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    以cytC基因?yàn)榘袠?biāo)的LAMP快速檢測番茄潰瘍病菌方法的建立

    2021-07-26 01:30:53劉燕妮毛芙蓉范慧冬鄭士金侯柏森
    江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2021年11期
    關(guān)鍵詞:特異性檢測

    劉燕妮 毛芙蓉 范慧冬 鄭士金 侯柏森

    摘要:以番茄細(xì)菌性潰瘍病病菌的特異性基因cytC為檢測靶標(biāo),以番茄潰瘍病病菌等8種病原細(xì)菌為供試菌株。根據(jù)檢測靶標(biāo)設(shè)計(jì)環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增(LAMP)引物并進(jìn)行特異性和靈敏度檢測。結(jié)果顯示,引物cytC-170能特異性檢測出番茄潰瘍病病菌,檢測靈敏度高達(dá)5×105 copy/μL,環(huán)引物的加成將試驗(yàn)進(jìn)程縮短為33.06 min,使整個反應(yīng)控制在50 min內(nèi)。研究建立的LAMP檢測方法操作簡單,結(jié)果可視,非常適用于番茄細(xì)菌性潰瘍病病菌的現(xiàn)場快速檢測。

    關(guān)鍵詞:番茄潰瘍病病菌;LAMP;特異性;檢測;cytC基因;加環(huán)試驗(yàn)

    中圖分類號:S436.412.1+9?? 文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A

    文章編號:1002-1302(2021)11-0072-04

    收稿日期:2020-09-01

    基金項(xiàng)目:吉林省重點(diǎn)科技攻關(guān)項(xiàng)目(20140204032NY)。

    作者簡介:劉燕妮(1988—),女,山東青島人,碩士,助理研究員,研究方向?yàn)槭卟瞬『C合防治。E-mail:704870590@qq.com。

    通信作者:毛芙蓉,碩士,副研究員,研究方向?yàn)槭卟瞬∠x害綜合防治。E-mail:5155885@qq.com。

    番茄細(xì)菌性潰瘍病病菌是我國禁止入境的檢疫性有害微生物,1954年我國首次報(bào)道該病害,之后便迅速蔓延,現(xiàn)在在黑龍江、吉林、山東、遼寧、河北、四川等地均有發(fā)生,每年給番茄帶來25%~75%的經(jīng)濟(jì)損失,嚴(yán)重制約著番茄產(chǎn)業(yè)的發(fā)展。番茄細(xì)菌性潰瘍病由密執(zhí)安棒狀桿菌密執(zhí)安亞種(Clavibacter michiganensis subsp. michiganensis,以下簡稱為Cmm)引起,除侵染番茄外,還可侵染辣椒、裂葉茄、龍葵、煙草、天仙子等47種茄科植物[1-2]。這些植物的病殘?bào)w都可作為病害再次流行的初侵染源。有關(guān)報(bào)道表明,當(dāng)番茄體內(nèi)的病菌濃度達(dá)到1×108~1×109 CFU/mL時,番茄就會表現(xiàn)出被害癥狀[3],當(dāng)番茄種子的帶菌率達(dá)1%以上時,便可引起病害的快速流行[4-5]。因此進(jìn)行番茄潰瘍病病菌的初期檢測并進(jìn)行有效防治是預(yù)防該病發(fā)生的最有效手段。

    目前,針對番茄細(xì)菌性潰瘍病病菌的檢測方法主要有半選擇性培養(yǎng)基的富集培養(yǎng)[6]、菌株的致病性測定[7]、血清學(xué)檢測、DNA 探針[8]以及PCR[9]等方法,但這些檢測方法都存在操作復(fù)雜、準(zhǔn)確率低以及技術(shù)要求高等各方面的限制。本研究使用建立的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增(LAMP)檢測方法對技術(shù)要求低、靈敏度高、特異性強(qiáng)、操作簡便,更適用于番茄細(xì)菌性潰瘍病病菌的早期檢測。

    1 材料與方法

    1.1 供試菌株

    本研究使用的菌株番茄細(xì)菌性潰瘍病病菌[Clavibacter michiganensis subsp. michiganensis (Smith) Davis et al.],由筆者所在實(shí)驗(yàn)室自主分離和中國農(nóng)業(yè)大學(xué)種子病理中心提供;番茄青枯假單胞菌和茄青枯假單胞菌(Pseudomonas solanacearum E. F.Smith),均由廣東省微生物保存中心提供;黃瓜角斑病病菌[Pseudomonas syringae pv. lachrymans (Smith & Bryan) Yong,Dye & Wilkie]和西瓜果斑病病菌(Pseudomonas pseudoalcaligenes subsp. citrulli Schaad et al.),均由吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)植物病理實(shí)驗(yàn)室提供;馬鈴薯環(huán)腐病病菌[Clavibacter michiganense subsp. sepedonicum (Spieckermann & Kotthoff) Davis,Gillaspie,Vidaver and Harris]和馬鈴薯瘡痂病病菌[Streptomyces scabies (Thaxte) Waks.et Henvici],均由筆者所在實(shí)驗(yàn)室自主保存。

