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    采前外源植物激素與采后1-MCP處理對(duì)糖心蘋(píng)果貯藏品質(zhì)的影響

    2021-06-07 02:05:42杜美軍閻一鳴劉震遠(yuǎn)樊曉靜張鮮桃李海登李喜宏王露茵
    關(guān)鍵詞:植物

    杜美軍, 閻一鳴, 劉震遠(yuǎn), 樊曉靜, 張鮮桃, 李海登,李喜宏,*, 王露茵

    (1.天津科技大學(xué) 食品科學(xué)與工程學(xué)院/省部共建食品營(yíng)養(yǎng)與安全國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, 天津 300457;2.新疆紅旗坡農(nóng)業(yè)發(fā)展集團(tuán)有限公司, 新疆 阿克蘇 843000)

    糖心蘋(píng)果的特征是果實(shí)內(nèi)部組織的細(xì)胞間充滿(mǎn)了細(xì)胞液,通常在果實(shí)中心附近或維管束周?chē)尸F(xiàn)水漬外觀[1]。這種蘋(píng)果不但外觀誘人,而且比一般蘋(píng)果更加甘甜爽口,營(yíng)養(yǎng)價(jià)值更高[2],廣泛受到消費(fèi)者追捧和喜愛(ài)。在新疆阿克蘇地區(qū),糖心蘋(píng)果年產(chǎn)量達(dá)70萬(wàn)t以上,已經(jīng)成為當(dāng)?shù)氐闹е援a(chǎn)業(yè)[3]。然而,糖心蘋(píng)果在貯藏過(guò)程中很容易發(fā)生糖心褐變或消失[4-5],這極大地限制了其作為特色蘋(píng)果的市場(chǎng)發(fā)展?jié)摿?。因此,提升貯藏品質(zhì)并延長(zhǎng)貯藏期是糖心蘋(píng)果保鮮要解決的首要問(wèn)題。

    近年來(lái),糖心蘋(píng)果產(chǎn)業(yè)快速崛起,保鮮技術(shù)手段卻十分缺乏,常用的低溫[6]、氣調(diào)[7]和涂膜[8]等方法,由于針對(duì)性差,并不能滿(mǎn)足提升糖心蘋(píng)果貯藏品質(zhì)的要求。外源植物激素,如生長(zhǎng)素(IAA)、赤霉素(GA3)和脫落酸(ABA)是一種安全的植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑,它們通過(guò)調(diào)節(jié)多種代謝途徑來(lái)調(diào)控果實(shí)采前與采后生理狀態(tài)[9],對(duì)于改善糖心蘋(píng)果貯藏品質(zhì)具有積極作用。此外,1-甲基環(huán)丙烯(1-MCP)是一種優(yōu)良的乙烯抑制劑,它可以有效抑制乙烯的產(chǎn)生,并延緩果蔬衰老和成熟相關(guān)基因的激活[10],從而實(shí)現(xiàn)調(diào)控果實(shí)采后貯藏品質(zhì)的作用。因此,將采前植物激素與采后1-MCP處理有機(jī)結(jié)合,協(xié)同調(diào)控糖心蘋(píng)果貯藏品質(zhì),對(duì)探索糖心蘋(píng)果安全高效的保鮮新方式具有十分重要的意義。

    本研究于采前分別使用植物激素IAA、GA3和ABA處理果實(shí),采后再使用優(yōu)化濃度的1-MCP處理,協(xié)同調(diào)控糖心蘋(píng)果貯藏品質(zhì),定期取樣檢測(cè)糖心蘋(píng)果保鮮理化指標(biāo),研究果實(shí)低溫貯藏期間生理和營(yíng)養(yǎng)品質(zhì)變化,以期探明一種可以有效提升糖心蘋(píng)果貯藏品質(zhì)的處理方法,為糖心蘋(píng)果的貯藏保鮮提供實(shí)踐指導(dǎo)和理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    供試糖心蘋(píng)果生長(zhǎng)于新疆阿克蘇地區(qū)紅旗坡集團(tuán)公司園藝五分場(chǎng),該地區(qū)日照豐富,年日照時(shí)長(zhǎng)約2 600 h,年平均氣溫7.9~11.2 ℃,無(wú)霜期228 d。選擇生長(zhǎng)勢(shì)較強(qiáng)的M26砧木上的7年生“長(zhǎng)富2號(hào)”蘋(píng)果為實(shí)驗(yàn)采果對(duì)象。

