劉秀峰 ,楊兆順 ,樓辰軍 ,許高平 ,邵鳳武
(1.天津市農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)作物研究所,天津300381;2.天津市農(nóng)作物遺傳育種重點(diǎn)實驗室,天津300381)
由條形柄銹菌小麥?;停≒uccinia striiformisf.sp.tritici,Pst)引起的小麥條銹病是一種重要的病害,其會造成小麥產(chǎn)量損失巨大[1-2],在我國曾發(fā)生多次大流行,嚴(yán)重危害小麥生產(chǎn)安全[3-5]。Pst需要從寄主小麥獲取包括糖類在內(nèi)的多種營養(yǎng)物質(zhì)用于菌體生長發(fā)育,目前對Pst吸收小麥糖類的機(jī)理并不清楚?,F(xiàn)在已經(jīng)明確,包括Pst在內(nèi)的活體營養(yǎng)專性寄生真菌在侵染寄主過程中由菌絲高度特化形成吸器,同位素標(biāo)記飼喂以及轉(zhuǎn)錄表達(dá)數(shù)據(jù)均表明吸器具有吸收寄主營養(yǎng)物質(zhì)的功能[6-8]。顯微結(jié)果表明,Pst吸器穿透小麥細(xì)胞壁后并未真正破壞小麥細(xì)胞質(zhì)膜,而是被小麥細(xì)胞質(zhì)膜形成的鞘所包裹,其吸器頸處會產(chǎn)生一個頸環(huán)連同吸器外基質(zhì)形成一個特殊封閉的質(zhì)外體[9]。已有研究結(jié)果表明,質(zhì)外體是植物病原菌與寄主競爭糖類的重要場所,病原菌侵入寄主質(zhì)外體干擾寄主糖信號傳導(dǎo),調(diào)控被侵染組織成為強(qiáng)力的庫器官,促使寄主植物源器官產(chǎn)生的糖類物質(zhì)流向菌體侵入的組織,造成有利于病原菌侵染繁殖的環(huán)境[10-14]。目前,小麥質(zhì)外體中糖濃度的變化與Pst致病性的關(guān)系尚未報道。
本研究根據(jù)Pst吸器的頸環(huán)封閉形成獨(dú)立的特殊質(zhì)外體的特點(diǎn),分別提取貴農(nóng)22 和雜46 葉片質(zhì)外體溶液,定量分析Pst接種后 0、1、2、3、4、8、14 d小麥質(zhì)外體中葡萄糖濃度,旨在明確小麥質(zhì)外體中糖濃度的變化與Pst致病性的關(guān)系,為探究Pst獲取小麥糖類的關(guān)鍵基因奠定基礎(chǔ)。
供試小麥條銹菌(Puccinia striiformisf.sp.tritici)為CYR32,小麥條銹菌繁殖品種為銘賢169。供試小麥分別為雜46(感)和貴農(nóng)22(抗)。
主要試劑為葡萄糖-6- 磷酸脫氫酶(G6PDH)、D- 己糖-6- 磷酸轉(zhuǎn)移酶(HKX)、葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品、4-羥乙基哌嗪乙磺酸(HEPES)、煙酰胺腺嘌呤二核苷酸(NAD+)、二硫蘇糖醇(DTT)、還原型 β- 煙酰胺腺嘌呤二核苷酸二鈉鹽(β-NADH 二鈉)、腺嘌呤核苷三磷酸(ATP)、牛血清白蛋白(BSA)、草酰乙酸、山梨糖醇等,均購自Sigma 公司。酶標(biāo)儀及Softmaxpro軟件購自美谷分子儀器有限公司(MolecularDevices)。
