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    生物炭基硫酸鹽還原菌(SRB)對(duì)Cr(Ⅵ)的吸附效應(yīng)及作用機(jī)制

    2021-05-25 06:31:14朱曉麗李雪寇志健王軍強(qiáng)尚小清陳超
    關(guān)鍵詞:菌劑秸稈動(dòng)力學(xué)

    朱曉麗,李雪,寇志健,王軍強(qiáng),,尚小清,,陳超

    (1.西北大學(xué)城市與環(huán)境學(xué)院,西安710127;2.西安金博瑞生態(tài)科技有限公司,西安710065)

    隨著人口增長(zhǎng)和城市化、工業(yè)化進(jìn)程的加速,重金屬廢水導(dǎo)致的污染日趨嚴(yán)重。鉻及其化合物廣泛應(yīng)用于冶金、電鍍、制革、印染等行業(yè),含鉻廢水的不合理排放和鉻渣的隨意堆放,導(dǎo)致水體和土壤中的鉻嚴(yán)重超標(biāo)[1]。鉻在水體中主要以Cr(Ⅲ)和Cr(Ⅵ)兩種形態(tài)存在。其中,Cr(Ⅵ)是一種急性致癌物質(zhì),遷移性和毒性遠(yuǎn)高于Cr(Ⅲ)。對(duì)人體而言,Cr(Ⅵ)的毒性比Cr(Ⅲ)高100倍,其危害主要包括皮膚及呼吸系統(tǒng)潰瘍、引起腦膜炎和肺癌等[2-3]。

    美國(guó)環(huán)保署、世界衛(wèi)生組織《飲用水水質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)》和我國(guó)《飲用凈水水質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)》都規(guī)定飲用水中Cr(Ⅵ)含量標(biāo)準(zhǔn)為≤0.05 mg·L-1,我國(guó)水質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)中規(guī)定地表水中Cr(Ⅵ)濃度≤0.15 mg·L-1,排放廢水中Cr(Ⅵ)和總鉻最大允許排放濃度分別為0.05 mg·L-1和0.15 mg·L-1[4]。2009 年湖南婁底雙峰縣的鉻污染飲用井水事件和2011年云南曲靖癌癥村鉻污染水體等事件,嚴(yán)重影響了當(dāng)?shù)氐娘嬘盟踩?。因此,去除水中的鉻,尤其是Cr(Ⅵ),對(duì)保護(hù)公眾健康和生態(tài)環(huán)境具有重要意義。

    目前,國(guó)內(nèi)外對(duì)于含鉻廢水的處理方法主要包括物理法、化學(xué)法、物理化學(xué)法及生物法。生物固定化方法以其穩(wěn)定性好、易于實(shí)現(xiàn)連續(xù)化、反應(yīng)性好和處理效率高等優(yōu)點(diǎn),得到國(guó)內(nèi)外學(xué)者的廣泛關(guān)注[5]。微生物能夠使水中高毒、易溶于水的Cr(Ⅵ)還原成低毒、易于沉淀的Cr(OH)3。朱文杰[6]在2008年,分離篩選出一株Cr(Ⅵ)還原白色桿菌(Leucobacter sp.CRB1),其生長(zhǎng)細(xì)胞對(duì)Cr(Ⅵ)在38 h內(nèi)的最大還原量為1 820 mg·L-1。韓懷芬等[7]將土壤桿菌、假單胞菌和芽孢桿菌等5 種能夠還原Cr(Ⅵ)的細(xì)菌混合后對(duì)Cr(Ⅵ)的還原率最高達(dá)100%。

