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    核黃素結(jié)合肽的生物活性及結(jié)構(gòu)表征

    2021-06-03 02:38:26陰宏婕鞠化鵬鐘利敏林松毅
    食品科學(xué) 2021年9期
    關(guān)鍵詞:核黃素殘基波長

    陰宏婕,鞠化鵬,鐘利敏,孫 娜,林松毅,*

    (1.大連工業(yè)大學(xué)食品學(xué)院,國家海洋食品工程技術(shù)研究中心,遼寧 大連 116034;2.贛州市全標(biāo)生物科技有限公司,江西 贛州 341100)

    核黃素,即VB2,是一種水溶性維生素。它在生物氧化還原反應(yīng)、細(xì)胞功能和生長發(fā)育發(fā)面發(fā)揮很重要的作用。核黃素是黃素腺嘌呤二核苷酸和黃素單核苷酸的前體物質(zhì)[1-2]。這兩種物質(zhì)是核黃素主要的生物活性形式,也是合成還原酶、氧化酶和脫氫酶的主要形式[3]。人體自身不能合成核黃素,必須通過小腸從飲食中獲取[4]。核黃素缺乏在年輕和老年人群中普遍存在,甚至在發(fā)達(dá)國家也是如此[5]。核黃素的缺乏會引起很多人體的不良反應(yīng)和疾病,如生長遲緩、貧血、皮膚損傷、腎臟損害和神經(jīng)退行性病變[6]。

    核黃素結(jié)合蛋白作為黃素-蛋白相互作用的模型已被研究多年。Rhodes等[7]最先從雞蛋清中發(fā)現(xiàn)核黃素結(jié)合蛋白。之后研究者相繼在原核生物和真菌中發(fā)現(xiàn)核黃素結(jié)合蛋白[8-9]。有研究報(bào)道稱,核黃素在人體內(nèi)通過核黃素轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白(human riboflavin transporter,hRFVT)1、hRFVT-2和hRFVT-3被腸道吸收[10-12]。近年來,核黃素與蛋白之間的相互作用也得到進(jìn)一步研究。Zhao Hongwei等[13]的研究表明,核黃素可以與人血清白蛋白和牛血清白蛋白結(jié)合,其結(jié)合位點(diǎn)為色氨酸殘基;Sengupta等[14]利用穩(wěn)態(tài)熒光實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)核黃素與人血清白蛋白的色氨酸214殘基結(jié)合。然而,關(guān)于核黃素與肽之間相互作用的研究尚鮮見報(bào)道。

    核黃素可與蛋白多肽鏈中的色氨酸發(fā)生相互作用而結(jié)合,且色氨酸具有抗氧化能力,可以提高多肽清除自由基的能力[15]。本課題組前期研究通過酶解、Sephadex凝膠G-25過濾柱層析法和高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法從分子質(zhì)量3~10 kDa的松仁粕蛋白中提取并純化得到一種新型松子肽Ac-QWFCT,該新型松子肽具有良好的抗氧化活性[16]。本實(shí)驗(yàn)采用松子肽Ac-QWFCT與核黃素相互作用制備核黃素結(jié)合肽。用掃描電子顯微鏡觀察核黃素結(jié)合肽的微觀結(jié)構(gòu);基于RAW264.7細(xì)胞研究肽Ac-QWFCT、核黃素以及核黃素結(jié)合肽對巨噬細(xì)胞的細(xì)胞活性、中性紅吞噬率和NO釋放率的影響;通過測定1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH)自由基和2,2’-聯(lián)氮雙(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)(2,2’-azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid),ABTS)陽離子自由基清除率評價核黃素結(jié)合肽抗氧化活性;利用熒光光譜、傅里葉變換紅外光譜和核磁共振氫譜研究肽Ac-QWFCT與核黃素的相互 作用;通過翻轉(zhuǎn)腸囊法研究核黃素結(jié)合肽在大鼠腸道的吸收特性。本研究可為新型VB2補(bǔ)充劑的開發(fā)提供理論參考和科學(xué)依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 動物、材料與試劑

