閆世玉,許立偉,黃彩圖,陶婷婷,梁美,何建福,陳玲琳*(.桂林醫(yī)學(xué)院藥學(xué)院,廣西 桂林 5499;.桂林醫(yī)學(xué)院科學(xué)實驗中心,廣西 桂林 5499)
神經(jīng)炎癥是中樞神經(jīng)系統(tǒng)先天性的免疫反應(yīng)[1],其產(chǎn)生的原因是機體受損后,中樞神經(jīng)系統(tǒng)的促炎因子和抗炎因子分泌失調(diào)[2]。神經(jīng)炎癥可能參與神經(jīng)退行性疾病,如阿爾茨海默病的病理生理過程[3]。因此,探討神經(jīng)炎癥在大腦中的變化及機制,可以為神經(jīng)退行性疾病的研究提供參考依據(jù)。
葉下珠又名珍珠草,為大戟科葉下珠屬植物葉下珠(Phyllanthus urinariaL.)干燥全草,具有清肝明目、消炎解毒等功效[4]。研究發(fā)現(xiàn),該植物含有豐富的黃酮類化合物,除了抗腫瘤的作用外[5],在肝腎炎癥中也具有明顯的作用[6]。但是,葉下珠在神經(jīng)炎癥中的作用尚未明確。本實驗通過側(cè)腦室注射脂多糖(LPS),建立LPS 大鼠神經(jīng)炎癥模型,觀察葉下珠水提物(aqueous extract ofPhyllanthus urinariaL.,AEP)對LPS大鼠學(xué)習(xí)記憶能力及NF-κB 信號通路的影響,探討AEP對炎癥模型大鼠的保護機制,為葉下珠治療神經(jīng)炎癥提供理論基礎(chǔ)。
8 周雄性SPF 級SD 大鼠,體質(zhì)量250 ~290 g [湖南斯萊克景達生物科技有限公司,許可證號:SCXK(湘)2019-0004]。大鼠飼養(yǎng)于桂林醫(yī)學(xué)院動物實驗中心,溫度22 ~24℃,濕度50%~80%,12 h 明暗交替光照。食物和飲用水不受限制。動物飼養(yǎng)、使用符合桂林醫(yī)學(xué)院實驗動物委員會規(guī)定。
葉下珠(廣西省桂林市六合路藥材市場,經(jīng)陳玲琳老師鑒定為大戟科植物葉下珠干燥全草)。IL-1β試劑盒(批號:E-EL-R0012c)、TNF-α試劑盒(批號:E-EL-R2856c)(Elabscience 公 司),NF-κB(批號:4814S)、p-NF-κB(Ser536)(批號:8214)、IκB-α(批號:8242S)、p-IκB-α(Ser32,Ser36)(批號:8219)(Cell Signaling Technology 公 司),GAPDH(Abcam 公司,批號:ab181602-10),辣根過氧化物酶標(biāo)記山羊抗兔IgG(H +L)(批號:A0208)、BCA 試劑盒(批號:P0012)(上海碧云天生物技術(shù)公司),焦油紫(索萊寶生物技術(shù)公司,批號:CA1210),LPS(Sigma-Aldrich 公司,批號:L2880-10MG)。
腦立體定位儀、Morris 水迷宮(瑞沃德生命科技有限公司);蛋白電泳儀(Bio-Rad 公司);化學(xué)發(fā)光成像儀(GE Healthcare 公司);冰凍切片機(Leica Biosystems 公司);正置顯微鏡(Olympus Corporation 公司);酶標(biāo)儀(Bio-Tek 公司)。
葉下珠干燥全草,經(jīng)粉碎機粉碎后,過篩。稱取粉末300 g,加蒸餾水4 L,煮沸提取2 h,待水煎液冷卻后過濾得濾液。濾渣加蒸餾水3.3 L 煮沸,重復(fù)2 次,合并3 次濾液。濾液經(jīng)濃縮后得浸膏67.5 g,浸膏用生理鹽水稀釋成0.025%備用。
