Ni/Co層狀氫氧化物模擬氧化物酶可視化檢測海產(chǎn)品中Hg2+

趙海萍，南麗娟，雒雪麗，楊偉霞，韓雍，李忠宏

(西北農(nóng)林科技大學 食品科學與工程學院，陜西 楊凌，712100)

Hg2+是海洋中汞污染的主要形式，易被海洋生物轉(zhuǎn)化為劇毒有機汞[1]。Hg2+會通過被污染的魚、貝、蝦、海帶等海洋生物進入人體，造成有絲分裂受損、DNA損傷、中樞神經(jīng)系統(tǒng)損害、腦損傷、嚴重的認知障礙、免疫系統(tǒng)功能障礙、腎功能衰竭等[2-3]。即使較低濃度的Hg2+進入人體后也會迅速與細胞內(nèi)的相關(guān)分子產(chǎn)生反應(yīng)，干擾人體細胞的正常功能，影響正常的生命活動[4]。因此，對海產(chǎn)品中Hg2+的檢測是全世界備受關(guān)注的問題。

傳統(tǒng)的Hg2+檢測方法有原子吸收光譜法、電感耦合等離子體質(zhì)譜法、高效液相色譜法等[5-7]。這些方法雖然具有靈敏度高、選擇性高等優(yōu)勢，但檢測耗時長、儀器價格昂貴、需專業(yè)人士操作、現(xiàn)場檢測困難等缺點妨礙了其應(yīng)用。為了克服這些困難，相繼開發(fā)了各種檢測Hg2+的替代方法，如熒光法、電化學法和比色法等[8-12]。其中，比色法因其檢測過程簡單、快速、成本低、肉眼可觀察等優(yōu)點被廣泛應(yīng)用于Hg2+檢測。

近年來，多種納米材料被用作Hg2+檢測的比色傳感器，如碳基納米材料(氧化石墨烯、碳納米管、碳點等)、金屬納米顆粒(Au、Ag、Pt)、金屬氧化物納米顆粒(CuO、Co3O4、MnO2)等[13-21]。但這些材料存在表面積小、分散性差、在低pH條件下不穩(wěn)定等問題。層狀雙金屬氫氧化物(layered double hydroxides，LDHs)是由2種金屬的氫氧化物層層堆積而成的一種新興的納米材料。因其具有多孔性、高比表面積和均勻分布的活動中心以及前驅(qū)體層狀氫氧化物的可調(diào)控性，能夠?qū)⒕哂凶儍r特性的過渡金屬定量引入，因此被廣泛應(yīng)用于催化、吸附、載體等多方面[22-26]。

本文采用共沉淀法制備了Ni/Co層狀氫氧化物(Ni/Co LDHs)。如圖1所示，基于Ni/Co LDHs模擬類氧化物酶活性，可以催化3,3′,5,5′-四甲基聯(lián)苯胺(3,3′,5,5′-tetramethylbenzidine, TMB)生成藍色的氧化態(tài)TMB(oxTMB)。加入谷胱甘肽(glutathione,GSH)后，由于GSH的硫醇基團阻礙了陽離子自由基的形成，會使得藍色oxTMB的形成變少。當Hg2+被引入Ni/Co LDHs/TMB/GSH體系時，由于汞-硫醇絡(luò)合物的形成，釋放了GSH中的TMB，使得藍色恢復?；谶@一機理，我們構(gòu)建了一種海產(chǎn)品中Hg2+的快速比色檢測方法，為納米材料模擬酶在食品分析中的應(yīng)用提供了新思路。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

TMB、氨水、冰乙酸、醋酸鈉、無水乙醇，成都市科隆化學品有限公司；六水氯化鎳，廣東光華科技股份有限公司；六水氯化鈷，天津市科密歐化學試劑有限公司；GSH，阿拉丁(中國上海)；試驗所用試劑均為分析純，試驗用水均為蒸餾水。

1.2 儀器與設(shè)備

UV-2550型紫外可見分光光度計，日本島津；HC-3018R型高速冷凍離心機，北京儀諾科興科技發(fā)展有限公司；DZF-6020型真空干燥箱，上海海向儀器設(shè)備廠；FE20/EL20型pH計，梅特勒-托利多儀器公司；KH-250E型超聲波清洗器，深圳市得康科技有限公司；Vetex70型傅里葉變換近紅外光譜(Fourier transform infrared spectrometer,FTIR)，德國布魯克公司；CP-224C型分析天平，奧豪斯儀器公司;K-Alpha型X-射線光電子能譜儀(X-ray photoelectron spectroscopy,XPS)，美國熱電公司。

