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    羥基紅花黃色素A對(duì)高糖誘導(dǎo)RAW264.7巨噬細(xì)胞M 1/M 2表型轉(zhuǎn)化的影響作用①

    2021-05-26 06:13:40趙笑蕓申達(dá)月張曦瀾李元平
    中國(guó)免疫學(xué)雜志 2021年6期
    關(guān)鍵詞:高糖紅花極化

    鄭 丹 趙笑蕓 申達(dá)月 張曦瀾 李元平 廖 暉

    (山西醫(yī)科大學(xué)附屬人民醫(yī)院藥學(xué)部,太原030012)

    紅花具有活血通經(jīng)、祛瘀止痛的功效,羥基紅花黃色素A(hydroxysafflor yellow A,HSYA)是紅花的主要活性成分,在抗炎、抗腫瘤、抗氧化等方面發(fā)揮重要的藥理作用[1-2]。課題組前期研究發(fā)現(xiàn),含有HSYA的紅花提取物能夠抑制脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)誘導(dǎo)的RAW264.7巨噬細(xì)胞產(chǎn)生一氧化氮(nitric oxide,NO)及IL-1β[3]。

    巨噬細(xì)胞是重要的免疫細(xì)胞,在機(jī)體內(nèi)發(fā)揮防御、監(jiān)視、調(diào)節(jié)、提呈抗原及清除病原體和介導(dǎo)炎癥反應(yīng)的作用。巨噬細(xì)胞在不同情況下可以轉(zhuǎn)化為M1、M2等不同表型,在炎癥反應(yīng)中分別發(fā)揮損傷及保護(hù)的不同作用[4]。在LPS、高糖等的誘導(dǎo)下,巨噬細(xì)胞向M1型轉(zhuǎn)化增加,IL-1β、TNF-α等炎癥因子大量產(chǎn)生,同時(shí)M2型減少[5]。

    本研究利用高糖作用于巨噬細(xì)胞[6],觀察M1型極化的標(biāo)志物TNF-α、誘導(dǎo)型一氧化氮合酶(inducible nitric oxide synthase,iNOS)及M2型極化標(biāo)志物CD206、精氨酸酶-1(arginase-1,Arg-1)蛋白表達(dá)的變化,探究HSYA對(duì)高糖誘導(dǎo)的巨噬細(xì)胞表型轉(zhuǎn)化及NO、IL-1β等炎癥因子的影響作用。

    1 材料與方法

    1.1 材料 小鼠巨噬細(xì)胞系RAW264.7為Absin生物技術(shù)公司(中國(guó)上海)提供。RPMI1640培養(yǎng)基、雙抗(Gibco);胎牛血清(FBS)、SDS-PAGE蛋白上樣緩沖液5×(變性)、Western blot膜再生液、兔抗Arg-1、兔抗iNOS、兔抗CD206、兔抗TNF-α購(gòu)于武漢博士德生物工程有限公司;HSYA購(gòu)于中國(guó)食品藥品檢定研究院;二甲基亞砜(DMSO)、LPS、葡萄糖(D-glucose)、RIPA組織細(xì)胞裂解液、ECL Plus超敏發(fā)光液、BCA蛋白濃度測(cè)定試劑盒、SDS-PAGE凝膠制備試劑盒購(gòu)于北京索萊寶公司;GAPDH,山羊抗兔二抗,山羊抗鼠二抗均購(gòu)于武漢三鷹生物技術(shù)有限公司。

    1.2 方法

    1.2.1 巨噬細(xì)胞培養(yǎng) 小鼠巨噬細(xì)胞系RAW264.7培養(yǎng)于含有10%FBS、100 U/ml青霉素和100μg/ml鏈霉素的RPMI1640完全培養(yǎng)基,置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中貼壁生長(zhǎng)。待細(xì)胞長(zhǎng)到80%~90%時(shí),對(duì)細(xì)胞進(jìn)行傳代分瓶培養(yǎng)。

    1.2.2 確定誘導(dǎo)巨噬細(xì)胞M1型轉(zhuǎn)化的高糖濃度以11.1、25.0、33.3、44.4 mmol/L葡萄糖分別培養(yǎng)巨噬細(xì)胞,其中11.1 mmol/L組為正常葡萄糖對(duì)照組,其余3組為高糖模型組,0.5μg/ml LPS(溶于DMSO溶液)作為模型對(duì)照[3]。各組培養(yǎng)時(shí)間分別為12 h、24 h。收集各組上清液,Griess法測(cè)定上清液中NO的代謝產(chǎn)物亞硝酸鹽(NO2-)含量,篩選出可誘導(dǎo)巨噬細(xì)胞向M1型轉(zhuǎn)化的高糖濃度。

