曾維銓,劉 晶,連曉文,林巧璇,盧莉銘,郭澤興,楊金碩,陸潤銘,修忠標,4*
(1.福建中醫(yī)藥大學附屬康復醫(yī)院,福建 福州350003;2.福建中醫(yī)藥大學附屬人民醫(yī)院,福建 福州350004;3.福建中醫(yī)藥大學中醫(yī)學院,福建 福州350122;4.中醫(yī)骨傷及運動康復教育部重點實驗室,福建 福州350122)
膝骨關節(jié)炎(knee osteoarthritis,KOA)是臨床常見骨關節(jié)病,有效延緩軟骨退變進程是臨床防治KOA亟待解決的 難題[1],調節(jié)骨骼肌功能、恢復膝關節(jié)筋骨平衡是防治KOA有效策略[2]。針刀療法擅長松解慢性損傷肌肉、韌帶粘連、瘢痕和疏通堵塞,具有良好力學調節(jié)作用[3-4],可有效緩解KOA關節(jié)疼痛和改善關節(jié)功能[5],然而針刀治療KOA的力學調節(jié)機制尚不明確。研究表明膝關節(jié)筋骨失衡導致的異常軟骨應力能活化香草素受體亞家族4(transient receptor potential vanilloid 4,TRPV4)通路,促進軟骨細胞凋亡[6]。因此,本研究通過改良Videman法建立KOA兔模型,從TRPV4通路介導軟骨細胞凋亡的角度入手,探討針刀治療KOA可能的作用及機制。
1.1 實驗動物 健康雄性6月齡新西蘭大白兔24只,體質量(2.0±0.5)kg,訂購于上海松聯(lián)實驗動物責任有限公司,生產(chǎn)許可證號:SCXK(滬)2017-0008,委托福建省中醫(yī)藥研究院實驗動物中心代購并飼養(yǎng),合格證號:SYXK(閩)2016-0005。實驗動物單籠喂養(yǎng),飼養(yǎng)房溫度20~25℃,濕度30%~60%,自然光照,自由進食、飲水。本實驗已通過福建省中醫(yī)藥研究院動物實驗倫理委員會批準(批件號:FJATCMIAEC2019037),整個實驗過程中對動物的各種處理均遵照中華人民共和國科技部2006年頒布的有關動物的使用及倫理學規(guī)定。
1.2 實驗試劑HE染色試劑盒(北京索萊寶科技有限公司);TRPV4抗體(美國abcam公司);Caspase-3抗體(北京博奧森生物技術有限公司);二抗(武漢三鷹生物技術有限公司);RN54-EASYspin Plus骨組織RNA快速提取試劑盒(北京愛德萊生物科技有限公司);mRNA逆轉錄試劑盒(中國北京康為世紀有限公司);戊巴比妥鈉、10%EDTA(上海國藥集團化學試劑有限公司);4%多聚甲醛、10% EDTA、0.9% NaCl注射液(南京丁貝生物有限公司)。
1.3 實驗儀器 一次性使用0.4 mm×40 mm無菌小針刀(江西老宗醫(yī)醫(yī)療器械有限公司);光學顯微鏡、自動脫水機、組織包埋機、Leica 2025石蠟切片(德國Leica公司);高分子石膏(陜西安信醫(yī)學技術開發(fā)有限公司);普通石膏(浦江健宇衛(wèi)生材料有限公司);手術刀片及相關器械(上海醫(yī)療器械批發(fā)有限公司);一次性包埋盒、包埋模具(上海源葉生物技術有限公司);粘附載玻片、蓋玻片(江蘇世泰實驗器材有限公司)。
2.1 分組與造模 新西蘭大白兔適應性飼養(yǎng)1周后,按照體質量進行編號,采用隨機數(shù)字表法分為空白組、模型組、針刀組,每組各8只。參照本團隊前期研究的改良Videman法[7],將兔子仰臥于固定架上,膝前放置石膏托,高分子石膏繃帶單層螺旋纏繞,保持膝關節(jié)伸直中立位0°,踝關節(jié)背曲60°,最后使用防啃咬繃帶環(huán)形纏繞高分子石膏表面。造模6周后,膝關節(jié)Lequesne MG行為學評分增高,X線和MRI影像學檢測示關節(jié)間隙變窄、軟骨面欠光滑,則造模成功。
2.2 干預 造模成功1周后,針刀組依據(jù)《中國經(jīng)筋學》[8]膝關節(jié)經(jīng)筋病灶點命名及定位,根據(jù)兔的骨度分寸,選取治療點“鶴頂次”“髕外上”“髕內(nèi)上”“髕外下”“髕內(nèi)下”“陰陵上”。施術部位消毒,鋪無菌洞巾,采用一次性0.4 mm×40 mm無菌小針刀進行松解,刀口線垂直皮膚進針刀,針刀抵達病變處行提插刀法松解,范圍不超過0.5 cm。見圖1。每7 d干預1次,共干預4次??瞻捉M、模型組常規(guī)飼養(yǎng),未做其他特殊處理。
圖1 針刀組針刀治療示意圖