1.3 試驗方法

1.3.1 Ni/Co LDHs的制備

將10 mL 0.1 mol/L CoCl2·6H2O和20 mL 1 mol/L NiCl2·6H2O在磁力攪拌下均勻混合，逐滴加入1 mL 35%(體積分數(shù))的氨水，將上述溶液在50 mL 玻璃瓶中密封3 h。待反應(yīng)結(jié)束后收集樣品，在5 000 r/min離心10 min，分別用去離子水和無水乙醇洗滌3次。所得沉淀物放入60 ℃真空干燥箱中干燥24 h，得到產(chǎn)物Ni/Co LDHs。

1.3.2 Ni/Co LDHs的表征

采用場發(fā)射掃描電子顯微鏡觀察Ni/Co LDHs的形貌；由X射線衍射儀獲得Ni/Co LDHs的X射線衍射(X-ray diffraction，XRD)圖譜，用于表征其晶體結(jié)構(gòu)；利用FTIR進行分析，得到紅外光譜，用于分析Ni/Co LDHs的表面功能基團；用XPS進一步確認Ni/Co LDHs表面的化學信息。

1.3.3 Ni/Co LDHs類氧化物模擬酶催化動力學

1.3.3.1 Ni/Co LDHs類氧化物模擬酶的活性驗證

制備TMB、TMB+Ni/Co LDHs、TMB+Ni/Co LDHs+GSH、TMB+Ni/Co LDHs+GSH+Hg2+4種不同的反應(yīng)體系，25 ℃孵育10 min后，收集反應(yīng)體系在652 nm處的吸光度值。用于驗證Ni/Co LDHs的氧化物酶活性。

1.3.3.2 檢測條件的優(yōu)化

以吸光度值變化大小為指標，檢測不同孵育時間(2、4、6、8、10、12、14、16 min)、體系pH(2.0、2.5、3.0、3.5、4.0、4.5、5.0、5.5、6.0)、TMB濃度(0、0.05、0.1、0.2、0.5、1、2、5、10 mmol/L)、孵育溫度(10、15、20、25、30、35、40、45、50、55 ℃)和Ni/Co LDHs濃度(0.2、0.4、0.6、0.8、1 mmol/L)條件下體系吸光度值的變化，優(yōu)化檢測條件。所有試驗做3個平行。

1.3.3.3 Ni/Co LDHs類氧化物模擬酶催化動力學

通過UV-2550型紫外可見分光光度計以時間掃描模式，測定TMB在652 nm處吸光度隨時間的變化，根據(jù)公式(1)Lineweaver-Burk曲線計算Michaelis-Menten常數(shù)。

(1)

式中：v為初始速度；vmax為最大反應(yīng)速度；[S]為底物濃度；Km為米氏常數(shù)，表示底物與酶親和力的大小，Km值越小，表明酶與底物之間的親和力越大。

1.3.4 檢測海產(chǎn)品中的Hg2+

1.3.4.1 標準曲線

在最優(yōu)條件下，將50 μL 1 mmol/L谷胱甘肽、200 μL 0.5 mmol/L TMB、100 μL 0.8 mg/mL Ni/Co LDHs溶液與不同濃度的Hg2+混合，在25 ℃孵育10 min后，檢測反應(yīng)體系在652 nm處的吸光度值。所得數(shù)據(jù)用經(jīng)驗方程式(2)進行擬合，進行數(shù)據(jù)分析，并繪制標準曲線，得到相關(guān)系數(shù)R2。由公式(3)得到檢測線性范圍及檢測限。

(2)

(3)

1.3.4.2 干擾試驗

為了研究其他離子對檢測體系的干擾性，擬以水中常見的金屬離子，如Na+、Mg2+、Cu2+、Cr3+、Pb2+、Mn2+、Zn2+等來評價該方法的選擇性。將2 mL pH 4.0的醋酸-醋酸鈉緩沖液、200 μL 0.5 mmol/L的TMB、50 μL 0.8 mg/mL的Ni/Co LDHs、50 μL 1 mmol/L的GSH以及 0.1 mmol/L的不同金屬離子依次加入，均勻混合。在25 ℃孵育10 min后，檢測反應(yīng)體系在652 nm處的吸光度值。所有試驗做3個平行。