    1.2.3 確定HSYA在高糖中的安全作用濃度 將RAW264.7細(xì)胞按1×104個(gè)/孔接種于96孔板。37℃、5%CO2條件下培養(yǎng)24 h后,棄培養(yǎng)基,重新加入200μl含有不同濃度HSYA的培養(yǎng)基(含33.3 mmol/L葡萄糖),濃度分別為50、100、200、400μmol/L,繼續(xù)培養(yǎng)18 h,棄上清,加入200μl新鮮培養(yǎng)基,再加入20μl CCK-8試劑,37℃孵育后,于酶標(biāo)儀450 nm條件下測(cè)定吸光度(OD)值。根據(jù)以下公式計(jì)算:RAW264.7細(xì)胞生存率(%)=1-(A溶劑對(duì)照-A各樣品)/A溶劑對(duì)照×100%,篩選出HSYA的安全作用濃度。

    1.2.4 Western blot檢 測(cè)TNF-α、iNOS、CD206、Arg-1的蛋白表達(dá) 生長(zhǎng)狀態(tài)良好的細(xì)胞以1×106個(gè)/孔接種于6孔板,培養(yǎng)24 h后,將實(shí)驗(yàn)分為4組,HSYA(100、200μmol/L)加入RAW264.7細(xì)胞作用2 h,再加入葡萄糖,使終濃度為33.3 mmol/L。同時(shí)設(shè)33.3 mmol/L高糖模型組及11.1 mmol/L正常對(duì)照組,24 h后分別收集細(xì)胞及上清液。提取所收取的細(xì)胞蛋白,BCA試劑盒檢測(cè)總蛋白濃度。取50μg待測(cè)蛋白樣品,10%SDS-PAGE分離蛋白,轉(zhuǎn)膜并封閉后,加入TNF-α、iNOS、CD206、Arg-1、GAPDH一抗,4℃孵育過(guò)夜,洗膜,加入二抗于37℃孵育2 h,洗膜,加入ECL顯色液,置于凝膠成像儀中觀察并分析結(jié)果,以GAPDH作為內(nèi)參。

    1.2.5 細(xì)胞上清液IL-1β及NO2-含量的測(cè)定 收集1.2.4中各組細(xì)胞上清液,ELISA試劑盒測(cè)定IL-1β,Griess法測(cè)定NO2-含量。

    1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 采用SPSS21.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,兩兩比較采用獨(dú)立t檢驗(yàn)。數(shù)值資料以±s表示,P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 確定誘導(dǎo)M1型極化的高糖濃度 與DMSO溶劑對(duì)照組相比,LPS作用于巨噬細(xì)胞12 h及24 h后,NO2-含量均顯著升高[(5.9±0.4)μmol/L vs(38.2±1.7)μmol/L,P<0.05,及(6.0±0.6)μmol/L vs(45.0±1.1)μmol/L,P<0.05]。25.0 mmol/L高糖作用于巨噬細(xì)胞12 h與24 h后,NO2-含量與11.1 mmol/L葡萄糖對(duì)照組相比,均未顯著增加。33.3 mmol/L高糖及44.4 mmol/L高糖作用24 h的NO2-含量均顯著高于12 h[33.3 mmol/L:(40.7±2.8)μmol/L vs(17.2±0.9)μmol/L,P<0.05,及44.4 mmol/L:(41.2±3.4)μmol/L vs(23.8±1.0)μmol/L,P<0.05]。33.3 mmol/L高 糖 與44.4 mmol/L高糖作用24 h的NO2-含量無(wú)顯著性差異,因此,最終選擇33.3 mmol/L高糖濃度作用24 h作為誘導(dǎo)RAW264.7細(xì)胞向M1型極化模型建立的最佳條件(表1)。

    2.2 HSYA對(duì)RAW264.7細(xì)胞生存率的影響 與對(duì)照組相比,HSYA濃度在50、100、200、400μmol/L時(shí)的細(xì)胞存活率分別為97.6%、97.8%、98.0%、86.6%,結(jié)果見圖1。HSYA濃度在50~200μmol/L時(shí),對(duì)RAW264.7細(xì)胞的致死率均小于5%,可認(rèn)為以上濃度不會(huì)對(duì)細(xì)胞的生長(zhǎng)產(chǎn)生影響[7]。

    表1 葡萄糖濃度對(duì)RAW264.7細(xì)胞產(chǎn)生NO的影響(±s,n=6)Tab.1 Effect of glucose concentration on NO production in RAW264.7 cells(±s,n=6)

    表1 葡萄糖濃度對(duì)RAW264.7細(xì)胞產(chǎn)生NO的影響(±s,n=6)Tab.1 Effect of glucose concentration on NO production in RAW264.7 cells(±s,n=6)

    Note:1)P<0.05,LPSmodel group vs DMSOcontrol group at 12 h;2)P<0.05,LPS model group vs DMSO control group at 24 h;3)P<0.05,33.3 mmol/L and 44.4 mmol/L high glucose group vs 11.1 mmol/Lcontrol group at 12 h;4)P<0.05,33.3 mmol/L and 44.4 mmol/Lhigh glucosegroup vs11.1 mmol/L control group at 24 h;5)P<0.05,33.3 mmol/Lhigh glucosegroup at 24h vs12h;6)P<0.05,44.4mmol/Lhighglucosegroup at24hvs12h.