    小鼠巨噬細(xì)胞RAW264.7由中國科學(xué)院上海細(xì)胞庫提供;Wistar雄性大鼠(體質(zhì)量180~220 g;生產(chǎn)許可證號:SCXK(遼)2020-0001)購于遼寧長生生物科技有限公司;實(shí)驗(yàn)前于大連工業(yè)大學(xué)動物實(shí)驗(yàn)室(使用許可證號:SYXK(遼)2017-0005)適應(yīng)性喂養(yǎng)1 周。

    肽Ac-QWFCT 合肥賽曼諾生物科技有限公司;核黃素、DPPH、ABTS、噻唑藍(lán)(3-(4,5-dimethyl-2-thiazol-2-yl)-2,5-diphenyl-2H-tetrazolium bromide,MTT)、二甲基亞砜、重水(純度99.8%) 美國Sigma公司;DMEM細(xì)胞培養(yǎng)液、胎牛血清、青鏈霉素混合液、L-谷氨酰胺、磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline,PBS) 美國Gibco公司;中性紅檢測試劑盒、NO檢測試劑盒 上海碧云天生物技術(shù)有限公司;甲醇 北京化工廠;乙腈、甲酸 美國Fisher公司;溴化鉀 天津光復(fù)化學(xué)試劑廠。

    1.2 儀器與設(shè)備

    JSM-7800F場發(fā)射掃描電子顯微鏡 日本電子株式會社;Synergy HT多功能酶標(biāo)儀 美國博騰儀器有限公司;AVANCE III 400 MHz型核磁共振波譜儀 德國 Bruker公司;IR Prestige-21傅里葉變換紅外光譜儀 日本島津公司;ACQUITY UPLC H-Class PLUS超高效液相色譜儀 美國Waters公司;BT125D電子天平 賽多利斯科學(xué)儀器(北京)有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1 核黃素結(jié)合肽的制備

    稱取一定量的肽Ac-QWFCT與核黃素,溶解于蒸餾水中。將肽溶液與核黃素溶液按照物質(zhì)的量比10∶1混合。配制的混合溶液在室溫下避光磁力攪拌3 h。樣品經(jīng)真空冷凍干燥成粉末,放置在-80 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.3.2 掃描電子顯微鏡觀察微觀結(jié)構(gòu)

    參照J(rèn)in Yan等[17]的方法,利用掃描電子顯微鏡觀察肽Ac-QWFCT、核黃素和核黃素結(jié)合肽的微觀結(jié)構(gòu)。 將10 μL樣品溶液滴加在矩形銅塊上的圓形凹槽內(nèi)。將銅塊浸入液氮中預(yù)冷抽真空,然后將樣品置于15 mA電流下鍍金90 s。最后將樣品置于5 kV加速器電位下拍照。

    1.3.3 免疫活性檢測

    1.3.3.1 RAW264.7細(xì)胞活性檢測

    細(xì)胞處理:參照Yuan Qingxia等[18]的方法,將指數(shù)生長期RAW264.7細(xì)胞接種于96 孔板中,細(xì)胞密度2×105個/mL,每孔接種100 μL。細(xì)胞在37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h后,棄掉培養(yǎng)液,分別加入終質(zhì)量濃度為12.5、25、50 μg/mL的肽Ac-QWFCT、核黃素和核黃素結(jié)合肽溶液;以不含樣品溶液的培養(yǎng)基作為空白對照,加入含終質(zhì)量濃度25 μg/mL脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)的培養(yǎng)基作為陽性對照。

    在培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h后,加入20 μL 5 mg/mL MTT溶液,繼續(xù)培養(yǎng)4 h,棄掉培養(yǎng)基,用PBS清洗2 次,加入150 μL二甲基亞砜。室溫放置10 min后用酶標(biāo)儀于490 nm波長處測定溶液吸光度。細(xì)胞存活率按式(1)計(jì)算。