1.3.1 小麥條銹菌接種及小麥葉片質(zhì)外體溶液提取 22 ℃(光/暗為16 h/8 h)恒溫培養(yǎng)至雜46 和貴農(nóng)22 第7 葉完全展開,用微型噴霧器分別噴霧接種小麥條銹菌CYR32 孢子懸浮液(0.125 mg/mL),分別組成親和組合和非親和組合。以蒸餾水噴霧雜46 和貴農(nóng)22 為對照。10 ℃下黑暗保濕24 h,然后蓋上隔離罩放置于人工氣候室內(nèi),22 ℃下(光/暗為 16 h/8 h)培養(yǎng)。取接種后 0、1、2、3、4、8、14 d 完整的小麥葉片,用75%酒精輕輕擦拭各處理小麥葉片表面,參照PERIYANNAN 等[15]的方法室溫下提取質(zhì)外體溶液;收集質(zhì)外體溶液后取5 μL 進(jìn)行糖的定量分析,2 μL 檢測細(xì)胞質(zhì)污染,其余部分放于-20 ℃保存。
1.3.2 小麥質(zhì)外體中葡萄糖濃度分析 酶標(biāo)板每孔加入 5 μL 小麥質(zhì)外體溶液和 185 μL 新鮮配置的 HEPES 緩沖液(100 mmol/L HEPES,pH 值 7.5,5 mmol/L MgCl2,1 mmol/L DTT,0.02%(m/V)BSA,8 mmol/L NAD+,4 mmol/L ATP)混合均勻后340 nm下測量吸光值,記錄穩(wěn)定吸光值A(chǔ)0。葡萄糖含量分析參照 SCHOLES 等[16]和 PERIYANNAN 等[15]的方法進(jìn)行。
1.3.3 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)工作曲線制作 葡萄糖在HKX催化下與ATP 發(fā)生磷酸化反應(yīng),生成葡萄糖-6-磷酸(G-6-P)和二磷酸腺苷二鈉(ADP),其中,G-6-P在G6PDH 催化下脫氫生成6- 磷酸葡萄糖酸內(nèi)酯,并使NAD+還原成NADH。該反應(yīng)中葡萄糖的消耗與NADH 的生成呈等摩爾關(guān)系,NADH 在340 nm處有特征吸收峰。將葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行反應(yīng)一定時間,終止時NADH 的摩爾數(shù)等于葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品的摩爾數(shù),測定其吸光值即可求得實際摩爾吸光系數(shù)。
精確稱取葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品并配置成終濃度分別為 0.05、0.10、0.20、0.40、0.60、1.00 mmol/L 的溶液,分別取5 μL 按照1.2.2 方法測量吸光值,繪制圖形,計算線性回歸方程。
1.3.4 質(zhì)外體溶液的細(xì)胞質(zhì)污染檢測 提取小麥葉片質(zhì)外體溶液時可能發(fā)生細(xì)胞質(zhì)膜受損,導(dǎo)致細(xì)胞質(zhì)污染提取液。為評估細(xì)胞質(zhì)污染的影響,本研究根據(jù)細(xì)胞質(zhì)內(nèi)的蘋果酸在蘋果酸脫氫酶作用下生成草酰乙酸,NADH 氧化脫氫導(dǎo)致340 nm 下吸光值下降,對細(xì)胞質(zhì)污染率進(jìn)行了檢測。質(zhì)外體溶液中細(xì)胞質(zhì)污染檢測采用蘋果酸脫氫酶測定方法進(jìn)行。分別取100 mg 未接種或接種Pst的小麥葉片,加入1 mL 0.2 mol/L 山梨糖醇研磨,作為100%細(xì)胞質(zhì)污染對照。酶標(biāo)板每孔加入2 μL 研磨所得濾液或小麥質(zhì)外體溶液和196 μL 蘋果酸脫氫酶緩沖液(100 mmol/L Tris-HCl,pH 7.5,0.1 mmol/L β-NADH 二鈉),340 nm 下測定吸光值,記錄穩(wěn)定吸光值為A1CK或A1樣品。然后每孔加入 2 μL 草酰乙酸,記錄穩(wěn)定的吸光值為A2CK或A2樣品。