    Groups DMSOsolvent control LPSmodel control 11.1 mmol/L glucose control 25.0 mmol/L glucose 33.3 mmol/L glucose 44.4 mmol/L glucose-(μmol/L)12 h 5.9±0.4 38.2±1.71)6.1±1.2 6.7±1.7 17.2±0.93)23.8±1.03)NO2 24 h 6.0±0.6 45.0±1.12)5.9±1.1 6.5±1.0 40.7±2.84)5)41.2±3.44)6)

    圖1 HSYA對(duì)RAW264.7細(xì)胞生存率的影響Fig.1 Effect of HSYA on survival rate of RAW264.7 cells

    2.3 HSYA對(duì)高糖誘導(dǎo)RAW264.7細(xì)胞M1型/M2型分型的影響作用 如圖2所示,與11.1 mmol/L對(duì)照組相比,33.3 mmol/L高糖模型組的TNF-α、iNOS蛋白表達(dá)增加,Arg-1、CD206表達(dá)減少,其中以TNF-α、iNOS及Arg-1的蛋白表達(dá)差異顯著(P<0.05)。與33.3 mmol/L高糖模型組相比,100、200μmol/L的HSYA均可顯著上調(diào)Arg-1蛋白表達(dá)而下調(diào)TNF-α、iNOS蛋白表達(dá)(P<0.05),同時(shí)HSYA增加Arg-1的作用在200μmol/L時(shí)顯著優(yōu)于100μmol/L時(shí)(P<0.05)。

    圖2 HSYA對(duì)高糖誘導(dǎo)RAW 264.7細(xì)胞M1/M 2極化的影響作用Fig.2 Effect of HSYA on M 1/M 2 polarization induced by high glucose in RAW264.7 cells

    表2 HSYA對(duì)高糖誘導(dǎo)RAW 264.7細(xì)胞NO和IL-1β的影響(±s,n=6)Tab.2 Effect of HSYA on production of NO and iIL-1βin RAW 264.7 cells induced by high glucose(±s,n=6)

    表2 HSYA對(duì)高糖誘導(dǎo)RAW 264.7細(xì)胞NO和IL-1β的影響(±s,n=6)Tab.2 Effect of HSYA on production of NO and iIL-1βin RAW 264.7 cells induced by high glucose(±s,n=6)

    Note:1)P<0.05,content of nitrite NO2-at 33.3 mmol/L high glucose model group vs 11.1 mmol/L control group;2)P<0.05,content of NO2-at 100 and 200μmol/L HSYA group vs 33.3 mmol/L high glucose model group;3)P<0.05,content of IL-1βat 33.3 mmol/L high glucose model group vs 11.1 mmol/L control group;4)P<0.05,content of IL-1βat 100 and 200μmol/L HSYA group vs 33.3 mmol/L high glucose model group;5)P<0.05,content of IL-1βat 200μmol/L HSYA group vs 100μmol/LHSYA group.

    -Groups NO2 NOinhibition rate(%)IL-1βinhibition rate(%)11.1 mmol/Lglucosecontrol 33.3 mmol/L glucose model 33.3 mmol/L glucose+100μmol/L HSYA 33.3 mmol/L glucose+200μmol/L HSYA(μmol/L)5.9±1.1 40.7±2.81)28.4±2.52)25.2±1.62)- -- -IL-1β(pg/ml)14.7±0.2 69.4±4.63)35.3±2.94)25.9±1.94)5)61.8±8.6 79.2±3.9 35.4±6.3 44.0±8.9

    2.4 HSYA對(duì)HG誘導(dǎo)RAW264.7細(xì)胞產(chǎn)生NO及IL-1β的影響作用 由表2可知,與11.1 mmol/L組相比,33.3 mmol/L高糖組的NO2-含量由(5.9±1.1)μmol/L增加至(40.7±2.8)μmol/L,IL-1β的含量由(14.7±0.2)pg/ml增加至(69.4±4.6)pg/ml,差異均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。與33.3 mmol/L高糖組相比,HSYA在100、200μmol/L時(shí),均可顯著抑制NO2-及IL-1β產(chǎn)生(P<0.05)。200μmol/L HS-YA抑制NO2-的作用與100μmol/L相比差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,但對(duì)IL-1β的抑制作用差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