    式中:A樣品為樣品組溶液A490nm;A對照為空白對照組溶液A490nm。

    1.3.3.2 RAW264.7細(xì)胞中性紅吞噬率和NO釋放率測定

    中性紅吞噬率:細(xì)胞處理方法同1.3.3.1節(jié),在培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h后,吸取50 μL上清液備用,用PBS清洗3 次,向每孔加入100 μL質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.075%的中性紅溶液,培養(yǎng)4 min。棄掉中性紅溶液,用PBS清洗2 次,再向每孔加入100 μL細(xì)胞裂解液(1 mol/L無水乙醇-乙酸,1∶1,V/V),室溫下裂解30 min。用酶標(biāo)儀于540 nm波長處測定溶液吸光度。中性紅吞噬率按式(2)計(jì)算。

    式中:A樣品為樣品組溶液A540nm;A對照為空白對照組溶液A540nm。

    NO釋放率:細(xì)胞處理方法同1.3.3.1節(jié),在培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h后,吸取50 μL細(xì)胞上清液,按照NO檢測試劑盒說明書操作步驟,每孔分別加入50 μL Griess I試劑和50 μL Griess II試劑。用酶標(biāo)儀于540 nm波長處測定溶液吸光度。以溶液吸光度為縱坐標(biāo),NO濃度為橫坐標(biāo)繪制得到標(biāo)準(zhǔn)曲線:Y=0.0128X+0.0426(R2=0.9995)。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算細(xì)胞內(nèi)NO濃度。

    1.3.4 抗氧化活性檢測

    DPPH自由基清除率測定:參照Yang Ruiwen等[16]的方法,將一定質(zhì)量濃度的樣品溶液、甲醇溶液和DPPH-甲 醇溶液各取100 μL,加入96 孔板中,空白組用甲醇代替樣品溶液。室溫下避光30 min后,用酶標(biāo)儀于517 nm波長處測定反應(yīng)體系溶液吸光度。DPPH自由基清除率按 式(3)計(jì)算。

    式中:A樣品為樣品組反應(yīng)體系溶液517 nm波長處吸光度;A空白為空白組反應(yīng)體系溶液517 nm波長處吸光度。

    ABTS陽離子自由基清除率測定:參照Liang Rong等[19]的方法,將ABTS用蒸餾水配制成濃度7 mmol/L的溶液,室溫下避光放置12~16 h。用蒸餾水稀釋ABTS溶液直至其在734 nm波長處的吸光度為0.70±0.02。將50 μL一定質(zhì)量濃度的樣品溶液和150 μL稀釋后的ABTS溶液加入96 孔板中,室溫下避光反應(yīng)60 min。用酶標(biāo)儀于734 nm波長處測定反應(yīng)體系溶液吸光度。以相同體積分?jǐn)?shù)95%乙醇溶液替代樣品溶液為空白組。ABTS陽離子自由基清除率按式(4)計(jì)算。

    式中:A樣品為樣品組反應(yīng)體系溶液734 nm波長處吸光度;A空白為空白組反應(yīng)體系溶液734 nm波長處吸光度。

    1.3.5 熒光光譜測定

    參照Duurkens等[20]描述的實(shí)驗(yàn)方法,將3 mL樣品溶液置于1 cm四通石英比色皿中,在激發(fā)波長280 nm處測定300~450 nm波長范圍內(nèi)的發(fā)射光譜。所有實(shí)驗(yàn)均在室溫下進(jìn)行。激發(fā)和發(fā)射光譜狹縫寬度均為5 nm。

    1.3.6 傅里葉變換紅外光譜測定

    采用Sun Na等[21]的方法,取200 mg干燥后的溴化鉀(130 ℃下干燥8 h以上)和2 mg樣品在研缽中研磨成均勻粉末,壓成薄片,進(jìn)行傅里葉變換紅外光譜測定。波數(shù)掃描范圍4000~400 cm-1,分辨率4 cm-1。