2.3 取材 于針刀干預結束后1周,經(jīng)腹腔麻醉后耳緣靜脈空氣栓塞處死,迅速解剖左側膝關節(jié),取出兔左側膝關節(jié)股骨髁軟骨組織。
2.4 HE染色光鏡觀察及Mankin’s評分 兔左側膝關節(jié)股骨髁軟骨組織粗修后于4%多聚甲醛中固定24 h,10% EDTA脫鈣完全后修切,常規(guī)石蠟包埋后5μm切片。常規(guī)脫蠟后,浸入蘇木精液中染色20 min,10%鹽酸乙醇分色3 s,PBS返藍20 min,入伊紅染料復染30 s,染色完成后用中性樹膠封片。光鏡下對軟骨組織結構進行觀察及圖像采集,按照軟骨部位選取1 024×768像素大小的圖像,每張載玻片選擇3個視野,參照Mankin’s評分[9]進行分數(shù)統(tǒng)計,取其平均值。分級標準:正常0~2分,輕度病變3~7分,中度病變8~11分,重度病變12~14分。2.5 Tunel染色 石蠟組織切片經(jīng)脫蠟水化處理后,PBS漂洗5 min×2次;滴加蛋白酶K工作液,37℃反應30 min,PBS漂洗5 min×2次;浸入封閉液(1 mL 30%H2O2溶于9 mL甲醇)中室溫封閉10 min,PBS漂洗5 min×2次;滴加TdT酶反應液,加蓋玻片37℃避光濕潤反應60 min,PBS漂洗5 min×3次;滴加Streptavidin-HRP工作液,加蓋玻片37℃濕潤避光反應30 min,PBS漂洗5 min×3次;DAB顯色,雙蒸水充分漂洗終止反應;蘇木素復染,逐級乙醇脫水,二甲苯透明,中性樹膠封片。通過光學顯微鏡觀察,細胞核呈棕黃色為陽性著色。采用HPIAS 21000圖像分析系統(tǒng)進行分析處理,選擇細胞分布較均勻的高倍視野計數(shù),根據(jù)公式計算細胞凋亡指數(shù)。
2.6 RT-PCR檢測軟骨組織TRPV4、Caspase-3 mRNA表達 取兔膝關節(jié)軟骨置于研缽中,加入液氮快速研磨,使用骨組織RNA提取試劑盒提取總RNA,核酸紫外分光光度計測定RNA純度和濃度。采用MMLV-PCR擴增試劑盒反轉錄二步法,cDNA置于-20℃保存?zhèn)溆?。PCR反應體系中含標本體系3μL,引物體系17μL,總體系20μL。引物由上海生物工程股份有限公司設計,GAPDH正向:TGGAATCCA CTGGCGTCTTCAC,反 向:AGGATGCGTTGCTGACA ATCTTGA;TRPV4正 向:AAGTTTGGAGCGGTCTCG TT,反向:GGTAAGGGTATGGCGGAGTG;Caspase-3正向:AGCAAATCAATGGACTCTGGGAA,反向:CCC GAGGTTTGCTGCATTTAC。PCR反 應 條 件:95℃10 min,95℃15 s,72℃30 s,共40個循環(huán),采用相對定量2-ΔΔCt法分析結果。
2.7 Western blot檢測軟骨組織TRPV4、Caspase-3蛋白表達 組織裂解法提取兔軟骨組織總蛋白,BCA法測定蛋白含量后,SDS-PAGE凝膠電泳,NC膜轉印,一抗、二抗孵育,ECL顯色曝光。Gel Doc 2000凝膠成像系統(tǒng)成像,Quantity One軟件分析蛋白條帶灰度值,以GAPDH作為內(nèi)參照蛋白進行校準,采用目標蛋白條帶灰度值/GAPDH條帶灰度值來表示目的蛋白相對表達水平。
2.8 統(tǒng)計學方法 采用SPSS 20.0軟件進行統(tǒng)計分析。計量資料服從正態(tài)分布采用(±s)表示,組間比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用LSD-t檢驗。不服從正態(tài)分布采用中位數(shù)(四分位數(shù)間距)[M(IQR)]表示,采用秩和檢驗進行比較。
3.1 3組兔實驗情況 實驗期間各組兔精神狀態(tài)良好,體質量、進食量基本一致,實驗過程中動物無死亡。
3.2 3組兔軟骨組織HE染色形態(tài)學觀察 空白組軟骨表面光滑,層次結構清晰,細胞排列規(guī)整,潮線清晰完整;模型組軟骨表面不光滑,部分缺損,細胞分布不均勻,潮線紊亂;針刀組軟骨表面較光滑,層次結構較清楚,細胞排列趨于整齊,潮線較模型組完整。見圖2。
3.3 3組兔軟骨組織Mankin’s評分比較 見表1。
圖2 3組兔軟骨組織HE染色圖(×100)
表1 3組兔軟骨組織Mankin’s評分比較[M(IQR)]