    IAA、GA3、ABA,天津百奧泰科技發(fā)展有限公司;草酸,南京化學(xué)試劑股份有限公司;酚酞,上海易恩化學(xué)技術(shù)有限公司;維生素C(VC),深圳樂(lè)芙生物科技有限公司;2,6-二氯酚靛酚鈉鹽,鄭州艾克姆化工有限公司;水溶性果膠(WSP)含量檢測(cè)試劑盒、多聚半乳糖醛酸酶(PG)活性檢測(cè)試劑盒,北京索萊寶科技有限公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    HP- 200型精密色差儀,上海漢譜光電科技有限公司;GXH- 3051H型果蔬呼吸測(cè)定儀,北京均方理化科技研究所;WY060T型手持折光儀,日本ATAGO株式會(huì)社;T6型紫外可見(jiàn)分光光度計(jì),北京普析通用儀器有限責(zé)任公司;GY- 4型數(shù)顯果實(shí)硬度計(jì),浙江拓普儀器有限公司。

    1.3 實(shí)驗(yàn)方法

    1.3.1植物激素與1-MCP對(duì)果實(shí)協(xié)同處理

    選用樹(shù)勢(shì)一致,坐果量相近果樹(shù)為實(shí)驗(yàn)對(duì)象。每組處理隨機(jī)選擇3棵果樹(shù)標(biāo)記,對(duì)位于陽(yáng)面的150個(gè)果實(shí)進(jìn)行實(shí)驗(yàn)處理。于果實(shí)轉(zhuǎn)色期(9月中旬)開(kāi)始,每15 d使用手持噴霧器,向果實(shí)、花蕾、花托和周?chē)θ~噴施外源植物激素,直至有液滴懸滴為止,然后重新套袋。植物激素質(zhì)量濃度設(shè)置為25 mg/L IAA、100 mg/L GA3、400 mg/L ABA,對(duì)照組為等量清水。10月25日糖心蘋(píng)果采收后,常溫條件下立即用1 μL/L的1-MCP大棚熏蒸12 h,然后常溫空運(yùn)于次日運(yùn)抵天津科技大學(xué)農(nóng)產(chǎn)品物流與保鮮實(shí)驗(yàn)室所屬冷庫(kù)。0 ℃預(yù)冷庫(kù)預(yù)冷24 h,挑選外觀一致、大小均勻、無(wú)傷病、成熟度一致的果實(shí)置于(0±0.1) ℃、相對(duì)濕度92%~95%的恒溫庫(kù)中貯藏6個(gè)月,每個(gè)月定期從每個(gè)處理組隨機(jī)選擇20個(gè)果實(shí)測(cè)定相關(guān)指標(biāo),每組進(jìn)行3次平行實(shí)驗(yàn)。

    1.3.2糖心蘋(píng)果品質(zhì)指標(biāo)測(cè)定

    1.3.2.1 整體視覺(jué)品質(zhì)的測(cè)定

    在果實(shí)赤道附近3個(gè)等距點(diǎn)測(cè)定a*值(紅綠色)和b*值(黃藍(lán)色);果實(shí)赤道橫截面測(cè)定果肉和糖心部位L*值(亮度),測(cè)量糖心部位時(shí),保證所測(cè)糖心面積大于光孔面積(8 mm)。按式(1)計(jì)算果皮色相角(°)[11]。

    色相角=arctan(b*/a*)。

    (1)

    1.3.2.2 呼吸強(qiáng)度的測(cè)定

    參照Du等[10]方法,每個(gè)處理組固定標(biāo)記9個(gè)果實(shí)用于呼吸速率的測(cè)定,密封時(shí)間15 min,重復(fù)3次,按式(2)計(jì)算。

    (2)

    式(2)中,呼吸速率,mg/(kg·h)(以CO2質(zhì)量計(jì));φ1為測(cè)定前罐中CO2體積分?jǐn)?shù),%;φ2為測(cè)定后罐中CO2體積分?jǐn)?shù),%;V為呼吸罐容積,L;M為CO2的摩爾質(zhì)量,g/mol;Vm為CO2的摩爾體積,L/mol;m為蘋(píng)果質(zhì)量,kg;t為測(cè)試時(shí)間,h。

    1.3.2.3 失重率和腐爛率的測(cè)定

    失重率和腐爛率分別按式(3)、式(4)計(jì)算。

    失重率= [m(貯藏前)-m(貯藏后)]/m(貯藏前)×100%;

    (3)

    腐爛率=腐爛果總數(shù)/果實(shí)總數(shù)×100%。

    (4)