數(shù)據(jù)采用Microsoft Excel 統(tǒng)計插件PHStat v 4.1處理;采用Duncan 氏新復(fù)極差法測驗法進(jìn)行數(shù)據(jù)差異顯著性分析(P<0.05)。
葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品 3 次重復(fù)配置的 0.05、0.10、0.20、0.40、0.60、1.00 mmol/L 溶液的吸光值平均值分別為 0.007 8、0.011 7、0.014 1、0.037 3、0.077 4、0.103 8,各濃度吸光度最小值和最大值分別為0.003 7 和 0.014 9、0.008 9 和 0.016 4、0.010 3 和0.019 3、0.031 5 和 0.043 5、0.070 1 和 0.082 8、0.087 4和0.122 0。吸光度—葡萄糖濃度呈線性部分的擬合方程為y=8.892 0x+0.018 1(R2=0.965 6)(圖 1)。
雜46 和貴農(nóng)22 在蒸餾水噴霧、接種CYR32后 0、1、2、3、4、8、14 d 提取的質(zhì)外體溶液中細(xì)胞質(zhì)污染率最大為0.293 7,最小為0.125 9;總體上,對照貴農(nóng)22 和雜46 蒸餾水噴霧后0~3 d 的細(xì)胞質(zhì)污染率差異顯著(P<0.05),接種后3~14 d 各處理的細(xì)胞質(zhì)污染率差異不顯著(表1),各處理間的細(xì)胞質(zhì)污染率未呈現(xiàn)規(guī)律性變化。
表1 接種CYR32 后提取的質(zhì)外體溶液中細(xì)胞質(zhì)污染率
由圖2 可知,對照蒸餾水噴霧處理后0、1、2、3、4、8、14 d 貴農(nóng) 22 和雜 46 質(zhì)外體中葡萄糖濃度波動幅度較小,均未出現(xiàn)明顯的濃度峰值,平均值分別為0.047 3、0.053 0 mmol/L;葡萄糖最高濃度分別為 0.056 3、0.066 6 mmol/L,最低濃度分別為0.035 9、0.036 2 mmol/L。貴農(nóng)22- 蒸餾水與雜46-蒸餾水的質(zhì)外體中葡萄糖濃度差異不顯著。
雜 46 接種 CYR32 后 0、1、2、3、4、8、14 d 質(zhì)外體中葡萄糖濃度呈現(xiàn)明顯的波動,接種后0~3 d濃度急劇升高,接種后3 d 葡萄糖濃度達(dá)最高值(1.006 9 mmol/L),是接種后 0 d 濃度(0.047 4 mmol/L)的21.23 倍;接種后4 d 濃度約為最高值的1/3(0.325 8 mmol/L),隨后小幅升高;接種后14 d 濃度(0.412 8 mmol/L)約為最高值的0.41 倍。貴農(nóng)22 接種 CYR32 后 0、1、2、3、4、8、14 d 葉片質(zhì)外體中葡萄糖濃度平均值為0.223 0 mmol/L,接種后2 d 葡萄糖濃度從0.077 1 mmol/L(接種后0 d)上升到最高值0.412 2 mmol/L(接種后 2 d),為雜 46 接種 CYR32濃度峰值的0.41 倍;接種后3 d 濃度略有下降(0.386 7 mmol/L),隨后濃度下降為該組合濃度峰值的0.38 倍,并保持相對穩(wěn)定至接種后14 d(圖2)。CYR32 接種的組合均與對照蒸餾水處理的組合質(zhì)外體中葡萄糖濃度差異顯著(P<0.05);雜46 與貴農(nóng)22 接種CYR32 后質(zhì)外體中葡萄糖濃度除接種后0、2 d 外其余時間點(diǎn)差異均顯著(P<0.05)。
