)化之間潛在的關(guān)系目前尚未見相關(guān)報(bào)道,值得在后續(xù)的研究進(jìn)一步深入探討。在靜水實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),糞便中約占據(jù)了貝類攝入DMSPp的40%,如此高的含量可能對(duì)水體DMSP 和DMS 產(chǎn)生潛在的影響。濾食性貝類通過生物沉積過程在水環(huán)境和沉積環(huán)境之間發(fā)揮著生物耦聯(lián)作用。在廣島灣牡蠣養(yǎng)殖區(qū),一臺(tái)200 m2筏架在300 d 養(yǎng)殖期內(nèi)可產(chǎn)生19.3 t 糞物質(zhì)(干重)。Hatcher 等(1994)在加拿大的一個(gè)封閉海灣觀察到貽貝養(yǎng)殖區(qū)的沉積速率是非養(yǎng)殖海區(qū)的2 倍以上;在煙臺(tái)四十里灣,殼高為41.1 mm 的櫛孔扇貝生物沉積速率最高達(dá)230 mg/(g·d)(周毅等, 2003)。穩(wěn)定碳氮同位素的研究結(jié)果表明,長牡蠣生物沉積物對(duì)沉積物有機(jī)質(zhì)的貢獻(xiàn)率平均為(13.96±8.62)% (任黎華,2014)。濾食性貝類養(yǎng)殖活動(dòng)的主要區(qū)域在淺海,由于受到海底地形、區(qū)域構(gòu)造環(huán)境、徑流、海洋環(huán)流等影響,淺海的環(huán)境復(fù)雜而多變(尹燕欣, 2012)。擾動(dòng)實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),隨著糞便中DMSP 的擴(kuò)散,水體中DMSPt和DMS 的量增加。在總水體擾動(dòng)實(shí)驗(yàn)中,相比對(duì)照組,實(shí)驗(yàn)組DMS 和DMSPt濃度最大分別增加了16.8%和38.5 倍。同時(shí)海區(qū)調(diào)查也發(fā)現(xiàn),在近岸海域Niel海灣(Jean, 2009)、威尼斯瀉湖(Gambaro, 2002)甚至白令海海盆西南部海域的深層海水中(>2000 m) (Liet al,2007)均具有很高的DMS(P)濃度,高DMS(P)含量的沉積物再懸浮和擴(kuò)散作用可能是誘發(fā)此現(xiàn)象的原因。在這樣的背景下,僅僅基于實(shí)驗(yàn)室內(nèi)的靜水實(shí)驗(yàn)結(jié)果將大大局限對(duì)于DMS(P)生物地球化學(xué)過程的認(rèn)識(shí),這也是本研究嘗試開展一定程度擾動(dòng)實(shí)驗(yàn)的出發(fā)點(diǎn)和落腳點(diǎn)。對(duì)于養(yǎng)殖海區(qū)來說,外界環(huán)境對(duì)生物沉積物的擾動(dòng)作用主要有2 個(gè)過程:一個(gè)過程是在生物沉積物向海底沉降的過程中。研究表明,中等規(guī)格(5.46±0.54) cm 的長牡蠣生物沉積物的平均沉降速率約為(1.16±0.54) cm/s (任黎華, 2014)。以桑溝灣的平均水深為7 m 來估算,需要10 min 到達(dá)海底,在此過程中,浪、流等作用導(dǎo)致生物沉積物破碎、擴(kuò)散、懸浮,生物沉積物與水體接觸的比表面積增大,接觸時(shí)間延長,使沉積物-水界面得到充分的物質(zhì)交換。另一個(gè)過程發(fā)生在沉降到海底的生物沉積物的再懸浮作用。王丕波等(2005)研究表明,在淺水區(qū)海底沉積物再懸浮更為顯著,風(fēng)浪、潮汐、潮流等因素引起的海水運(yùn)動(dòng)是重要誘因。以我國典型濾食性貝類養(yǎng)殖海灣桑溝灣為例,沉積物再懸浮通量的數(shù)量級(jí)在10-5~10-6kg/(m2·s)之間,全年約有171 d 沉積物處于再懸浮狀態(tài)(蔣增杰, 2008);淺水湖Apopka 湖每年70%時(shí)段有50%沉積物受到風(fēng)浪擾動(dòng)而懸浮(蔣增杰,2008),如此頻繁且強(qiáng)烈的再懸浮作用使生物沉積物中的DMS(P)有了向水體中再次釋放的機(jī)會(huì)。
本研究雖然獲得了貝類通過生物沉積物再釋放過程對(duì)DMS(P)如DMS、DMSPt濃度有一定影響的一些數(shù)據(jù)和線索,但是并未發(fā)現(xiàn)DMSPd濃度顯著增加現(xiàn)象。DMSPd轉(zhuǎn)化時(shí)間較快,本身濃度變化并不明顯,加之DMSPd的測定方法為間接法測定,這些因素均可能是此結(jié)果的原因。最后,本研究的結(jié)論是基于室內(nèi)可控條件下,模擬獲得的養(yǎng)殖海區(qū)的水文條件。實(shí)際水環(huán)境條件等極為復(fù)雜,相應(yīng)的DMS(P)的產(chǎn)生和遷移轉(zhuǎn)化過程也更為復(fù)雜,研究結(jié)果向海區(qū)的拓展和應(yīng)用尚需要后續(xù)開展一系列現(xiàn)場圍隔等形式的野外觀測研究進(jìn)行綜合解讀。