    1.3.2.4 可溶性固形物含量的測(cè)定

    可溶性固形物含量(SSC)采用手持折光儀測(cè)定,每個(gè)處理組隨機(jī)挑選3個(gè)果實(shí),按果肉的糖心與非糖心部位1∶1比例取樣,測(cè)定果實(shí)平均SSC。

    1.3.2.5 可滴定酸和維生素C含量的測(cè)定

    參照曹建康等[12]方法,利用NaOH溶液滴定法測(cè)定可滴定酸(TA)含量,2,6-二氯酚靛酚滴定法測(cè)定VC含量,計(jì)算見(jiàn)式(5)、式(6)。

    (5)

    式(5)中,φ(TA),%;V為樣品提取液總體積,mL;Vs為滴定時(shí)所取濾液體積,mL;c為NaOH滴定濃度,mol/L;V1為滴定濾液消耗的NaOH溶液體積,mL;V0為滴定蒸餾水消耗的NaOH溶液體積,mL;m為樣品質(zhì)量,g;f為折算系數(shù),蘋(píng)果酸為0.067 g/mmol。

    (6)

    式(6)中,w(VC),mg/100 g;V1為樣品滴定消耗的染料體積,mL;V0為空白滴定消耗的染料體積,mL;ρ為1 mL染料溶液相當(dāng)于VC的質(zhì)量濃度,mg/mL;Vs為滴定時(shí)所取樣品溶液體積,mL;V為樣品提取液總體積,mL;m為樣品質(zhì)量,g。

    1.3.2.6 果肉硬度、水溶性果膠含量和多聚半乳糖醛酸酶酶活力的測(cè)定

    使用GY- 4型數(shù)顯果實(shí)硬度計(jì)測(cè)定果實(shí)赤道截面果肉硬度,結(jié)果換算以N表示。

    采用比色法測(cè)定果實(shí)WSP質(zhì)量摩爾濃度,結(jié)果以μmol/g表示。以各標(biāo)準(zhǔn)溶液的摩爾濃度為x軸,其對(duì)應(yīng)的吸光度為y軸,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得標(biāo)準(zhǔn)曲線方程y=1.212 9x-0.021 1,相關(guān)系數(shù)R2=0.992 7。根據(jù)溶液吸光度在標(biāo)準(zhǔn)曲線上查得WSP摩爾濃度,按照式(7)計(jì)算WSP質(zhì)量摩爾濃度。

    (7)

    圖1 采前植物激素結(jié)合采后1-MCP處理后蘋(píng)果果實(shí)外觀和糖心的變化Fig.1 Changes in appearance and sugar core of apple fruit with pre-harvest exogenous phytohormone and post-harvest 1-MCP treatment

    式(7)中,x為WSP摩爾濃度,μmol/mL;V為加入的提取液體積,2 mL;m為樣品鮮質(zhì)量,g。

    采用比色法測(cè)定果實(shí)PG酶活力,結(jié)果以U/g表示。以各標(biāo)準(zhǔn)溶液的摩爾濃度為x軸,其對(duì)應(yīng)的吸光度為y軸,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得標(biāo)準(zhǔn)曲線方程y=0.138 2x+0.082 9,相關(guān)系數(shù)R2=0.999 2。根據(jù)溶液吸光度在標(biāo)準(zhǔn)曲線上查得PG酶摩爾濃度。在40 ℃、pH值6.0的條件下,1 g樣品1 h分解多聚半乳糖醛酸產(chǎn)生1 μmol的半乳糖醛酸定義為1個(gè)酶活力單位,按式(8)計(jì)算PG酶活力。

    (8)

    式(8)中,x為PG摩爾濃度,μmol/mL;V為加入的提取液體積,0.5 mL;m為樣品鮮質(zhì)量,g;t為酶促反應(yīng)時(shí)間,min。

    1.4 數(shù)據(jù)處理

    采用Microsoft Excel 2010軟件處理數(shù)據(jù);SPSS 13.0進(jìn)行ANOVA單因素方差分析,與Duncan多重比較,得出數(shù)據(jù)間顯著性差異(P<0.05);使用Origin 9.0繪圖。每組實(shí)驗(yàn)重復(fù)測(cè)定3次,結(jié)果表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 糖心蘋(píng)果貯藏期間色澤屬性分析