大鼠隨機分為對照組(Cont 組)、LPS 模型組(Mod 組)、葉下珠水提物給藥組(AEP 組),每組動物12 只。造模前,AEP 組大鼠給予AEP 250 mg·kg-1灌胃,Cont 組和Mod 組每日給予同等劑量的生理鹽水,每日2 次,連續(xù)給藥3 d。3 d 后,Mod 組和AEP 組大鼠分別于側(cè)腦室(前鹵后 1 mm,中線 2 mm,深度 4.5 mm)注射LPS(1 mg·mL-1,5 μL/只)造模,Cont 組于側(cè)腦室注射等體積生理鹽水。
LPS 造模28 d 后,對大鼠進行水迷宮測試,檢測AEP 對大鼠學(xué)習(xí)記憶功能的作用。正式測試前對大鼠進行連續(xù)3 d 的訓(xùn)練,每日訓(xùn)練4 次,每次間隔1 h,第4日進行測試。訓(xùn)練時,先將大鼠置于平臺上10 s,熟悉周圍環(huán)境,然后分別從4 個象限隨機放入水迷宮。攝像頭記錄大鼠運動軌跡,當(dāng)大鼠上平臺后10 s 停止記錄。如果大鼠在60 s 內(nèi)未上平臺,引導(dǎo)其上平臺,停留10 s。第4日,將大鼠從平臺對面象限放入,記錄大鼠的逃避潛伏期(大鼠到達平臺的時間),游泳距離,游泳速度,以及撤掉平臺后大鼠穿越平臺區(qū)域的次數(shù)。用Smart V 3.0 軟件進行分析。
大鼠經(jīng)10%水合氯醛(350 mg·kg-1)腹腔注射麻醉后,依次用預(yù)冷的生理鹽水、4%多聚甲醛灌流。灌流后的大腦取出后置于4%多聚甲醛中4 ℃過夜,并依次用15%、30%蔗糖溶液脫水。脫水后大腦經(jīng)包埋后,進行冰凍切片,切片厚度為15 μm,選取合適腦片進行尼氏染色。切片放入尼氏染色液60 ℃孵育1 h 后,依次經(jīng)過蒸餾水、95%乙醇、100%乙醇各脫色5 s,乙醇-二甲苯1∶1 溶液、二甲苯溶液透明5 min,中性樹脂膠封片。顯微鏡下觀察尼氏體形態(tài),Image J軟件(V1.8.0)計算尼氏體所占面積比。
大鼠經(jīng)10%水合氯醛(350 mg·kg-1)腹腔注射麻醉后,從下腔靜脈取血約1 mL,置于室溫中2 h,3000 r·min-1離心15 min。取血清,按照試劑盒說明書進行操作,測定血清中IL-1β和TNF-α含量。
大鼠脫頸椎處死后,取海馬和皮層組織進行實驗。組織加預(yù)冷的裂解液裂解后,4℃、12 000 r·min-1離心30 min。取上清液經(jīng)BCA 法定量后制成樣品。樣品經(jīng)SDS-PAGE、轉(zhuǎn)膜、封閉后分別孵育NF-κB(1∶1000)、p-NF-κB(1∶1000)、p-IκB-α(1∶1000)、IκB-α(1∶1000)、GAPDH(1∶10 000)一抗,4℃過夜。次日洗膜后,孵二抗(1∶1000),室溫2 h。洗膜后,加入ECL曝光液,放入凝膠成像系統(tǒng)顯影。Image J 軟件(V1.8.0)進行灰度值分析。
數(shù)據(jù)均用平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤差(Mean±SEM)表示,并采用SPSS 25.0 軟件進行統(tǒng)計學(xué)分析。多組數(shù)據(jù)采用AVONA 進行方差分析,組間差異應(yīng)用LSD 法,P<0.05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