1.3.4.3 實際樣品檢測

為了評估Ni/Co LDHs對海產(chǎn)品中Hg2+檢測的適用性，選用大黃魚(Larimichthyscrocea)和海帶(Saccharinajaponica)(購于當?shù)爻?進行實際樣品檢測。先對海產(chǎn)品樣品進行消解預處理[27]，分別將0.5 g的魚和海帶樣品放入錐形瓶中，依次滴入15 mL HNO3和2.5 mL H2SO4。混合物在室溫下放置12 h，然后煮沸直到溶液變清。冷卻至室溫后(20 ℃ 左右)，用1 mol/L NaOH溶液調(diào)pH值至4.0。用蒸餾水將所得溶液稀釋至100 mL。用構(gòu)建的傳感器檢測處理后的樣品溶液。所有試驗做3個平行。

2 結(jié)果與分析

2.1 Ni/Co LDHs的表征

通過掃描電子顯微鏡(scanning electron microscope，SEM)觀察到制備的Ni/Co LDHs的形貌如圖2-a和2-b所示?？梢钥闯鯪i/Co LDHs呈均勻的三維花狀微球結(jié)構(gòu)，這種花狀結(jié)構(gòu)會使結(jié)構(gòu)更穩(wěn)定，比表面積更大，活性位點更暴露，有利于Ni/Co LDHs與目標物的接觸，從而提高催化性能[28]。為進一步驗證在Ni/Co LDHs中各種元素的分布是否均勻，在一塊三維花狀區(qū)域上分別選取O、Ni、Co 3種元素進行mapping測試，結(jié)果如圖2-c所示，O、Ni、Co元素在Ni/Co LDHs中分布均勻。通過XRD和紅外光譜對制備的Ni/Co LDHs納米微球的組成進行了分析。XRD圖譜如圖3-a所示，在11.4、22.6、34.3、38.7處的4個特征峰歸屬于(003)、(006)、(012)、(015)晶面，這與Ni/Co LDHs以前的報道一致[28]。FTIR圖譜如圖3-b所示，在3 354 cm-1處的峰屬于—OH的伸縮振動，較寬的羥基吸收峰表明Ni/Co LDHs表面上具有多個羥基結(jié)構(gòu)，賦予其更高的極性和親水性，可以穩(wěn)定的分散在水中[29]。1 391 cm-1處的譜帶歸因于層間CO2的振動，可能是由于大氣中溶解的CO2分子吸收。523、564、637、860 cm-1處的峰歸因于M—O、O—M—O和M—O—M(M代表Ni或Co)的晶格振動模式。2 928、2 820、1 620、1 457和1 053 cm-1處的峰歸因于乙醇分子的C—O、C—H和C—C基團。通過XPS分析了Ni/Co LDHs中元素的價態(tài)，結(jié)果如圖3-c所示，有284.73、530.72、781.70和856.98 eV 4個典型的峰，分別是C 1s、O 1s、Ni 2p和Co 2p的XPS特征峰，這說明合成的Ni/Co LDHs的表面主要由C、O、Ni和Co 4種元素組成。接著對Ni 2p、Co 2p和O 1s的掃描圖譜分峰擬合，由圖3-d所示的Ni 2p的高分辨圖可知，除了861.83和879.94 eV處的sat外，Ni 2p譜有4個峰，其中855.75和873.25 eV表明Ni2+的存在，856.55和874.53 eV表明Ni3+的存在。由圖3-e所示的Co 2p的高分辨圖可知，除了785.98和803.10 eV處的sat外，Co 2p譜有4個峰在781.38、796.81和783.21、798.04 eV處，分別對應(yīng)于Co3+和Co2+，Co3+的形成可能是溶解氧在合成過程中Co2+被氧化。O 1s的高分辨圖如圖3-f所示，有531.60、531.15和530.65 eV 3個典型的衍射峰，531.60 eV是由吸收的水分產(chǎn)生的，531.15 eV是由—OH產(chǎn)生的，530.65 eV是由金屬氧鍵(Ni—O和Co—O)產(chǎn)生的。結(jié)果表明，在XPS光譜中，Ni/Co LDHs表面存在著Ni和Co的混合價態(tài)。Ni3+和Co3+陽離子通常被認為是催化活性中心，因此Ni/Co LDHs表面大量的Ni2+/Ni3+和Co2+/Co3+的氧化還原電對有利于反應(yīng)過程中氧的轉(zhuǎn)移[29]。