    糖心蘋(píng)果的外觀及內(nèi)部色澤屬性直接決定著消費(fèi)者的可接受程度。其中色相角可以較好地衡量果皮的鮮艷程度,0~180°,值越小,表示紅色越深;L*值可以較好地衡量果肉亮度,其值越小表示亮度越低[13]。協(xié)同處理后蘋(píng)果果實(shí)外觀和糖心的變化見(jiàn)圖1。由圖1可知,采前外源植物激素結(jié)合采后1-MCP處理后,果實(shí)的外觀色澤和鮮艷度均有所提高,且貯藏期間色相角始終低于對(duì)照組(圖2),其中GA3+1-MCP和ABA+1-MCP組品質(zhì)最好,這可能與GA3和ABA均可以有效促進(jìn)果皮花色苷的形成有關(guān)[14-15]。果實(shí)內(nèi)部觀察顯示,外源激素可以有效促進(jìn)糖心的形成,其中GA3處理后果實(shí)糖心面積占比最大。然而各組果實(shí)貯藏期間都出現(xiàn)不同程度糖心消失現(xiàn)象,這與果實(shí)采后細(xì)胞自我修復(fù)和細(xì)胞液反滲透相關(guān)[16]。此外,果肉和糖心L*值在貯藏期間不斷下降(圖3),這與細(xì)胞衰老和內(nèi)部氧化褐變相關(guān)。外源激素處理能夠延緩果肉L*值下降,但是無(wú)法更好地保持糖心L*值,這說(shuō)明促進(jìn)糖心形成會(huì)引起亮度下降;而IAA+1-MCP處理能夠有效減緩L*值的下降,較好地平衡兩者之間的關(guān)系。

    圖2 采前植物激素結(jié)合采后1-MCP處理后果皮色相角 的變化Fig.2 Changes in hue angle of apple fruit peel with pre-harvest exogenous phytohormone and post-harvest 1-MCP treatment

    圖3 采前植物激素結(jié)合采后1-MCP處理后果肉和糖心L*值的變化Fig.3 Changes in brightness value in flesh and sugar core of apple fruit with pre-harvest exogenous phytohormone and post-harvest 1-MCP treatment

    2.2 糖心蘋(píng)果貯藏期間呼吸強(qiáng)度分析

    圖4 采前植物激素與采后1-MCP處理后果實(shí)呼吸 強(qiáng)度的變化Fig.4 Changes in respiration intensity of apple fruit with pre-harvest exogenous phytohormone and post-harvest 1-MCP treatment

    糖心蘋(píng)果屬于呼吸躍變型果實(shí),采后貯藏過(guò)程中呼吸強(qiáng)度的變化可以間接反映果實(shí)的后熟、衰老以及營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)損耗狀況[17]。協(xié)同處理后糖心蘋(píng)果貯藏期間的呼吸強(qiáng)度變化見(jiàn)圖4。由圖4可知,貯藏過(guò)程中,果實(shí)的呼吸強(qiáng)度先升高再降低。GA3+1-MCP和ABA+1-MCP組果實(shí)呼吸強(qiáng)度最先于第60天第1次出現(xiàn)呼吸高峰,比對(duì)照組提前了30 d,這與GA3和ABA提高果實(shí)貯藏前成熟度,縮短了采后后熟階段有關(guān)[18-19]。經(jīng)過(guò)IAA+1-MCP處理的果實(shí)在第120天出現(xiàn)呼吸高峰,且峰值顯著低于對(duì)照組(P<0.05),這說(shuō)明IAA有效地延長(zhǎng)了果實(shí)的后熟過(guò)程。此外,經(jīng)過(guò)外源植物激素處理的果實(shí)在貯藏期間,呼吸強(qiáng)度基本低于對(duì)照組,其中IAA+1-MCP組果實(shí)呼吸強(qiáng)度始終較低。說(shuō)明施用外源植物激素可以有效降低糖心蘋(píng)果采后生理活動(dòng),延緩細(xì)胞衰老和營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)損耗,從而提高果實(shí)貯藏品質(zhì)。其中,IAA結(jié)合1-MCP的處理方式抑制效果更為顯著。