    硫酸鹽還原菌(Sulfate reducing bacteria,SRB)是一類能夠?qū)⒘蛩猁}或者其他氧化態(tài)硫化物還原為H2S 的微生物,屬于兼性厭氧細(xì)菌,廣泛存在但不局限于缺氧環(huán)境中,可通過代謝產(chǎn)物S2-與重金屬反應(yīng),并將重金屬轉(zhuǎn)化為穩(wěn)定的金屬硫化物[8]。近年來,利用不同載體固定化微生物處理重金屬污染已經(jīng)成為研究熱點(diǎn)之一。生物炭能夠通過離子交換、靜電吸附、表面沉淀和絡(luò)合作用鈍化重金屬,而且其豐富的多孔結(jié)構(gòu)能夠?qū)ξ⑸锷L(zhǎng)起到保護(hù)作用,為接種菌株提供良好的生存環(huán)境,有利于接種的微生物更好地生長(zhǎng),使其在復(fù)雜環(huán)境中依然能穩(wěn)定發(fā)揮高效的性能[9]。因此,采用生物炭作為微生物生長(zhǎng)的載體受到廣泛關(guān)注。張杰等[10]研究了生物炭固定化解磷菌對(duì)鉛的吸附特性,發(fā)現(xiàn)生物炭固定化解磷菌對(duì)鉛的最高吸附量可達(dá)89.39 mg·g-1。李猛等[1]采用海藻酸鈉包埋SRB 處理低濃度含鉻廢水,當(dāng)水中鉻含量為1 mg·L-1時(shí),其去除率為92%。生物炭固定化SRB 作為一種綠色經(jīng)濟(jì)材料,有一定的應(yīng)用前景。

    本研究以小麥、玉米、水稻秸稈生物炭為載體,采用具有耐受鉻生長(zhǎng)能力的SRB 作為接種菌株制備固定化菌劑,研究不同生物炭制備的固定化菌劑對(duì)Cr(Ⅵ)的吸附效應(yīng),篩選出最優(yōu)組合,并通過對(duì)其理化性質(zhì)、吸附效應(yīng)影響因素、吸附動(dòng)力學(xué)及等溫吸附模型的分析,探討生物炭基SRB 對(duì)Cr(Ⅵ)的吸附過程和機(jī)理,以期為鉻污染廢水及土壤修復(fù)提供一定的實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)材料

    1.1.1 供試菌株

    以實(shí)驗(yàn)室從陜西某鉻渣污染植物根際土中篩選的1株高效硫酸鹽還原菌SRB6-2-1為固定化供試菌種,該菌株能夠耐受600 mg·L-1的Cr(Ⅵ)生長(zhǎng)[11],基于16S rDNA 序列測(cè)定,SRB6-2-1 經(jīng)鑒定屬于Entero?bacter sp.。菌株在-80 ℃超低溫冰箱凍存。

    1.1.2 生物炭原料

    選擇小麥、玉米、水稻秸稈作為生物炭原料。3種秸稈均采自陜西省西安市長(zhǎng)安區(qū)周邊農(nóng)村。將采集的秸稈用蒸餾水沖洗干凈,80 ℃烘干至恒質(zhì)量,采用粉碎機(jī)粉碎并過200目篩,用自封袋干燥保存。

    1.1.3 培養(yǎng)基

    (1)LB培養(yǎng)基:胰蛋白胨10 g,酵母浸粉5 g,NaCl 10 g,蒸餾水1 000 mL,pH 6.8~7.0,121 ℃滅菌20 min。

    (2)生物炭基SRB 培養(yǎng)基:蔗糖10 g,牛肉膏6 g,酵母浸膏1.5 g,蒸餾水1 000 mL,pH 7.0~7.4,121 ℃滅菌20 min。

    (3)SRB 培養(yǎng)基:K2HPO40.5 g,(NH4)2SO42.5 g,NaHCO30.5 g,CaCl20.2 g,MgSO41.0 g,乳酸鈉2.0 mL,酵母膏1.5 g,半胱氨酸鹽0.5 g,蒸餾水1 000 mL,pH 7.0~7.2,121 ℃滅菌20 min;半胱氨酸鹽應(yīng)過濾滅菌。

    1.2 實(shí)驗(yàn)方法

    1.2.1 生物炭的制備及表征

    分別稱取200 g 小麥、玉米、水稻秸稈粉,放置在馬弗爐內(nèi),通入氮?dú)?,采用限氧控溫炭化法[11],分別設(shè)置終溫為300、500 ℃和700 ℃,每分鐘增溫10 ℃,達(dá)到終溫后繼續(xù)炭化2 h,待溫度降至室溫后取出,稱質(zhì)量,計(jì)算炭化產(chǎn)率,并轉(zhuǎn)入自封袋,分別標(biāo)記為XM300、XM500、XM700、YM300、YM500、YM700、DC300、DC500、DC700(其中XM、YM、DC 分別代表小麥、玉米、水稻,300、500、700 代表終溫),干燥保存,備用。