圖1 比色法檢測Hg2+Fig.1 Detection of Hg2+ by colorimetric assay

a-Ni/Co LDHs的SEM圖；b-Ni/Co LDHs的SEM放大圖； c-Ni/Co LDHs的元素面掃描圖圖2 Ni/Co LDHs的SEM圖Fig.2 The SEM images of Ni/Co LDHs

2.2 Ni/Co LDHs類氧化物模擬酶的活性驗證

以4種不同的反應(yīng)體系探究了Ni/Co LDHs的類氧化物活性，結(jié)果如圖4所示。在加入Ni/Co LDHs之前，TMB為無色透明溶液，加入Ni/Co LDHs之后，TMB溶液逐漸變?yōu)樗{色，在652 nm處出現(xiàn)較強的吸收峰，這是因為無色的TMB被氧化為藍色的oxTMB；在此體系中繼續(xù)加入GSH，反應(yīng)體系逐漸變淺，這是因為引入的Ni/Co LDHs能夠催化氧化TMB生成TMB陽離子自由基[9]；當在TMB/Ni/Co LDHs的傳感體系中加入抗自由基生物分子GSH時，溶液顏色由藍色逐漸變淺至無色，這是因為GSH的硫醇基團阻礙了陽離子自由基的形成，使TMB分子得到恢復。隨后在該傳感系統(tǒng)中加入Hg2+，Hg2+能夠與GSH的硫醇基團結(jié)合，從而使得Hg2+與TMB競爭結(jié)合GSH，且Hg2+與GSH的親和力強于TMB與GSH的親和力，最終使得與GSH的硫醇基團結(jié)合的TMB釋放，促進了傳感系統(tǒng)的催化氧化反應(yīng)，溶液呈現(xiàn)為藍色。因此，Ni/Co LDHs納米球可以作為類氧化物模擬酶檢測Hg2+。

a-Ni/Co LDHs的XRD全掃描圖；b-Ni/Co LDHs的FTIR全掃描圖；c-Ni/Co LDHs的XPS全掃描圖；d-Ni 2p；e-Co 2p； f-O 1s的高分辨掃描圖圖3 Ni/Co LDHs的XRD、FTIR、XPS圖譜Fig.3 XRD, FTIR, XPS spectra of Ni/Co LDHs

圖4 Ni/Co LDHs 模擬酶活性驗證Fig.4 Activity verification of Ni/Co LDHs mimetic enzyme

2.3 檢測條件的優(yōu)化

為了獲得最佳的Hg2+檢測性能，探究了氧化的TMB吸光值變化與體系pH、TMB濃度、孵育溫度、孵育時間、LDHs濃度的變化關(guān)系。

2.3.1 體系pH

類似于天然酶，例如辣根過氧化物酶，Ni/Co LDHs的催化活性也顯示出對pH和溫度的依賴性。在其他條件不變的情況下，分別加入不同pH值的緩沖液進行優(yōu)化，結(jié)果如圖5-a所示。隨著pH值由2.0逐漸增大到4.0，吸光度值逐漸增大，隨著pH值由4.0逐漸增大到6.0，吸光度值逐漸減小。在pH<4.0 時，TMB的氧化產(chǎn)物會傾向于生成黃色的二亞胺終止反應(yīng)，pH>4.0時，酶活性有所減弱。因此，選擇pH 4.0用于Hg2+檢測。

2.3.2 TMB濃度

在其他條件不變的情況下，通過改變TMB濃度，探討TMB濃度對Ni/Co LDHs活性的影響，結(jié)果如圖5-b所示。試驗結(jié)果表明，隨著TMB濃度的增大，吸光度值不斷增大。吸光度值在0～0.5 mmol/L隨著TMB濃度的增大急劇增大；在0.5～2 mmol/L隨著TMB濃度的增加，吸光度值逐漸增大；在2～10 mmol/L隨著TMB濃度的增加，吸光度值緩慢增大。這是因為隨著TMB濃度的升高，使得底物TMB和Ni/Co LDHs模擬酶的活性位點接觸機會增多，有效碰撞增加，從而提高了活性。綜合考慮傳感器檢測的靈敏度、試驗安全性，選擇0.5 mmol/L的TMB用于檢測水中Hg2+。