    1.2 培養(yǎng)基

    NA培養(yǎng)基:牛肉膏3.0 g、蛋白胨5.0 g、酵母粉3.0 g、瓊脂粉16~18 g,定容至1 000 mL,調(diào)pH值至7.0,121 ℃滅菌30 min。LB液體培養(yǎng)基:蛋白胨 10.0 g、酵母粉5.0 g、NaCl 10.0 g,定容至1 000 mL,調(diào)pH值至7.0,121 ℃滅菌20 min。

    1.3 LAMP反應(yīng)體系的建立

    試驗(yàn)于2015年4—12月在吉林省蔬菜花卉科學(xué)研究院植物保護(hù)實(shí)驗(yàn)室內(nèi)進(jìn)行。

    1.3.1 細(xì)菌基因組DNA的提取

    將供試菌株在NA培養(yǎng)基上活化培養(yǎng)后,轉(zhuǎn)至LB液體培養(yǎng)基中進(jìn)行恒溫振蕩培養(yǎng)至菌液濃度為108 CFU/mL。培養(yǎng)好的菌株使用細(xì)菌基因組提取試劑盒[天根生化科技(北京)有限公司]提取菌體DNA,并用ND 1000分光光度計(jì)檢測DNA質(zhì)量和濃度,于-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.3.2 LAMP引物設(shè)計(jì)

    根據(jù)PCR的試驗(yàn)結(jié)果[10],針對特異性基因(cytC基因),使用Primer Premier 5.0設(shè)計(jì)LAMP反應(yīng)內(nèi)外引物及環(huán)引物(表1)。引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成及純化。

    1.3.3 LAMP反應(yīng)體系

    利用設(shè)計(jì)的內(nèi)外引物及環(huán)引物(引物均稀釋到100 μmol/L),使用廣州華峰生物科技有限公司生產(chǎn)的通用型恒溫實(shí)時熒光試劑盒進(jìn)行LAMP反應(yīng)。反應(yīng)體系:2×LAMP reaction mixture 12.5 μL、熒光染料0.25 μL、Bst酶 0.5 μL、引物 1.0 μL (內(nèi)、外引物終濃度分別為1.6、0.2 μmol/L)、環(huán)引物 (100 μmol/L) 0.2 μL(終濃度為0.8 μmol/L)、DNA模板 2.0 μL,用水定容至25 μL。反應(yīng)程序:63 ℃,70 min。

    1.3.4 加環(huán)后反應(yīng)體系

    使用廣州華峰生物科技有限公司生產(chǎn)的凍干通用型恒溫實(shí)時熒光試劑盒進(jìn)行LAMP反應(yīng)。反應(yīng)體系:復(fù)溶液15 μL、引物1.0 μL(內(nèi)、外引物終濃度分別為1.6、0.2 μmol/L)、環(huán)引物(100 μmol/L) 0.2 μL (終濃度為0.8 μmol/L)、 DNA模板2.5 μL,用水定容至25 μL。反應(yīng)程序:63 ℃,70 min。

    1.3.5 LAMP 方法引物篩選

    將設(shè)計(jì)好的內(nèi)外引物加到反應(yīng)體系中進(jìn)行等溫?cái)U(kuò)增,采用熒光定量PCR儀器進(jìn)行LAMP反應(yīng),在每個循環(huán)結(jié)束時讀取熒光信號值,判斷引物擴(kuò)增效果。

    1.3.6 LAMP 方法特異性檢測

    使用表1中所列的LAMP反應(yīng)所需引物進(jìn)行特異性檢測,以無菌水為空白對照,驗(yàn)證LAMP檢測的特異性。結(jié)果通過3種不同的方法進(jìn)行判斷:將LAMP產(chǎn)物用2% 瓊脂糖凝膠電泳檢測;采用熒光定量PCR儀器進(jìn)行LAMP反應(yīng),在每個循環(huán)結(jié)束時讀取熒光信號值;將LAMP產(chǎn)物離心,使管蓋上的顯色物質(zhì)進(jìn)入產(chǎn)物,觀察顯色情況。