3.4 3組兔軟骨組織Tunel染色觀察 空白組可見少量散在的軟骨細胞凋亡;模型組可見大量的軟骨細胞凋亡,呈片狀分布;針刀組軟骨細胞凋亡數(shù)明顯少于模型組,趨于空白組。見圖3。
圖3 3組兔軟骨TUNEL染色圖
表2 3組關節(jié)軟骨細胞凋亡率比較(±s)
表2 3組關節(jié)軟骨細胞凋亡率比較(±s)
注:與空白組比較,1)P<0.05;與模型組比較,2)P<0.05。
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3.5 3組兔軟骨細胞凋亡率比較 見表2。
3.6 3組兔軟骨組 織TRPV4、Caspase-3 mRNA表達比較 見表3。
表3 3組兔軟骨組織TRPV4、Caspase-3 mRNA表達比較(±s)
表3 3組兔軟骨組織TRPV4、Caspase-3 mRNA表達比較(±s)
注:與空白組比較,1)P<0.05;與模型組比較,2)P<0.05。
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3.7 3組兔軟骨組織TRPV4、Caspase-3蛋白表達比較 見圖4、表4。
圖4 3組兔軟骨組織TRPV4、Caspase-3蛋白電泳圖
表4 3組兔軟骨組織TRPV4、Caspase-3蛋白表達比較(±s)
表4 3組兔軟骨組織TRPV4、Caspase-3蛋白表達比較(±s)
注:與空白組比較,1)P<0.05;與模型組比較,2)P<0.05。
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KOA是生物學因素和力學因素共同作用下以關節(jié)軟骨退變?yōu)橹?,最終導致軟骨結構破壞、滑膜增厚、骨質增生及關節(jié)內(nèi)炎癥反應,嚴重影響患者的生活質量[10]。中醫(yī)學經(jīng)筋理論從氣血和力學角度闡明KOA核心病機為“氣血失和,筋骨失衡”,關鍵治則為“解結橫絡、調和氣血、調衡筋骨”[11]。針刀具有“針刺”和“刀割”雙重功效,擅長對病損軟組織粘連、瘢痕、攣縮進行松解和疏通堵塞,主要功效為改善骨骼肌、韌帶功能,調節(jié)力學平衡[12]。因此,基于經(jīng)筋理論針刀循膝周經(jīng)筋病灶點松解是治療KOA有效途徑[13]。研究表明,“鶴頂次”“髕外上”“髕內(nèi)上”“髕外下”“髕內(nèi)下”和“陰陵上”為KOA高頻經(jīng)筋病灶點和治療點[14-15],基于此,本團隊選取上述病灶點行針刀松解,以達到調節(jié)膝關節(jié)“氣血和暢、筋骨平衡”目的,從而有效緩解KOA疼痛和功能障礙,延緩軟骨退變。
研究結果顯示,與空白組比較,模型組軟骨表面不光滑,部分缺損,層次結構不清,細胞分布不均勻,可見細胞簇集,潮線紊亂,Mankin’s評分明顯升高。經(jīng)過針刀干預后,軟骨形態(tài)及Mankin’s評分均明顯改善,表明基于經(jīng)筋理論針刀松解能夠有效延緩KOA兔軟骨退變。
KOA主要表現(xiàn)為軟骨細胞凋亡顯著增多,其增殖、凋亡動態(tài)平衡被打破,關節(jié)軟骨細胞大量減少,最終導致關節(jié)軟骨退變[16]。本研究運用Tunel染色檢測軟骨細胞凋亡情況,結果表明模型組軟骨細胞凋亡率顯著高于空白組,而針刀組軟骨細胞凋亡率比模型組明顯降低,這提示基于經(jīng)筋理論針刀松解能夠減少KOA兔軟骨細胞凋亡,延緩軟骨退變。
TRPV4是一種機械敏感離子通道,在軟骨、骨和滑膜等多種肌肉骨骼組織中廣泛表達,介導軟骨細胞對機械應力的反應[17]。膝關節(jié)筋骨失衡過度機械應力可活化TRPV4,引起Ca2+大量內(nèi)流,激活細胞內(nèi)凋亡分子Caspase-3表達,促進軟骨細胞凋亡,加劇軟骨細胞退變。本研究運用RT-PCR和Western blot檢測軟骨TRPV4、Caspase-3分子表達,結果表明模型組軟骨TRPV4、Caspase-3 mRNA和蛋白的表達較空白組顯著增高,而針刀組軟骨TRPV4、Caspase-3 mRNA和蛋白的表達較模型組顯著降低??梢?,基于經(jīng)筋理論針刀松解能夠抑制TRPV4信號通路,使TRPV4降低表達,進而下調下游靶點促凋亡蛋白Caspase-3表達,從而有效減少軟骨細胞凋亡,延緩軟骨退變。
綜上所述,基于經(jīng)筋理論運用針刀循膝周常見經(jīng)筋病灶點松解,能有效減少KOA兔軟骨細胞凋亡,延緩軟骨退變,其作用機制可能與抑制TRPV4通路,下調TRPV4、Caspase-3表達有關。