    采用溴化鉀壓片法對(duì)生物炭進(jìn)行傅里葉紅外光譜(FTIR,EQUINOX-55)表征;使用掃描電鏡(SEM,Zeiss-EVO18r)進(jìn)行表面形貌分析;采用比表面積測(cè)試儀(BET,NOVA4200E)進(jìn)行比表面積測(cè)定。

    1.2.2 生物炭基菌劑的制備與篩選

    分別取0.6 g 不同類型的生物炭加入到50 mL 固定化培養(yǎng)基中,121 ℃滅菌30 min,接入2%(體積比)SRB6-2-1,在28 ℃、150 r·min-1條件下的搖床里培養(yǎng)18 h 后取出,以8 000 r·min-1離心10 min 后,收集沉淀,用1%(m/V)的無菌生理鹽水洗滌,離心,重復(fù)洗滌3 次后離心所得固體即為固定化菌劑,分別標(biāo)記為IBXM300、IBXM500、IBXM700、IBYM300、IBYM500、IBYM700、IBDC300、IBDC500、IBDC700( 例 如,IBXM300表示使用XM300制備的固體化菌劑)。

    將制備好的9 種固定化菌劑,分別加入到50 mL濃度為400 mg·L-1的Cr(Ⅵ)溶液中,放置在28 ℃、120 r·min-1的搖床中恒溫振蕩,每隔20 h 取一次樣,樣品在8 000 r·min-1下離心10 min,收集上清液,并用0.45 μm 微孔濾膜過濾,采用火焰原子吸收光譜儀(AAS,Thermo iCE3000 SERIES)測(cè)定濾液中Cr(Ⅵ)濃度。每個(gè)實(shí)驗(yàn)均設(shè)3組平行。

    1.2.3 Cr(Ⅵ)的吸附實(shí)驗(yàn)

    (1)生物炭添加量對(duì)Cr(Ⅵ)吸附的影響

    分別將含0、0.2、0.4、0.6、0.8 g 和1.0 g 小麥秸稈生物炭的IBXM700 加入到50 mL 400 mg·L-1Cr(Ⅵ)溶液中,在28 ℃、120 r·min-1的搖床里振蕩培養(yǎng)24 h,隨后取混合液,在8 000 r·min-1下離心10 min,收集上清液,并用0.45 μm 微孔濾膜過濾,采用火焰原子吸收光譜儀測(cè)定濾液中Cr(Ⅵ)濃度。每個(gè)實(shí)驗(yàn)均設(shè)3組平行。

    (2)pH對(duì)Cr(Ⅵ)吸附的影響

    取0.6 g IBXM700 到錐形瓶中,加入50 mL 濃度為400 mg·L-1的Cr(Ⅵ)溶液,分別調(diào)節(jié)pH 到4、5、6、7、8、9,然后振蕩、離心、過濾并測(cè)定Cr(Ⅵ)濃度(步驟同上)。

    (3)IBXM700對(duì)Cr(Ⅵ)的吸附動(dòng)力學(xué)

    取0.6 g IBXM700 加入到含400 mg·L-1Cr(Ⅵ)溶液的錐形瓶中,28 ℃,120 r·min-1恒溫振蕩,分別在0、2、4、8、18、24、30、42、54、66 h 和90 h 取樣。于8 000 r·min-1離心10 min,上清液過0.45 μm微孔濾膜,采用火焰原子吸收光譜儀測(cè)定濾液中Cr(Ⅵ)濃度,研究其動(dòng)力學(xué)特征。

    (4)IBXM700對(duì)Cr(Ⅵ)的等溫吸附

    取0.6 g IBXM700 加入到含50 mL 不同濃度(100、200、300、400、500 mg·L-1和600 mg·L-1)Cr(Ⅵ)溶液的錐形瓶中,28 ℃、120 r·min-1恒溫振蕩24 h,取樣,并在8 000 r·min-1離心10 min,上清液過0.45 μm微孔濾膜,采用火焰原子吸收光譜儀測(cè)定濾液中Cr(Ⅵ)濃度,計(jì)算其等溫吸附量。