    2.3 糖心蘋(píng)果貯藏期間失重率和腐爛率分析

    果實(shí)貯藏期間失重率和腐爛率可以反映其品質(zhì)劣變和抗病性情況[20]。圖5顯示了貯藏期間各處理組果實(shí)失重率和腐爛率變化情況。經(jīng)過(guò)外源植物激素處理過(guò)的果實(shí)失重率顯著降低(P<0.05)。貯藏180 d時(shí),IAA+1-MCP、GA3+1-MCP和ABA+1-MCP組失重率分別為2.13%、4.74%和4.49%;而對(duì)照組的果實(shí)失重率卻達(dá)到了5.62%。同樣,經(jīng)過(guò)外源激素處理的果實(shí)腐爛率也顯著降低,IAA+1-MCP、GA3+1-MCP和ABA+1-MCP組在貯藏180 d時(shí)分別為3.82%、4.21%和3.94%,但各處理組間差異不顯著(P>0.05)。研究結(jié)果表明:外源植物激素可以協(xié)同調(diào)控果實(shí)采后品質(zhì),提高果實(shí)抗病性,IAA+1-MCP處理綜合調(diào)控效果更好。曠永潔等[21]研究發(fā)現(xiàn):生長(zhǎng)素、赤霉素和脫落酸可以單獨(dú)或者通過(guò)調(diào)控植物體內(nèi)源小分子的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo),參與提升其抗病性,從而改善和提高果實(shí)的貯藏品質(zhì),這與本研究結(jié)果一致。

    圖5 采前植物激素結(jié)合采后1-MCP處理后果實(shí)失重率和腐爛率的變化Fig.5 Changes in weight loss rate and decay rate of apple fruit with pre-harvest exogenous phytohormone and post-harvest 1-MCP treatment

    2.4 糖心蘋(píng)果貯藏期間可溶性固形物、可滴定酸和維生素C含量分析

    果實(shí)可溶性固形物主要由可溶性糖組成,是評(píng)價(jià)果實(shí)甜度的重要指標(biāo)[22]。圖6(a)顯示了貯藏期間各組果實(shí)可溶性固形物平均含量的變化。果實(shí)SSC先緩慢上升然后不斷下降,這與采后果實(shí)的后熟和衰老等生理活動(dòng)相關(guān)。經(jīng)過(guò)植物激素處理后果實(shí)中可溶性糖含量顯著提升,說(shuō)明外源植物激素可以有效調(diào)節(jié)果實(shí)糖代謝途徑,從而改善果實(shí)貯藏品質(zhì)[23]。貯藏前期各處理組SSC由大到小依次為GA3+1-MCP組、ABA+1-MCP組、 IAA+1-MCP組;180 d時(shí)各組SSC由大到小依次為GA3+1-MCP組、IAA+1-MCP組、 ABA+1-MCP組,這與呼吸代謝具有一定的相關(guān)性,果實(shí)采后呼吸越旺盛,可溶性固形物損耗也就越大。外源植物激素調(diào)控果實(shí)糖代謝的機(jī)制是復(fù)雜的,途徑也不盡相同。IAA通過(guò)增強(qiáng)細(xì)胞膜ATP酶活性,改變K+濃度,從而促進(jìn)果實(shí)對(duì)蔗糖的吸收[24];GA3雖然抑制了蔗糖的積累,但是卻通過(guò)增強(qiáng)糖酵解途徑相關(guān)酶活性,促進(jìn)了己糖和山梨糖醇的積累[25];而ABA通過(guò)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)來(lái)誘導(dǎo)相關(guān)基因轉(zhuǎn)錄,從而促進(jìn)果實(shí)蔗糖的積累[26]。

    糖心蘋(píng)果中的TA含量直接影響著果實(shí)的風(fēng)味和貯藏性[27],而VC含量可以作為評(píng)價(jià)果實(shí)營(yíng)養(yǎng)品質(zhì)和貯藏品質(zhì)的重要指標(biāo)[28]。糖心蘋(píng)果貯藏期間TA和VC含量在逐漸下降,見(jiàn)圖6(b)、圖6(c)。貯藏180 d時(shí),IAA+1-MCP組、GA3+1-MCP組、 ABA+1-MCP組和對(duì)照組的TA含量分別下降了0.14%、0.16%、0.16%和0.14%;與對(duì)照組相比,激素處理組果實(shí)的TA含量并沒(méi)有顯著性差異(P>0.05),說(shuō)明外源植物激素對(duì)減少果實(shí)貯藏期間TA含量的下降影響不大。然而各組VC含量變化差異較大,可能與植物激素調(diào)控果實(shí)成熟度能力不同相關(guān),間接調(diào)節(jié)了VC含量[9]。貯藏前對(duì)照組果實(shí)的VC含量顯著低于IAA+1-MCP組,但是卻高于GA3+1-MCP組和ABA+1-MCP組,說(shuō)明IAA可以有效提升果實(shí)VC含量。貯藏180 d時(shí),IAA+1-MCP組、GA3+1-MCP組、ABA+1-MCP組和對(duì)照組的VC質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別為7.23、6.67、6.34、6.53 mg/100g;說(shuō)明IAA+1-MCP協(xié)同處理可以一定程度上保持果實(shí)VC含量,而其他處理組這種效果較差,與對(duì)照組相比差異不顯著(P>0.05)。