水迷宮實驗結(jié)果見圖1,與Cont 組相比,Mod 組大鼠游泳軌跡目標(biāo)性弱,且逃避潛伏期顯著增加,在游泳速度差異不大的情況下,Mod組的游泳距離明顯增長。同時,撤掉平臺后,Mod 組大鼠穿越平臺的次數(shù)顯著低于Cont 組(P<0.05)。與Mod 組相比,AEP 組游泳軌跡目標(biāo)性強,逃避潛伏期明顯縮短,在速度相差不大的條件下,AEP 組游泳距離明顯短于Mod 組,撤掉平臺后,AEP 組穿越平臺的次數(shù)顯著多于Mod組(P<0.05)。
圖1 AEP 對LPS 導(dǎo)致的大鼠認知功能障礙的影響(n =8)Fig 1 Effect of AEP on LPS-induced cognitive deficit(n =8)
尼氏染色結(jié)果見圖2,與Cont 組相比,Mod組大鼠海馬CA1、CA3 區(qū)域尼氏體的數(shù)量明顯減少,細胞核固縮,著色變淺,排列稀疏,而AEP組大鼠海馬CA1、CA3 區(qū)域尼氏體數(shù)量增加,細胞核相對較飽滿,著色加深、密度明顯增大。各組海馬DG 區(qū)尼氏體數(shù)量和形態(tài)無明顯差異。
圖2 AEP 對LPS 導(dǎo)致的大腦神經(jīng)元損傷的影響(n =5,40×)Fig 2 Effect of AEP on brain neuron damage caused by LPS(n =5,40×)
由表1可知,與Cont 組比,Mod 組TNF-α和IL-1β水平明顯升高(P<0.05);與Mod 組比,AEP 組TNF-α和IL-1β水平明顯降低(P<0.05)。
表1 AEP 對大鼠血清IL-1β 和TNF-α 的影響(n =5)Tab 1 Effect of AEP on rat serum IL-1β and TNF-α (n =5)
各組大鼠大腦海馬和皮層的NF-κB 和IκB-α蛋白及其磷酸化水平變化如圖3所示,Mod 組相對于Cont 組p-NF-κB 和p-IκB-α蛋白表達顯著提高(P<0.05);而APE 組與Mod 組相比p-NF-κB和p-IκB-α蛋白表達水平顯著降低(P<0.05)。
圖3 大鼠海馬和皮層NF-κB 和IκB-α 蛋白及其磷酸化水平變化(n =3)Fig 3 NF-κB and IκB-α proteins and their phosphorylation levels in the hippocampus and neurocortex of rats(n =3)
神經(jīng)病理學(xué)中,神經(jīng)炎癥是神經(jīng)退行性疾病病因的一種,在神經(jīng)疾病的發(fā)展起重要作用[7]。在損傷的初始階段,神經(jīng)炎癥具有抵御外界刺激和修復(fù)組織損傷的作用[8]。隨著損傷的發(fā)展,過度的神經(jīng)炎癥會加劇對神經(jīng)元的損害[9]。葉下珠含有豐富的黃酮等生物活性成分[10]。植物化學(xué)研究表明,植物類黃酮化合物對改善神經(jīng)元功能受損,緩解中樞神經(jīng)炎癥具有重要作用[11]。