    1.2.4 IBXM700對(duì)Cr(Ⅵ)的去除機(jī)理

    (1)SRB6-2-1對(duì)Cr(Ⅵ)的去除量

    將2% SRB6-2-1 接入到含400 mg·L-1Cr(Ⅵ)的50 mL SRB 培養(yǎng)基中,28 ℃培養(yǎng)24 h,每隔4 h 取樣,8 000 r·min-1離心10 min,收集上清液,采用火焰原子吸收光譜儀測(cè)定Cr(Ⅵ)濃度,計(jì)算Cr(Ⅵ)去除量。

    (2)SRB6-2-1產(chǎn)生H2S還原Cr(Ⅵ)

    將2%SRB6-2-1接入到50 mL的SRB培養(yǎng)基中,28 ℃培養(yǎng)24 h,8 000 r·min-1離心10 min,收集上清液,將Cr(Ⅵ)溶液加入到上清液中,使其最終濃度為400 mg·L-1,28 ℃、120 r·min-1恒溫振蕩28 h,每隔4 h取樣,其余步驟同(1)。

    (3)SRB6-2-1細(xì)胞還原酶還原Cr(Ⅵ)[11]

    將2% SRB6-2-1 接入到50 mL 滅菌后的SRB 培養(yǎng)基中,28 ℃培養(yǎng)24 h,8 000 r·min-1離心10 min,收集菌體,用50 mL 濃度為2.5 g·L-1的NaHCO3緩沖溶液沖洗一次,并重懸于該緩沖液中,加入Cr(Ⅵ)溶液,使其最終濃度為400 mg·L-1,28 ℃、120 r·min-1恒溫振蕩28 h,每隔4 h取樣,其余步驟同(1)。

    (4)SRB6-2-1胞外聚合物對(duì)Cr(Ⅵ)的吸附[11]

    與步驟(3)相同,收集到菌體后,加入50 mL 的NaCl(0.9%),洗滌3 次后,重新懸浮于該溶液中,用NaOH 溶液調(diào)節(jié)pH 為11,慢速(100 r·min-1)攪拌10 min 后,濾膜過濾,得到胞外聚合物,隨后向聚合物中加入50 mL 400 mg·L-1Cr(Ⅵ)溶液,28 ℃、120 r·min-1恒溫振蕩28 h,每隔4 h取樣,其余步驟同(1)。

    (5)IBXM700處理Cr(Ⅵ)前后的結(jié)構(gòu)表征

    取0.6 g IBXM700 加入到滅菌后含400 mg·L-1Cr(Ⅵ)的50 mL SRB 培養(yǎng)基中,恒溫培養(yǎng)24 h,8 000 r·min-1下離心10 min,收集菌體,進(jìn)行SEM分析[12]。

    1.3 數(shù)據(jù)處理

    采用Excel 2010進(jìn)行數(shù)據(jù)處理,利用SPSS 19.0軟件的單因素方差分析(One-way ANOVA)及多重比較分析(LSD)對(duì)不同處理間差異顯著性進(jìn)行比較,并通過Origin 2017軟件繪圖。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 固定化SRB生物炭基載體的篩選

    2.1.1 生物炭的理化性質(zhì)

    生物炭的理化性質(zhì)如表1 所示,隨熱解溫度的上升,3 種生物炭產(chǎn)率均呈下降趨勢(shì),這是因?yàn)樵跓崃呀膺^程中,隨著溫度升高,有機(jī)質(zhì)逐漸降解,灰分逐漸增加[13]。秸稈炭化過程中,其表面含氧官能團(tuán)如—OH、羧酸的C=O 等會(huì)隨著裂解溫度的升高而消失,脂肪性官能團(tuán)會(huì)隨熱解溫度提升逐漸分解[14],導(dǎo)致生物炭整體呈堿性,且隨著裂解溫度升高,pH 逐漸上升。3種生物炭比表面積隨溫度升高逐漸增大。700 ℃下的小麥秸稈生物炭比表面積最大,為101.441 m2·g-1,這有利于富集污染物,促使污染物向生物炭聚集,提高微生物與污染物的接觸幾率,增加微生物對(duì)Cr(Ⅵ)的去除能力[13-16]。