2.3.3 孵育溫度

溫度是影響模擬酶活性的重要因素之一。在10～55 ℃研究了Ni/Co LDHs的催化活性對溫度的依賴性，結(jié)果如圖5-c所示。當溫度在10～25 ℃時，吸光度值逐漸增大，25～50 ℃，吸光度值明顯減小，當溫度在50～60 ℃時，吸光度值緩慢減小。隨著溫度的升高，體系中反應(yīng)物分子運動更加劇烈，使得底物TMB和Ni/Co LDHs模擬酶的活性位點接觸機會增多，有效碰撞增加，更容易發(fā)生催化反應(yīng)，所以其活性也逐漸增強。結(jié)果表明，在25 ℃時反應(yīng)體系的吸光度值最大，試驗效果最佳。當反應(yīng)溫度低于25 ℃或高于25 ℃時，吸光度值較低，溶液所呈現(xiàn)出來的顏色較淺，不利于后續(xù)可視化檢測。因此，選擇檢測溫度為25 ℃用于Hg2+檢測。

2.3.4 Ni/Co LDHs濃度

研究Ni/Co LDHs濃度以評估Ni/Co LDHs的催化活性，結(jié)果如圖5-d所示，Ni/Co LDHs質(zhì)量濃度在0～0.8 mg/mL時，隨著濃度的增加吸光度值呈平穩(wěn)上升趨勢,質(zhì)量濃度在0.8～1.0 mg/mL時，吸光度值緩慢平穩(wěn)下降。由此可知，Ni/Co LDHs的質(zhì)量濃度為0.8 mg/mL時反應(yīng)體系檢測效果最好。因此，選擇Ni/Co LDHs質(zhì)量濃度為0.8 mg/mL用于Hg2+檢測。

2.3.5 卵育事件

研究孵育時間以評估Ni/Co LDHs的催化活性，結(jié)果如圖5-e所示。隨著反應(yīng)時間的不斷增加，吸光度值呈上升的趨勢。在1～10 min時，吸光度值急劇上升，在10～16 min時，吸光度值隨著時間的增加緩慢上升。實驗結(jié)果表明，在10 min時，反應(yīng)速率變慢，檢測體系反應(yīng)效果基本達到最優(yōu)，過長的反應(yīng)時間不利于其快速即時檢測，因此選擇10 min為其最優(yōu)的反應(yīng)時間，其檢測響應(yīng)效果良好。

綜上所述，選擇pH 4.0，0.5 mmol/L TMB，孵育溫度為25 ℃，Ni/Co LDHs質(zhì)量濃度為0.8 mg/mL，孵育時間10 min用于后續(xù)試驗。

a-pH體系；b-TMB濃度；c-孵育溫度；d-Ni/Co LDHs質(zhì)量濃度；e-孵育時間圖5 檢測條件優(yōu)化Fig.5 Optimization of detection conditions

2.4 Ni/Co LDHs類氧化物模擬酶的催化動力學

在最優(yōu)條件下，通過改變TMB的濃度，測定反應(yīng)溶液在652 nm處的吸光度值，計算得到相應(yīng)的動力學數(shù)據(jù)。通過穩(wěn)態(tài)動力學研究，發(fā)現(xiàn)Ni/Co LDHs納米材料作為類氧化物模擬酶，其催化反應(yīng)與天然酶的反應(yīng)動力學相似。結(jié)果如圖6-a所示，反應(yīng)速率隨著底物濃度的增加而加快，最終達到穩(wěn)定狀態(tài)，符合典型的米氏曲線。再通過雙倒數(shù)作圖法，得到如圖6-b 所示的倒數(shù)圖。從圖6-b可以得到反應(yīng)的米氏常數(shù)Km=0.945 7 mmol/L，最大反應(yīng)速率vmax=2.63×10-9mol/(L·s)。Km被認為是酶對底物親和力的指示物。Km越小，底物與酶的親和力越強。通過與其他納米酶比較，Ni/Co LDHs對TMB的Km值稍大于其他納米酶的Km，表明Ni/Co LDHs對TMB的親和力低于其他納米酶。

a-TMB 濃度與速率關(guān)系曲線；b-Lineweaver-Burk線性擬合圖6 Ni/Co LDHs 穩(wěn)態(tài)動力學Fig.6 Steady-state kinetic analysis of Ni/Co LDHs