    圖6 采前植物激素結(jié)合采后1-MCP處理后果實(shí)可溶性固形物、可滴定酸和維生素C含量的變化Fig.6 Changes in soluble solids, titratable acid and vitamin C content of apple fruit with pre-harvest exogenous phytohormone and post-harvest 1-MCP treatment

    圖7 采前植物激素結(jié)合采后1-MCP處理后果實(shí)硬度、水溶性果膠含量和多聚半乳糖醛酸酶酶活力的變化Fig.7 Changes in firmness, water-soluble pectin content and polygalacturonase activity of apple fruit with pre-harvest exogenous phytohormone and post-harvest 1-MCP treatment

    2.5 糖心蘋(píng)果貯藏期間硬度、水溶性果膠含量和多聚半乳糖醛酸酶酶活力分析

    果實(shí)軟化是糖心蘋(píng)果貯藏期間品質(zhì)劣變的顯著特征,直接制約著果實(shí)的耐貯性;而細(xì)胞壁物質(zhì)(主要為果膠物質(zhì))的降解是造成果實(shí)采后硬度下降的最重要因素。果膠是構(gòu)成細(xì)胞初生壁和中膠層的主要成分,WSP含量可較好地反映果膠的降解程度和果肉組織的軟化特性[29]。此外,在果膠水解及果實(shí)軟化過(guò)程中PG基因會(huì)大量表達(dá),促進(jìn)PG的合成,造成多聚半乳糖醛酸水解和細(xì)胞壁的降解[30]。糖心蘋(píng)果硬度、WSP含量和PG酶活力變化見(jiàn)圖7。由圖7(a)可知,各處理組果實(shí)在貯藏期間的硬度逐漸下降;貯藏180 d時(shí),IAA+1-MCP組、GA3+1-MCP組、ABA+1-MCP組和對(duì)照組硬度分別下降了10.96%、11.72%、13.91%和14.21%。說(shuō)明IAA 和GA3處理能夠較好地延緩果實(shí)的軟化。WSP含量變化與硬度變化具有較強(qiáng)的相關(guān)性,貯藏期間WSP含量在不斷升高[圖7(b)];同時(shí),IAA 和GA3處理均有效地延緩了WSP含量的增加。PG酶活力卻呈現(xiàn)出先升高后降低的趨勢(shì)[圖7(c)],這可能與果實(shí)采后后熟與衰老的生理特性相關(guān);但I(xiàn)AA+1-MCP組的PG酶活力始終保持在較低水平。研究結(jié)果表明:IAA+1-MCP和GA3+1-MCP處理能夠有效抑制果實(shí)采后軟化過(guò)程,其中前者抑制效果更為顯著。這與前人的研究結(jié)論是一致的:低濃度IAA可抑制果實(shí)呼吸和乙烯的合成,GA3可延緩果實(shí)衰老;但ABA對(duì)于果實(shí)內(nèi)源IAA和GA3的調(diào)控效應(yīng)具有拮抗作用[31]。

    3 結(jié) 論

    本研究創(chuàng)新性的將外源植物激素協(xié)同1-MCP處理技術(shù)應(yīng)用于糖心蘋(píng)果的品質(zhì)調(diào)控。結(jié)果表明,IAA+1-MCP、GA3+1-MCP和ABA+1-MCP 3種處理均可以不同程度地提升糖心蘋(píng)果采后貯藏品質(zhì)。其中,GA3+1-MCP處理可有效促進(jìn)糖心形成并延緩其消失;ABA+1-MCP和GA3+1-MCP處理均實(shí)現(xiàn)了較好地果皮色澤鮮艷度調(diào)控;而IAA+1-MCP處理對(duì)果實(shí)綜合品質(zhì)調(diào)控效果最好。貯藏180 d,IAA+1-MCP處理較好地維持了果皮和果肉的色澤,有效降低了呼吸強(qiáng)度并延緩呼吸峰值的出現(xiàn),果實(shí)的失重率和腐爛率顯著減少,可溶性固形物和VC的損耗有效降低;此外,在延緩果實(shí)軟化方面也表現(xiàn)出積極作用。因此,IAA+1-MCP處理是一種安全、高效地提高糖心蘋(píng)果貯藏品質(zhì)的方法,應(yīng)用前景廣闊。

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