    2.1.2 生物炭的FTIR分析

    FTIR 顯示(圖1),3 種生物炭特征吸收峰基本相同,說明其表面官能團(tuán)的種類基本相同,但是高溫生物炭(700 ℃)較低溫生物炭官能團(tuán)種類減少。官能團(tuán)區(qū):位于3 184~3 219 cm-1的寬吸收峰來自羥基的—OH 伸縮振動(dòng),隨著溫度升高,此處的吸收峰減弱,其原因可能是隨著熱解溫度上升,與氫鍵締合的—OH 逐漸斷裂[17]。雙鍵伸縮振動(dòng)區(qū):圖2a 中1 868 cm-1處的吸收峰為芳環(huán)C=C 鍵的面內(nèi)變形振動(dòng)產(chǎn)生;1 540~1 646 cm-1之間的吸收峰由羧基、羰基、酯基的C=O 和芳環(huán)的C—C 骨架伸縮振動(dòng)產(chǎn)生[18-19],在波數(shù)1 640 cm-1和1 646 cm-1處的吸收峰為C=O 鍵伸縮振動(dòng)產(chǎn)生,由圖1可知,高熱解溫度下(≥500 ℃),C=O 鍵吸收峰逐漸減弱直至消失,其原因在于C=O鍵較易被熱解為CO 和CO2,芳香性增強(qiáng)[20]。指紋區(qū):由圖1a 可知,波數(shù)1 374 cm-1處的吸收峰為烷烴—CH3伸縮振動(dòng)引起,隨著熱解溫度升高,吸收峰逐漸消失,表明高熱解溫度下,烷烴基團(tuán)被分解。1 030、1 037、1 080、1 081 cm-1和1 107 cm-1處的吸收峰為C—O鍵伸縮振動(dòng)特征峰,熱解溫度增高后,這些吸收峰逐漸減弱消失,其原因在于纖維素和半纖維素在高溫下被分解,提高了生物炭的芳香度[21]。950、976 cm-1和977 cm-1處為C=C 鍵的變形振動(dòng)吸收波峰,668~780 cm-1之間的吸收峰是芳烴的C—H 面外彎曲振動(dòng)造成的,結(jié)合之前1 500~1 600 cm-1處芳環(huán)的C—C 骨架伸縮振動(dòng)吸收峰,表明秸稈生物炭產(chǎn)生芳香環(huán)結(jié)構(gòu),并且隨著溫度升高,其芳香程度增加。由圖1 可知,小麥秸稈生物炭的官能團(tuán)種類更豐富,芳香程度較其他兩種生物炭更高。

    表1 生物炭的理化性質(zhì)Table 1 Physical and chemical properties of biochars

    2.1.3 SEM分析

    小麥秸稈生物炭的掃描電鏡圖見圖2。從圖可以看出,XM300 的孔狀結(jié)構(gòu)不明顯,XM500 已經(jīng)有排列規(guī)則清晰的孔狀結(jié)構(gòu),XM700 的孔壁變薄、孔隙變大、孔狀結(jié)構(gòu)變多,表明700 ℃制備的小麥秸稈生物炭孔隙結(jié)構(gòu)更加發(fā)達(dá),比表面積更大,這也與表1 中的比表面積數(shù)據(jù)相一致。隨著熱解溫度升高,比表面積逐漸變大,發(fā)達(dá)的孔隙結(jié)構(gòu)也有助于微生物附著和污染物吸附[21]。

    從圖3 可以看出,在生物炭的孔隙和表面都分布了大量菌體,說明SRB 在生物炭載體上生長(zhǎng)良好,生物炭有利于微生物的生長(zhǎng)繁殖[22]。

    2.1.4 生物炭基菌體載體的篩選

    不同生物炭基SRB 對(duì)Cr(Ⅵ)的吸附效果如圖4所示,結(jié)果表明:隨著時(shí)間增加,生物炭基固定化菌劑對(duì)Cr(Ⅵ)的吸附量顯著高于游離SRB;其中IBXM700對(duì)Cr(Ⅵ)的去除量最大,達(dá)到286.54 mg·g-1,分別比游 離SRB、IBYM700 和IBDC700 提 高 了138.47%,21.12%和36.35%,其原因可能是小麥秸稈生物炭(XM700)的比表面積更大,芳香化程度高,營(yíng)養(yǎng)元素豐富,使其靜電吸附、表面絡(luò)合、陽離子-π、離子交換、還原等作用更強(qiáng)。綜合考慮,XM700 為最佳載體,且IBXM700 對(duì)Cr(Ⅵ)的去除量最佳,因此選擇IBXM700進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