    1.3.7 核磁共振氫譜分析

    參照Xing Jie等[22]的方法,將5 mg核黃素、肽Ac-QWFCT 和核黃素結(jié)合肽粉末溶解在500 μL重水中,將不同樣品溶液置于5 mm核磁管中。檢測探頭為BBFO探頭(5 mm),脈沖寬度13 μs、抽樣延遲時間6 s、采樣頻率32。

    1.3.8 大鼠外翻腸囊研究樣品吸收特性

    將Wistar雄性大鼠適應(yīng)性喂養(yǎng)1 周后進(jìn)行大鼠外翻腸囊研究。參照Wang Liying等[23]的方法,大鼠禁食12~18 h后,腹腔注射2 mL巴比妥鈉麻醉。切開腹部,迅速收集小腸并放置于冰Kreb-Ringer緩沖液中,用細(xì)玻璃棒將腸腔翻轉(zhuǎn),用Kreb-Ringer緩沖液沖洗腸內(nèi)容物。用絲線將一端系緊,從另一端灌入1 mL Kreb-Ringer緩沖液。將腸囊置于7 mL、37 ℃的核黃素、肽Ac-QWFCT以及核黃素結(jié)合肽溶液中,溶液中通入95% O2和5% CO2。2 h后從漿膜側(cè)收集樣液,用0.22 μm濾膜過濾,進(jìn)行超高效液相色譜分析。

    色譜條件:色譜柱:ACQUITY UPLC BEH C18柱(2.1 mm×50 mm,1.7 μm);流動相A:體積分?jǐn)?shù)0.1%甲酸-水溶液;流動相B:純乙腈;柱溫30 ℃;檢測波長220 nm;進(jìn)樣體積5 μL;流速0.3 mL/min。洗脫條件:0 min,95%流動相A、5%流動相B;3.5 min,25%流動相A、75%流動相B。以核黃素標(biāo)準(zhǔn)品作標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算漿膜側(cè)樣液核黃素濃度。

    1.4 數(shù)據(jù)處理與分析

    所得結(jié)果用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示,采用Origin 8.0軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理和作圖,采用SPSS Statistics 20軟件中最小顯著性差異法進(jìn)行差異顯著性分析,P<0.05表示差異顯著。利用MestReCv 4.9.9.6軟件分析采集到的核磁圖譜。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 核黃素結(jié)合肽的微觀形態(tài)特征

    圖 1 掃描電子顯微鏡觀察核黃素(A)、肽Ac-QWFCT(B) 和核黃素結(jié)合肽(C)的微觀結(jié)構(gòu)(×5000)Fig. 1 Microstructures of riboflavin (A), peptide Ac-QWFCT (B) and riboflavin-binding peptide (C) observed by scanning electron microscope (× 5000)

    由圖1可知,核黃素分子呈現(xiàn)大小不均一的顆粒狀分布(圖1A),肽Ac-QWFCT分子在微觀下呈現(xiàn)連續(xù)均勻的網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)(圖1B),肽-核黃素復(fù)合物呈現(xiàn)不規(guī)則的絮狀分布(圖1C)。掃描電子顯微鏡圖像顯示,肽與核黃素相互作用后,微觀結(jié)構(gòu)發(fā)生了明顯的變化,表明生成了核黃素結(jié)合肽。

    2.2 核黃素結(jié)合肽對RAW264.7細(xì)胞免疫活性的影響

    圖 2 核黃素、肽Ac-QWFCT和核黃素結(jié)合肽對RAW264.7細(xì)胞活力(A)、中性紅吞噬率(B)和NO釋放率(C)的影響Fig. 2 Effect of riboflavin, peptide Ac-QWFCT and riboflavin-binding peptide on cell viability (A), phagocytosis (B) and production of NO (C) in RAW264.7 cells