目前,對Pst如何從小麥寄主將糖類吸收進(jìn)入菌體尚不清楚。在大麥柄銹菌Puccinia hordei-大麥、白銹菌Albugo candida-擬南芥、玉米黑粉菌Ustilago maydis-玉米、黃曲霉菌Aspergillus flavus- 玉米等多種病原菌- 寄主互作中,均檢測到蔗糖酶基因轉(zhuǎn)錄上調(diào)和蔗糖酶表達(dá)量明顯增加[17-19]。最近研究發(fā)現(xiàn),Pst中編碼蔗糖酶的PsINV基因在Pst- 小麥親和與非親和互作中均大量表達(dá),該基因產(chǎn)物可以高效分解蔗糖[20]。蔗糖酶主要功能是將蔗糖水解成葡萄糖和果糖,Pst侵染過程中蔗糖酶基因表達(dá)量增加可能有利于Pst將小麥質(zhì)外體中的蔗糖分解成葡萄糖和果糖。Pst基因組中已發(fā)現(xiàn)編碼葡萄糖轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白的基因[21],但未發(fā)現(xiàn)預(yù)測編碼果糖轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白的基因,因此,Pst分解蔗糖產(chǎn)生的果糖累積可能將激發(fā)小麥的抗性反應(yīng)。筆者發(fā)現(xiàn),Pst侵染過程中預(yù)測編碼磷酸葡萄糖變位酶、甘露糖-1- 磷酸鳥苷酰轉(zhuǎn)移酶等與糖代謝相關(guān)的基因被誘導(dǎo)高度表達(dá)并且在不同毒力菌株間表達(dá)差異顯著,甘露糖-1- 磷酸鳥苷酰轉(zhuǎn)移酶具有專化的轉(zhuǎn)運(yùn)甘露糖功能。如果果糖在變位酶、甘露糖-1- 磷酸鳥苷酰轉(zhuǎn)移酶等催化下轉(zhuǎn)化為甘露糖,甘露糖-1- 磷酸鳥苷酰轉(zhuǎn)移酶轉(zhuǎn)運(yùn)甘露糖,進(jìn)而在甘露醇脫氫酶作用下還原為甘露醇,既避免了由于果糖與蔗糖的比例升高介導(dǎo)的小麥抗性,又可以將產(chǎn)生的甘露醇作為病原菌的碳源儲備和淬滅寄主的活性氧。Pst如何調(diào)節(jié)小麥質(zhì)外體中糖濃度和比例使之有利于菌體生長發(fā)育還需要進(jìn)一步研究。
質(zhì)外體是植物細(xì)胞間營養(yǎng)交流的基礎(chǔ)空間,也是成功侵染的病原菌獲取寄主糖類的重要場所。目前研究表明,受病原菌侵染的寄主植物質(zhì)外體中的糖變化與其抗性表型相關(guān),例如葡萄受到白粉菌Plasmopora viticola和霜霉菌Erysiphe cichoracearum侵染時質(zhì)外體中糖含量降低限制了病原菌擴(kuò)散[22]。受玉蜀黍黑粉菌Ustilago maydis侵染的玉米葉片中糖減少激發(fā)了水楊酸介導(dǎo)的對Ustilago maydis的抗性[23]。與此相似,本研究顯示,感病和抗病小麥接種Pst后質(zhì)外體中葡萄糖濃度均發(fā)生動態(tài)變化,但抗病小麥比感病小麥的質(zhì)外體中葡萄糖濃度低,感病的雜46 接種后4 d 質(zhì)外體中葡萄糖濃度從0.047 4 mmol/L 急劇升高到1.006 8 mmol/L,接種后14 d 葡萄糖濃度雖然比峰值時下降,但依然高于蒸餾水噴霧的雜46 質(zhì)外體中葡萄糖濃度。而抗CYR32 的貴農(nóng)22 接種后葉片質(zhì)外體中葡萄糖濃度雖然也表現(xiàn)升高,但峰值僅為雜46 接種后峰值的0.41 倍??剐孕←?zhǔn)欠裢ㄟ^降低質(zhì)外體中葡萄糖濃度限制Pst獲取糖類,還需要結(jié)合Pst糖轉(zhuǎn)運(yùn)相關(guān)基因的表達(dá)等進(jìn)一步研究。