    2.2 生物炭基菌劑吸附影響因素

    2.2.1 生物炭添加量對(duì)IBXM700吸附Cr(Ⅵ)的影響

    以秸稈為材料,熱解溫度700 ℃時(shí),添加不同質(zhì)量的生物炭制備固定化菌劑,以考察其對(duì)污染物吸附性能的影響。結(jié)果如圖5所示。

    由圖可知,污染物去除率隨生物炭添加量的增加,呈現(xiàn)先增大后下降的趨勢(shì)。當(dāng)添加量從0 增加到0.6 g 時(shí),Cr(Ⅵ)去除率從19.64%增加至74.47%,而隨著添加量的進(jìn)一步增加,Cr(Ⅵ)去除率呈下降趨勢(shì),因此,生物炭的最佳添加量為0.6 g。分析原因可能是:生物炭添加量過少,微生物生長(zhǎng)密度較小,從而降低了菌劑對(duì)重金屬的吸附性能;而生物炭添加量過大,由于生物炭表面官能團(tuán)會(huì)使溶液pH 逐漸增大至堿性,從而會(huì)影響微生物的正常生長(zhǎng),導(dǎo)致Cr(Ⅵ)去除率下降。

    2.2.2 pH對(duì)IBXM700吸附Cr(Ⅵ)的影響

    如圖6 所示,隨著pH 的增加,IBXM700 對(duì)Cr(Ⅵ)的吸附量呈現(xiàn)緩慢升高再下降的趨勢(shì),pH 為4~6 時(shí),吸附量先緩慢增加再減小,但是變化幅度較小;pH 為6~8 時(shí),吸附量逐漸減小,特別是當(dāng)溶液呈堿性時(shí),吸附量顯著降低,pH 為8~9 時(shí),吸附量緩慢增加,但明顯低于pH 為4~6 時(shí)的吸附量。溶液pH 為5 時(shí),達(dá)到最大吸附量231.58 mg·g-1。

    對(duì)于Cr(Ⅵ)陰離子基團(tuán),pH<7 時(shí),OH-與重金屬陰離子Cr(Ⅵ)競(jìng)爭(zhēng)吸附位點(diǎn)能力較弱,當(dāng)pH>7 時(shí),溶液中OH-濃度增加,OH-與Cr(Ⅵ)競(jìng)爭(zhēng)吸附位點(diǎn)的能力增強(qiáng),導(dǎo)致吸附能力下降,另一個(gè)原因可能是溶液堿性環(huán)境對(duì)IBXM700的生長(zhǎng)繁殖具有抑制作用[22]。

    2.3 吸附動(dòng)力學(xué)

    采用擬一級(jí)動(dòng)力學(xué)方程(PF-order)、擬二級(jí)動(dòng)力學(xué)方程(PS-order)、顆粒內(nèi)擴(kuò)散模型(IPD)對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行吸附動(dòng)力擬合,方程如下[23]:

    式中:Qe為平衡吸附量,mg·g-1;k1(h-1)、k2(g·mg-1·h-1)分別是擬一級(jí)、擬二級(jí)動(dòng)力學(xué)方程的速率常數(shù);kp為顆粒內(nèi)擴(kuò)散模型速率常數(shù),mg·g-1·h-0.5;C 是與邊界層厚度相關(guān)的常數(shù),mg·g-1。