    采用MTT法檢測核黃素、肽Ac-QWFCT和核黃素結(jié)合肽對RAW264.7細(xì)胞是否具有細(xì)胞毒性,結(jié)果如圖2A所示。在質(zhì)量濃度12.5~50 μg/mL范圍內(nèi),3 種樣品對RAW264.7細(xì)胞均不具有細(xì)胞毒性。因此可以選擇12.5、25、50 μg/mL這3 種質(zhì)量濃度進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

    巨噬細(xì)胞的吞噬作用是免疫反應(yīng)中的主要作用[24],吞噬率的增加是巨噬細(xì)胞活化最主要的特征之一[25]。采用中性紅法測定RAW264.7細(xì)胞的吞噬作用,結(jié)果如 圖2B所示。與空白對照組相比,核黃素、肽Ac-QWFCT和核黃素結(jié)合肽處理后,RAW264.7細(xì)胞的吞噬能力明顯增強(qiáng),但明顯低于陽性對照(25 μg/mL LPS)組。核黃素結(jié)合肽處理組RAW264.7細(xì)胞吞噬能力明顯高于核黃素與肽Ac-QWFCT處理組。此外,核黃素結(jié)合肽在質(zhì)量濃度25 μg/mL時,細(xì)胞中性紅吞噬率達(dá)到最大, 為(47.53±1.72)%。結(jié)果表明,核黃素、肽Ac-QWFCT和核黃素結(jié)合肽均可以增強(qiáng)RAW264.7細(xì)胞的吞噬能力,且核黃素結(jié)合肽表現(xiàn)出更好的活性。

    NO是一種重要的信號傳導(dǎo)介質(zhì),具有廣泛的免疫學(xué)意義。NO參與一系列生理和病理代謝,影響巨噬細(xì)胞內(nèi)其他細(xì)胞因子的分泌,在活化巨噬細(xì)胞的免疫保護(hù)和調(diào)節(jié)中發(fā)揮作用[26]。由圖2C可知,在質(zhì)量濃度為12.5 μg/mL 和25 μg/mL時,3 個處理組巨噬細(xì)胞中的NO濃度均高于空白對照組,說明核黃素、肽Ac-QWFCT和核黃素結(jié)合肽可以促進(jìn)RAW264.7細(xì)胞中NO的產(chǎn)生;而當(dāng)質(zhì)量濃度為50 μg/mL時,核黃素處理組細(xì)胞中NO濃度低于空白對照組。所有樣品處理組的NO濃度均低于陽性對照(25 μg/mL LPS)組。在實(shí)驗(yàn)所選質(zhì)量濃度范圍內(nèi),核黃素結(jié)合肽處理組細(xì)胞內(nèi)NO濃度均顯著高于核黃素和肽Ac-QWFCT組(P<0.05),且在質(zhì)量濃度25 μg/mL時,NO濃度達(dá)到最大,為(40.03±0.46)μmol/L。綜上所述,相比于核黃素與肽Ac-QWFCT,核黃素結(jié)合肽可以更有效地提高RAW264.7細(xì)胞的NO釋放量。

    2.3 核黃素結(jié)合肽的抗氧化能力分析結(jié)果

    圖 3 核黃素、肽Ac-QWFCT和核黃素結(jié)合肽對DPPH自由基(A) 和ABTS陽離子自由基(B)的清除能力Fig. 3 DPPH radical (A) and ABTS cation radical (B) scavenging capacity of riboflavin, peptide Ac-QWFCT and riboflavin-binding peptide