2.5 標準曲線

為了構(gòu)建一個比色檢測水中Hg2+的傳感器，依次將TMB(0.5 mmol/L)、GSH(1 mmol/L)、Ni/Co LDHs(0.8 mg/mL)和不同濃度的Hg2+加入到緩沖液(pH 4.0)中，并在25 ℃下孵育10 min后掃描紫外光譜，所得的紫外光譜如圖7所示，隨著Hg2+濃度的增大，在652 nm處的吸光度值逐漸增大，體系溶液對應(yīng)的顏色變化如圖7-a中圖例所示。由經(jīng)驗方程擬合后，Hg2+在2.96～11.63 μmol/L具有良好的線性關(guān)系，標準曲線回歸方程為y=0.020 8x-0.011 9，其中x為Hg2+濃度，相關(guān)系數(shù)R2=0.992 2，根據(jù)公式(3)計算檢測限為30.60 nmol/L。

a-在加入不同濃度的Hg2+ 時，Ni/Co LDH+TMB+GSH 傳感探針的紫外光譜(圖例：顏色隨Hg2+ 濃度的變化)； b-光度值隨Hg2+ 濃度變化圖圖7 檢測Hg2+ 的標準曲線Fig.7 The standard curve for Hg2+ detection

2.6 干擾試驗

本論文所開發(fā)的比色傳感器的選擇性對于實際水樣中Hg2+含量的測定至關(guān)重要。在最佳條件下，通過對于實際水樣中可能存在的其他金屬離子，如Na+、Mg2+、Cu2+、Cr3+、Pb2+、Mn2+、Pb2+和Zn2+進行干擾性試驗來評價該方法的選擇性，結(jié)果如圖8所示，Hg2+測定具有較好的選擇性，Na+、Mg2+、Cu2+、Cr3+、Pb2+、Mn2+、Pb2+、Zn2+對檢測的影響十分微弱(P>0.05)。因此，本比色檢測方法對于水中Hg2+檢測具有較好的選擇性。

圖8 Ni/Co LDH對4.16 μmol/L Hg2+ 和 相同濃度干擾離子的吸光度值Fig.8 Absorbance value of Ni/Co LDHs to 4.16 μmol/L Hg2+ and interfering ions with the same concentration

2.7 實際樣品檢測

為了研究該方法在實際海產(chǎn)品樣本中檢測Hg2+的可行性與可靠性，實驗采用空白加標回收評價方法的準確度。海產(chǎn)品樣品中未檢測到Hg2+，在消解處理后的海產(chǎn)品樣品中加入不同濃度的Hg2+進行檢測分析，試驗結(jié)果如表1所示，加入已知不同Hg2+的空白加標回收率都在92.74%～114.40%，相對標準偏差為0.56%～4.37%。結(jié)果表明該方法檢測海產(chǎn)品中的Hg2+具有較高的可靠性和可行性，有較好的準確度和精密度。

表1 檢測海產(chǎn)品樣品中不同濃度Hg2+ 的回收率Table 1 Recoveries of the detection of different concentration Hg2+ in seafood samples

3 結(jié)論

通過共沉淀法合成的Ni/Co LDHs納米材料模擬氧化物酶，具有較高的催化活性和較好的穩(wěn)定性。以檢測體系pH、TMB濃度、孵育時間、孵育溫度和Ni/Co LDHs濃度為單因素，優(yōu)化得到檢測Hg2+的最佳條件為pH 4.0、TMB濃度為0.5 mmol/L、溫度為25 ℃、孵育時間為10 min、催化劑質(zhì)量濃度為0.8 mg/mL；在最優(yōu)檢測條件下該傳感器在2.96～11.63 μmol/L具有良好的線性響應(yīng)，檢測限為30.60 nmol/L。該方法的加標回收率為92.74%～114.40%，干擾試驗表明可能存在的干擾物質(zhì)對傳感器沒有顯著影響，因此該傳感器用于檢測海產(chǎn)品中Hg2+具有可接受的選擇性，可為海產(chǎn)品中Hg2+的比色檢測提供一種新思路。