    IBXM700 對(duì)Cr(Ⅵ)的吸附量隨時(shí)間變化情況及動(dòng)力學(xué)擬合曲線如圖7 所示。IBXM700 對(duì)Cr(Ⅵ)的吸附量在初期迅速增加,然后增速變緩,直至達(dá)到平衡。因此,可以將此過程分為快吸附和慢吸附兩個(gè)階段。由圖可知,0~8 h為快吸附階段,吸附量為飽和吸附量的69.6%,8~24 h 為慢吸附階段,在24 h 時(shí)的吸附基本達(dá)到平衡狀態(tài)。因此,本實(shí)驗(yàn)IBXM700 對(duì)Cr(Ⅵ)的吸附平衡時(shí)間為24 h。由表2 可知,IBXM700 吸附Cr(Ⅵ)的擬一級(jí)動(dòng)力學(xué)方程模型和擬二級(jí)動(dòng)力學(xué)方程模型的R2分別為0.964和0.986,均大于0.9。此外,擬一級(jí)動(dòng)力學(xué)方程所得到的理論平衡吸附量Qe(277.35 mg·g-1)相比于擬二級(jí)動(dòng)力學(xué)方程(303.74 mg·g-1)更加接近實(shí)驗(yàn)吸附量(279.02 mg·g-1)。因此,擬一級(jí)動(dòng)力學(xué)方程能更好地描述IBXM700 吸附Cr(Ⅵ)的動(dòng)力學(xué)過程。

    由表2可知,Cr(Ⅵ)的顆粒內(nèi)擴(kuò)散模型R2<0.9,因此,吸附過程不符合顆粒內(nèi)擴(kuò)散模型。其原因可能是在實(shí)驗(yàn)吸附過程中,液相膜擴(kuò)散吸附和表面吸附起主導(dǎo)作用。由于生物炭基SRB 表面含氧官能團(tuán)和SRB所產(chǎn)生的S2-與重金屬離子發(fā)生還原反應(yīng),使得重金屬離子不容易進(jìn)入生物炭基SRB 內(nèi)部[24]。其吸附可分為3 個(gè)階段:(1)Cr(Ⅵ)通過液膜擴(kuò)散附著在生物炭基SRB 表面;(2)Cr(Ⅵ)吸附在菌劑表面的吸附位點(diǎn);(3)Cr(Ⅵ)與生物炭基SRB 表面的產(chǎn)物發(fā)生吸附反應(yīng),有足夠多的吸附位點(diǎn)結(jié)合,不容易擴(kuò)散到菌劑內(nèi)部。

    2.4 吸附等溫線

    圖8 為IBXM700 在不同初始Cr(Ⅵ)濃度下的吸附率曲線,隨著初始Cr(Ⅵ)濃度上升,IBXM700 的吸附量顯著增加。在Cr(Ⅵ)濃度為100 mg·L-1時(shí),吸附率最大為84.34%。

    用Freundlich(公式4)和Langmuir(公式5)等溫模型對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行擬合,公式如下:

    表2 擬一級(jí)動(dòng)力學(xué)方程、擬二級(jí)動(dòng)力學(xué)方程、顆粒內(nèi)擴(kuò)散模型的擬合參數(shù)Table 2 Fitting parameters of quasi first-order dynamic equation,quasi second-order dynamic equation and intra particle diffusion model

    式中:Qe和Qm為菌劑達(dá)到吸附平衡和最大時(shí)的Cr(Ⅵ)吸附量,mg·g-1;C0和Ce為初始及平衡濃度,mg·L-1;KL為L(zhǎng)angmuir 常數(shù),L·mg-1;RL為平衡常數(shù),判斷反應(yīng)是否可行;KF[(mg·g-1)(L·mg-1)1/n]和n均為Freundlich 常數(shù)。

    吸附等溫線如圖9 所示,擬合參數(shù)見表3??梢钥闯觯琇angmuir 模型的R2(0.978)大于Freundlich 模型(0.940),表明IBXM700 對(duì)Cr(Ⅵ)的吸附過程近似單分子層吸附,由Langmuir 模型計(jì)算得出Qm值為485.89 mg·g-1。RL是表示吸附劑親和力的一個(gè)常數(shù)[4],當(dāng)01 時(shí),說明吸附過程難以進(jìn)行,當(dāng)RL=1 時(shí),表明整個(gè)吸附過程呈線性關(guān)系。由表3可知,RL值均在0~1之間,說明吸附容易進(jìn)行,且為非線性吸附。因此,生物炭基SRB 吸附Cr(Ⅵ)的過程包含多種機(jī)制??傮w可概括為3 個(gè)方面:(1)Cr(Ⅵ)與生物炭基SRB 的含氧官能團(tuán)等發(fā)生離子交換;(2)Cr(Ⅵ)與芳環(huán)C=C 鍵發(fā)生陽離子-π 作用;(3)Cr(Ⅵ)與生物炭基SRB 產(chǎn)生的S2-發(fā)生還原反應(yīng)。