    肽Ac-QWFCT是由谷氨酰胺、色氨酸、苯丙氨酸、半胱氨酸和蘇氨酸組成。苯丙氨酸、組氨酸、色氨酸和酪氨酸等芳香族氨基酸具有提高多肽清除自由基的能力[15]; 半胱氨酸在還原反應(yīng)中可以提供巰基基團(tuán),也具有抗氧化活性[27-28]。由圖3A可知,在質(zhì)量濃度0.1~1.0 mg/mL范圍內(nèi),核黃素的DPPH自由基清除能力沒有明顯變化,而肽Ac-QWFCT、核黃素結(jié)合肽的DPPH自由基清除能力隨質(zhì)量濃度的增大而增強(qiáng);此外,在相同質(zhì)量濃度下,核黃素結(jié)合肽的DPPH自由基清除能力均顯著高于核黃素與肽Ac-QWFCT(P<0.05)。由圖3B可知,在質(zhì)量濃度0.1~1.0 mg/mL范圍內(nèi),核黃素的ABTS陽離子自由基清除能力均顯著低于肽Ac-QWFCT和核黃素結(jié)合肽,且不隨質(zhì)量濃度的改變而發(fā)生明顯變化;在質(zhì)量濃度為0.1 mg/mL 和0.2 mg/mL時,核黃素結(jié)合肽的ABTS陽離子自由基清除能力顯著高于肽Ac-QWFCT(P<0.05);在質(zhì)量濃度0.5 mg/mL和1 mg/mL時,肽Ac-QWFCT與核黃素結(jié)合肽的ABTS陽離子自由基清除能力沒有顯著差異(P>0.05)。以上結(jié)果表明,肽Ac-QWFCT與核黃素的結(jié)合明顯地提高了二者的DPPH自由基清除能力,而在低質(zhì)量濃度下,核黃素結(jié)合肽表現(xiàn)出更高的ABTS陽離子自由基清除能力。

    2.4 核黃素與肽Ac-QWFCT相互作用的結(jié)構(gòu)分析結(jié)果

    熒光發(fā)射光譜是研究小分子與生物大分子相互作用的一種重要方法[29],因此,采用熒光光譜分析核黃素與肽Ac-QWFCT相互作用后引起的肽的結(jié)構(gòu)變化。圖4為在激發(fā)波長280 nm、發(fā)射波長300~450 nm處肽Ac-QWFCT與核黃素相互作用的熒光光譜圖。肽Ac-QWFCT在發(fā)射波長358 nm處熒光強(qiáng)度達(dá)到最大(51.46),而核黃素 結(jié)合肽在發(fā)射波長357 nm處熒光強(qiáng)度達(dá)到最大(44.15),表明核黃素的加入使肽Ac-QWFCT發(fā)生了熒光猝滅,肽Ac-QWFCT與核黃素分子之間存在相互作用。這一現(xiàn)象表明肽-核黃素復(fù)合物的形成,并導(dǎo)致芳香族熒光團(tuán)的熒光猝滅。Bangaru等[30]利用熒光光譜法研究核黃素和雞核黃素轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白之間的相互作用,發(fā)現(xiàn)核黃素的絡(luò)合可以導(dǎo)致蛋白發(fā)生熒光猝滅,這與本實(shí)驗(yàn)結(jié)果一致。

    圖 4 肽Ac-QWFCT與核黃素結(jié)合肽的熒光光譜圖Fig. 4 Fluorescence spectra of peptide Ac-QWFCT and riboflavinbinding peptide

    圖 5 肽Ac-QWFCT與核黃素結(jié)合肽的傅里葉變換紅外光譜圖Fig. 5 FTIR spectra of peptide Ac-QWFCT and riboflavin-binding peptide