    3 討論

    糖尿病(diabetes mellitus,DM)是心腦血管疾病、腎臟疾病等多種慢性病的主要危險(xiǎn)因素。中國(guó)研究者者近期發(fā)表在《新英格蘭醫(yī)學(xué)雜志》和《美國(guó)醫(yī)學(xué)會(huì)雜志》上的研究顯示,我國(guó)成年人DM和DM前期的患病率近年呈不斷攀升趨勢(shì),DM已成為影響我國(guó)居民健康的重大公共衛(wèi)生問(wèn)題之一[8]。中藥在DM的治療中發(fā)揮重要作用,基于755首中藥處方治療DM用藥規(guī)律研究顯示,在DM的治療中,有3大類中藥發(fā)揮重要作用:補(bǔ)虛藥如黃芪,清熱藥如黃連,活血化瘀藥如紅花等[9]。動(dòng)物試驗(yàn)顯示,以四尿嘧啶制作DM模型,口服紅花提取物后,與格列本脲治療組無(wú)著差異,提示紅花在DM治療中具有潛力[10-11]。目前,紅花中的主要藥效物質(zhì)HSYA在治療DM及其并發(fā)癥的研究中取得了一定進(jìn)展,研究認(rèn)為,HSYA治療DM的作用與其抗炎作用相關(guān)[12-13]。

    巨噬細(xì)胞參與的體內(nèi)慢性炎癥是Ⅱ型DM、動(dòng)脈粥樣硬化等代謝性疾病的共同機(jī)制[14]。研究顯示,巨噬細(xì)胞受外界微環(huán)境變化影響,可在疾病的發(fā)生發(fā)展中分別發(fā)揮促炎及抗炎作用。巨噬細(xì)胞功能上的改變與巨噬細(xì)胞極化至不同亞型相關(guān):極化至M1型參與炎癥反應(yīng),而極化至M2型參與抗炎過(guò)程?,F(xiàn)代醫(yī)學(xué)研究認(rèn)為,巨噬細(xì)胞M1/M2型極化失調(diào)是DM等疾病的核心發(fā)病機(jī)制[15]。進(jìn)一步研究HSYA對(duì)高糖誘導(dǎo)的M1/M2型極化失調(diào)的作用,對(duì)HSYA治療DM具有一定的臨床指導(dǎo)意義。

    課題組的前期研究顯示,以0.5μg/ml LPS作用于巨噬細(xì)胞后,NO的大量產(chǎn)生與巨噬細(xì)胞極化至M1型相關(guān)[3]。本研究以LPS為模型對(duì)照,比較巨噬細(xì)胞在25.0、33.3、44.4 mmol/L等不同葡萄糖濃度時(shí)NO代謝產(chǎn)物NO2-的含量。研究結(jié)果顯示,以33.3 mmol/L高糖誘導(dǎo)巨噬細(xì)胞,在NO2-含量顯著增加的同時(shí),M1型極化標(biāo)志物TNF-α、iNOS的蛋白表達(dá)顯著增加,M2型極化標(biāo)志物CD206、Arg-1的蛋白表達(dá)均減少。研究同時(shí)顯示,HSYA具有體外調(diào)整高糖狀態(tài)時(shí)M1/M2型極化失調(diào)的作用,即上調(diào)保護(hù)型的M2型,并下調(diào)損傷型的M1型。

    高血糖可刺激DM模型大鼠的氧自由基大量產(chǎn)生,引起細(xì)胞增殖、凋亡調(diào)控紊亂,DM發(fā)病過(guò)程中iNOS及TNF-α表達(dá)增加,NO產(chǎn)生增多,導(dǎo)致胰島微血管內(nèi)皮細(xì)胞(IMECs)受損;IMECs的損傷也是高血糖條件下促炎細(xì)胞因子IL-1β的來(lái)源[16]。課題組進(jìn)一步的研究顯示,HSYA具有體外減少高糖誘導(dǎo)的NO及IL-1β產(chǎn)生的作用。

    綜上,HSYA具有調(diào)整高糖狀態(tài)時(shí)巨噬細(xì)胞M1/M2型極化失調(diào)、減少NO、IL-1β等炎癥因子生成的作用。有研究顯示,HSYA抑制炎癥反應(yīng)的作用與體內(nèi)的NF-κB信號(hào)通路相關(guān)[17]。課題組將從高糖誘導(dǎo)巨噬細(xì)胞分型,進(jìn)而影響NF-κB信號(hào)通路開展HSYA的相關(guān)體內(nèi)研究。

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