    1.3.7 LAMP 方法靈敏度檢測

    利用篩選出的引物組,對番茄潰瘍病病菌進(jìn)行擴(kuò)增,檢測LAMP反應(yīng)的靈敏度。提取番茄潰瘍病病菌的DNA,并進(jìn)行不同濃度的稀釋使其終濃度分別為5、50、5×102、5×103、5×104、5×105、5×106 copies/μL共7個濃度作為各個梯度的DNA 模板,以無菌水為空白對照進(jìn)行LAMP反應(yīng)的靈敏度檢測。結(jié)果判斷同“1.3.6”節(jié)。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 LAMP引物篩選

    使用設(shè)計(jì)引物cytC-170和cytC-49對Cmm進(jìn)行特異性擴(kuò)增,結(jié)果如圖1所示。引物cytC-170能擴(kuò)增出目的片段,可以進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn),而引物cytC-49 擴(kuò)增效果不理想,不能擴(kuò)增目的片段。因此選擇引物cytC-170進(jìn)行下一步試驗(yàn)。

    2.2 LAMP檢測加環(huán)試驗(yàn)

    對篩選出的cytC-170引物組進(jìn)行環(huán)引物加成處理,將處理后的引物組重新進(jìn)行LAMP反應(yīng),通過試驗(yàn)結(jié)果(圖2)可以看出,加環(huán)后擴(kuò)增時間從47.27 min縮減為33.06 min;反應(yīng)時間約縮短1/3,擴(kuò)增速度明顯加快,更有利于檢測的進(jìn)行。

    2.3 cytC基因LAMP特異性檢測

    利用供試菌株對篩選優(yōu)化的cytC-170引物組進(jìn)行特異性檢測,結(jié)果(圖3)顯示,3種檢測方法均證明cytC-170基因只能從Cmm樣品中獲得預(yù)期目標(biāo)產(chǎn)物,而在番茄青枯假單胞菌、黃瓜角斑病病菌等病原細(xì)菌中均不能獲得目標(biāo)片段,表明cytC-170基因能通過LAMP檢測的方法特異性檢測出番茄潰瘍病病菌。

    2.4 cytC-170基因LAMP靈敏度性檢測

    對篩選出的cytC-170引物組進(jìn)行靈敏度檢測,結(jié)果(圖4)顯示:3種檢測方法均證明,當(dāng)病菌的濃度達(dá)到5×105 copies/μL時,cytC-170基因能很好地?cái)U(kuò)增出目的片段,可用于檢測Cmm。

    3 討論與結(jié)論

    番茄潰瘍病是一種系統(tǒng)性維管束病害,植株發(fā)病后病情可以隨流水、農(nóng)事操作等迅速蔓延,可能給番茄生產(chǎn)帶來毀滅性打擊。進(jìn)行番茄潰瘍病病菌的早期檢測預(yù)防能夠有效減少該病帶來的損失。有關(guān)報(bào)道表明,只有當(dāng)番茄植物體內(nèi)的Cmm濃度達(dá)到1×108~1×109 CFU/mL時,番茄才會表現(xiàn)出被害狀[3],本研究建立的以cytC基因?yàn)闄z測靶標(biāo)的LAMP檢測方法,檢測靈敏度為5×105 copies/μL,遠(yuǎn)低于發(fā)病濃度,能夠達(dá)到早期檢測的要求。

    針對番茄潰瘍病病菌的檢測廣大學(xué)者也進(jìn)行了廣泛研究,但是選擇培養(yǎng)基的富集培養(yǎng)[6]及接種紫茉莉葉片引起過敏性壞死反應(yīng)[7]存在耗時長的缺點(diǎn);血清學(xué)檢測及DNA探針、PCR等方法有效縮短了檢測時間。但是血清學(xué)檢測存在檢測靈敏度低;DNA探針不能區(qū)分致病與非致病菌株;PCR檢測存在耗時長,對操作人員技術(shù)要求高等缺點(diǎn),不適用于檢測的推廣。本研究選取了與致病性相關(guān)的cytC基因,而非高保守性的16S rRNA序列以及高變異性的ITS序列,有效避免了假陽性。建立的LAMP檢測方法操作簡單簡便,只需要1臺恒溫水浴鍋便可完成;耗時短,反應(yīng)時間為33.06 min,整個檢測過程可控制在50 min內(nèi),比常規(guī)PCR和實(shí)時熒光 PCR檢測能更早得到反應(yīng)結(jié)果。雖然PCR檢測的靈敏度要高于LAMP檢測,但是PCR檢測相對要求比較高,而LAMP檢測更快速、便捷,只需一個恒等溫的環(huán)境即可,更適用于生產(chǎn)應(yīng)用。

    參考文獻(xiàn):

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