    由圖5可知,肽Ac-QWFCT與肽-核黃素復(fù)合物的傅里葉變換紅外光譜存在明顯差異。在3296 cm-1處的吸收峰歸屬于O-H的伸縮振動[31],核黃素的加入使該峰的位置藍(lán)移至3352 cm-1處。在肽Ac-QWFCT傅里葉變換紅外光譜中,1676 cm-1處的吸收峰歸屬于酰胺I帶(C=O)的伸縮振動,加入核黃素后,1676 cm-1處吸收峰消失。1572 cm-1處的吸收峰歸屬于酰胺II帶(C-N和N-H)的伸縮振動。傅里葉變換紅外光譜吸收峰在酰胺I帶和酰胺II帶的變化可以反映肽二級結(jié)構(gòu)的變化[32]。706 cm-1和636 cm-1處的吸收峰主要是苯環(huán)中C-H的振動吸收引起[33], 表明核黃素與肽Ac-QWFCT的結(jié)合使肽上芳香環(huán)所處微環(huán)境發(fā)生改變。研究表明,生物活性肽二級結(jié)構(gòu)的改變與其抗氧化活性之間存在密切聯(lián)系[16]。二級結(jié)構(gòu)的改變可能會導(dǎo)致多肽鏈上芳香族氨基酸更多地暴露于溶劑分子中,暴露更多的活性位點(diǎn)從而增強(qiáng)了其抗氧化活性。核黃素與肽Ac-QWFCT結(jié)合引起的二級結(jié)構(gòu)變化可能導(dǎo)致更多芳香族殘基在溶液中暴露,從而導(dǎo)致自由基清除能力和抗氧化活性的增強(qiáng)。此外,二級結(jié)構(gòu)的改變也可能會影響多肽的免疫調(diào)節(jié)活性。芳香族殘基的暴露會對多肽的疏水性造成影響,而有報(bào)道稱疏水性與免疫調(diào)節(jié)活性相關(guān),可能會增強(qiáng)肽與細(xì)胞膜的相互作用,從而改善免疫調(diào)節(jié)[34]。因此,核黃素與肽Ac-QWFCT結(jié)合后,疏水氨基酸色氨酸和苯丙氨酸可能在提高核黃素結(jié)合肽的免疫調(diào)節(jié)活性中發(fā)揮重要作用。

    本研究進(jìn)一步采用核磁共振技術(shù)研究肽Ac-QWFCT與核黃素相互作用后化學(xué)基團(tuán)的變化,結(jié)果如圖6所示。在低場區(qū)域,位于苯丙氨酸芳香環(huán)上的氫核磁峰(δ7.00~7.30)在與核黃素發(fā)生相互作用后展寬,位移至δ7.20,同時伴隨峰強(qiáng)度的增強(qiáng)。而在色氨酸殘基上,位于緊鄰吡啶環(huán)的苯環(huán)上的氫核磁峰(δ7.35~7.53)消失。這可能是由于肽-核黃素復(fù)合物的形成使肽 Ac-QWFCT上的苯環(huán)處于疏水環(huán)境中。在高場和中場區(qū)域核磁峰的變化尤為明顯。在δ3.50~3.80之間峰強(qiáng)度增加但化學(xué)位移沒有發(fā)生改變,這一區(qū)域的峰代表了肽氨基酸側(cè)鏈上的亞甲基。而位于δ1.82處代表乙?;霞谆姆鍙?qiáng)度降低,峰發(fā)生展寬并從δ1.80向低場位移至δ1.88處。此外,在δ0.90~1.15之間,代表蘇氨酸殘基上甲基的峰合并為一個峰,并發(fā)生明顯地展寬和強(qiáng)度的增加。這些結(jié)果表明,肽Ac-QWFCT上的芳香族氨基酸殘基可能通過疏水相互作用與核黃素發(fā)生絡(luò)合。在晶體結(jié)構(gòu)中,核黃素的異氧嘧啶部分與肽Ac-QWFCT中色氨酸、苯丙氨酸殘基具有疏水性。在核黃素與肽Ac-QWFCT相互作用時,核黃素的異氧嘧啶部分堆積在色氨酸 和苯丙氨酸殘基側(cè)鏈的平行芳香環(huán)之間,通過疏水相互作用與肽結(jié)合。熒光光譜中肽Ac-QWFCT的熒光猝滅也可能是異氧嗪環(huán)和芳香族殘基的堆積所致。

    圖 6 肽Ac-QWFCT的結(jié)構(gòu)式及核黃素、肽Ac-QWFCT和核黃素結(jié)合肽的核磁共振氫譜Fig. 6 Structural formula of peptide Ac-QWFCT and 1H-NMR spectra of riboflavin, peptide Ac-QWFCT, and riboflavin-binding peptide