LPS 誘導(dǎo)的神經(jīng)炎癥可能會導(dǎo)致學(xué)習(xí)記憶能力和認知表現(xiàn)功能減退[12]。本實驗采用灌胃給予AEP,研究其對大鼠炎癥模型學(xué)習(xí)記憶能力的影響。定位導(dǎo)航實驗結(jié)果顯示,AEP 組相對于Mod組逃避潛伏期和游泳距離明顯縮短。空間探索實驗結(jié)果顯示,AEP 組穿越平臺次數(shù)明顯多于Mod組。水迷宮實驗說明AEP 可顯著改善大鼠的空間學(xué)習(xí)和記憶能力,其機制可能與AEP 改善LPS 誘導(dǎo)的大腦神經(jīng)元損傷有關(guān),因此本研究針對這一推論,進行了大鼠大腦神經(jīng)元損傷病理檢測。通過尼氏染色觀察海馬CA1、CA3、DG 組織區(qū)域的病理損傷情況,AEP 組大鼠海馬CA1、CA3 區(qū)域相對于Mod 組,尼氏體數(shù)量增加,細胞核相對較飽滿,著色加深、密度明顯增大,受損的神經(jīng)元得到恢復(fù),說明AEP 對LPS 誘導(dǎo)的神經(jīng)元損傷具有明顯改善作用。同時,有文獻報道,大腦皮層和海馬組織神經(jīng)元結(jié)構(gòu)異常影響大腦學(xué)習(xí)記憶能力[13],尼氏體是神經(jīng)元胞體的特征結(jié)構(gòu)[14],神經(jīng)元受損時,尼氏體發(fā)生溶解和消失[15],因此,AEP 改善神經(jīng)元損傷,可能是其改善大鼠學(xué)習(xí)記憶的原因。另外,海馬頭部由CA1區(qū)域折疊而成,其內(nèi)部神經(jīng)元對外界刺激相對敏感[16],神經(jīng)炎癥可輕易地損傷CA1 區(qū)神經(jīng)元,而對其他亞區(qū)神經(jīng)元損傷較小[17]。因此,本研究觀察到CA1 區(qū)尼氏體受損較為嚴重,CA3 次之,而海馬DG 區(qū)尼氏體數(shù)量和形態(tài)無顯著性差異。
IL-1β和TNF-α作為促炎細胞因子,主要參與神經(jīng)炎癥的形成[18-19]。本實驗研究結(jié)果表明,Mod 組大鼠血清中IL-1β和TNF-α炎癥因子水平相對Cont 組顯著升高,經(jīng)AEP 給藥治療后,AEP 組相對于Mod 組,血清中炎癥因子水平顯著降低。說明AEP 對LPS 誘導(dǎo)的炎癥因子有抑制作用。這提示,AEP 可能通過降低1L-1β和TNF-α水平,對神經(jīng)炎癥產(chǎn)生抑制作用。LPS誘導(dǎo)的大鼠腦部神經(jīng)炎癥,促使白細胞增多,進而促進1L-1β和TNF-α等促炎因子活化,從而導(dǎo)致炎癥級聯(lián)反應(yīng)[20-21]。為驗證AEP 抑制神經(jīng)炎癥的具體作用機制,本實驗對NF-κB 信號通路進行探討。NF-κB 是一種細胞內(nèi)轉(zhuǎn)錄因子,靜息狀態(tài)下以二聚體形式聚集在細胞質(zhì),活化后進入細胞核,調(diào)節(jié)基因轉(zhuǎn)錄,參與疾病形成[22]。炎癥條件下,NF-κB 的抑制性蛋白α(IκB-α)磷酸激活發(fā)生降解,使NF-κB 與其分離,磷酸激活的NF-κB進入細胞核,促進IL-1β、TNF-α水平增高,引發(fā)慢性炎癥[23-24]。本研究結(jié)果顯示,AEP 抑制NFκB、IκB-α蛋白的磷酸化表達,說明AEP 可能通過抑制NF-κB 信號通路激活,抑制炎癥因子釋放,實現(xiàn)對大腦神經(jīng)炎癥的保護作用。
綜上所述,AEP 可能通過抑制NF-κB 信號通路活化,緩解大鼠學(xué)習(xí)記憶損傷和認知障礙,改善神經(jīng)元受損,減輕炎癥反應(yīng),發(fā)揮對LPS 誘導(dǎo)的神經(jīng)炎癥的大腦保護作用。AEP 對治療LPS 誘導(dǎo)的神經(jīng)炎癥方面具有潛在的應(yīng)用價值。