    2.5 IBXM700對(duì)Cr(Ⅵ)的去除機(jī)理

    圖10為SRB6-2-1產(chǎn)生H2S及還原酶還原Cr(Ⅵ),細(xì)胞外聚合物吸附Cr(Ⅵ)。由圖可知,H2S 和還原酶的還原作用為Cr(Ⅵ)的主要去除機(jī)理,SRB6-2-1 能將SO2-4還原為S2-而生成H2S,S2-和H2S 能還原Cr(Ⅵ)為Cr(Ⅲ),降低其毒性,從而達(dá)到去除目的。除此之外,SRB6-2-1 也能分泌一些還原酶來還原Cr(Ⅵ),其作用機(jī)理為,細(xì)胞膜上的還原酶將氧化還原輔酶NADH 中的電子供給Cr(Ⅵ),將其還原[11]。在4 h 以內(nèi),H2S 與Cr(Ⅵ)的作用很快達(dá)到平衡,隨著時(shí)間增加,還原量變化較小,表明S2-與Cr(Ⅵ)之間作用為化學(xué)反應(yīng)。細(xì)胞外聚合物對(duì)Cr(Ⅵ)的吸附去除量特別小,其原因在于Cr(Ⅵ)以陰離子基團(tuán)存在[25],而胞外聚合物通常均帶負(fù)電荷,因此吸附量極低[11]。

    圖11 為XM700 和IBXM700 對(duì)Cr(Ⅵ)的去除量,由圖可知,XM700 對(duì)溶液中Cr(Ⅵ)的最高去除量為255.68 mg·g-1,約在4 h 內(nèi)達(dá)到平衡,而IBXM700 約在24 h 內(nèi)達(dá)到平衡,其原因在于SRB6-2-1 在生物炭上的生長(zhǎng)需要一定的時(shí)間[25-27]。此外,IBXM700 在未達(dá)到平衡之前,對(duì)Cr(Ⅵ)的去除量略低XM700,其原因可能是SRB6-2-1 覆蓋了部分生物炭吸附點(diǎn)位,隨著時(shí)間增加,IBXM700 的最高去除量達(dá)到286.54 mg·g-1,分別比游離SRB6-2-1 和XM700 高166.3 mg·g-1和30.86 mg·g-1,其原因可能為:(1)IBXM700具備了生物炭和SRB6-2-1去除Cr(Ⅵ)的雙重功能;(2)生物炭增強(qiáng)了SRB6-2-1 耐受高濃度Cr(Ⅵ)的生長(zhǎng)能力,另外,生物炭能夠?yàn)槲⑸锾峁I(yíng)養(yǎng)物質(zhì)和良好的生長(zhǎng)環(huán)境,與游離菌相比,IBXM700具有更高的繁殖率[8-11]。因此,IBXM700具有較高的Cr(Ⅵ)去除能力[28]。

    3 結(jié)論

    (1)不同生物炭基SRB 中,IBXM700 對(duì)Cr(Ⅵ)的吸附性能最好。

    表3 Langmuir和Freundlich吸附等溫線擬合參數(shù)Table 3 Fitting parameters of Langmuir and Freundlich adsorption isotherms

    (2)IBXM700對(duì)Cr(Ⅵ)的最佳吸附條件為:pH 5,生物炭添加量0.6 g·100 mL-1,吸附時(shí)間24 h,Cr(Ⅵ)初始濃度100 mg·L-1。

    (3)IBXM700 吸附Cr(Ⅵ)符合擬二級(jí)動(dòng)力學(xué)方程,但更符合擬一級(jí)動(dòng)力學(xué)方程,而對(duì)內(nèi)擴(kuò)散模型擬合效果不好,表明該過程是以表面吸附為主,化學(xué)作用為輔。吸附過程可以很好地被Langmuir模型擬合,是單分子層吸附。

    (4)SRB6-2-1 通過還原SO2-4為S2-或分泌一些還原酶將Cr(Ⅵ)還原為Cr(Ⅲ),從而達(dá)到去除目的,因此IBXM700 去除Cr(Ⅵ)的機(jī)制主要為吸附作用與還原作用。

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