    圖 7 肽Ac-QWFCT(A)、肽Ac-QWFCT-核黃素(B)的同核化學(xué)位移相關(guān)譜Fig. 7 1H-1H COSY spectra of peptide Ac-QWFCT(A) and riboflavin-binding peptide (B)

    為進(jìn)一步研究核黃素與肽Ac-QWFCT的反應(yīng)機(jī)制,本研究測定肽Ac-QWFCT、核黃素及其復(fù)合物的同核

    化學(xué)位移相關(guān)譜。由圖7可知,與肽Ac-QWFCT相比,肽-核黃素復(fù)合物的同核化學(xué)位移相關(guān)譜中出現(xiàn)了4 處關(guān)聯(lián)信號的變化,表明苯環(huán)的關(guān)聯(lián)信號發(fā)生展寬,此結(jié)果揭示核黃素并沒有引起肽中氨基酸側(cè)鏈上苯環(huán)發(fā)生結(jié)構(gòu)變化,而是使苯環(huán)周圍的微環(huán)境發(fā)生變化。這也說明核黃素通過疏水相互作用與肽Ac-QWFCT發(fā)生結(jié)合。此外,代表亞甲基((4.36,2.72)、(4.39,2.72)、(4.48,2.72)和(4.52,3.02))和甲基(4.20,1.04)的相關(guān)峰消失,這可能是由于核黃素與肽Ac-QWFCT結(jié)合后使芳香環(huán)發(fā)生堆積,從而使肽分子內(nèi)形成了氫鍵。由以上結(jié)果推測,核黃素是與肽Ac-QWFCT上帶有芳香環(huán)的色氨酸殘基和苯丙氨酸殘基相互作用。

    2.5 翻轉(zhuǎn)腸囊法分析核黃素結(jié)合肽在大鼠小腸內(nèi)的吸收行為

    圖 8 核黃素與核黃素結(jié)合肽在大鼠翻轉(zhuǎn)腸囊中的核黃素吸收量Fig. 8 Absorption of riboflavin and riboflavin-binding peptide in the rat everted gut sac

    外翻腸囊技術(shù)被廣泛用于預(yù)測人體藥物吸收[35]。通過外翻腸囊后,測定漿膜側(cè)核黃素濃度,由圖8可知,單獨(dú)的核黃素的吸收濃度為(0.07±0.01)μmol/mL,而核黃素結(jié)合肽的核黃素的吸收濃度為(0.12±0.01)μmol/mL, 差異顯著(P<0.05)。結(jié)果表明,核黃素與肽 Ac-QWFCT的結(jié)合能夠促進(jìn)小腸對核黃素的吸收。然而,小腸對核黃素結(jié)合肽的吸收機(jī)制需要進(jìn)一步研究。

    3 結(jié) 論

    本實(shí)驗(yàn)以松子肽Ac-QWFCT和核黃素為原料,制備核黃素結(jié)合肽,并對其微觀結(jié)構(gòu)、生物活性、結(jié)構(gòu)特征以及吸收特性進(jìn)行研究。結(jié)果表明,與核黃素結(jié)合后,肽Ac-QWFCT的微觀結(jié)構(gòu)由網(wǎng)狀變?yōu)樾鯛?。在相同質(zhì)量濃度下,核黃素結(jié)合肽的免疫活性明顯高于肽 Ac-QWFCT和核黃素;而在低質(zhì)量濃度下,核黃素結(jié)合肽的抗氧化活性明顯高于肽Ac-QWFCT和核黃素。與核黃素的結(jié)合會引起肽Ac-QWFCT發(fā)生熒光猝滅。肽 Ac-QWFCT上的色氨酸和苯丙氨酸殘基通過疏水相互作用與核黃素進(jìn)行結(jié)合。除此之外,相比于核黃素,核黃素結(jié)合肽可以促進(jìn)核黃素在大鼠腸道內(nèi)的吸收。本研究結(jié)果可為新型VB2補(bǔ)充劑的開發(fā)提供理論參考。

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