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    槲皮素通過Nrf2通路對糖尿病大鼠胰腺氧化損傷的拮抗作用機制

    2021-03-31 06:51:04蘇艷瑜李國豪王宇翔丁玉松
    食品科學 2021年5期
    關(guān)鍵詞:槲皮素胰腺抗氧化

    李 陽,蘇艷瑜,李國豪,李 琪,王宇翔,丁玉松

    (石河子大學醫(yī)學院,新疆 石河子 832000)

    糖尿病(diabetes mellitus,DM)是由胰島素分泌缺陷和胰島素作用障礙引起的一類慢性疾病[1-3]。在我國,DM患病人數(shù)持續(xù)增加[4-6]。有研究顯示,2019年全球DM患者已達到1.16億,預測2030年會增加到1.40億,未來將會對社會帶來巨大的經(jīng)濟壓力和負擔[7-8]。

    已有大量研究表明,氧化損傷在DM中起到重要作用,氧化應激除直接對胰島細胞造成損傷外,還影響胰島素分泌[9-11]。因此,抗氧化治療可能是防治DM的重要途經(jīng)。核因子E2相關(guān)因子2(nuclear factor erythroid 2-related factor 2,Nrf2)作為目前發(fā)現(xiàn)的重要抗氧化應激轉(zhuǎn)錄因子,在應激狀態(tài)下啟動下游抗氧化酶體系,在DM發(fā)病中發(fā)揮關(guān)鍵作用[12]。伏旭等[13]研究顯示,通過過表達Nrf2,誘導其下游抗氧化酶的表達,能夠減輕大鼠胰腺氧化損傷,從而對胰腺產(chǎn)生一定的保護作用。槲皮素是一種天然的黃酮類化合物,不僅可通過清除自由基表現(xiàn)出直接的抗氧化作用[14],還可以激活肝臟中的Nrf2信號通路表現(xiàn)出間接的抗氧化作用[15]。目前,槲皮素是否能通過激活胰腺組織中Nrf2通路以拮抗DM大鼠胰腺氧化損傷尚未明確。

    本研究旨在探討槲皮素拮抗DM大鼠胰腺氧化損傷的作用機制,通過建立2型糖尿病(type 2 diabetes mellitus,T2DM)大鼠模型,檢測由DM引起的胰腺氧化損傷,以及槲皮素干預后Nrf2信號通路及其下游關(guān)鍵抗氧化酶蛋白和mRNA的表達,以期為DM對胰腺組織的氧化損傷提供實驗依據(jù),并為槲皮素拮抗DM所致胰腺組織氧化損傷提供一定的理論參考。

    1 材料與方法

    1.1 動物、材料與試劑

    SPF級SD大鼠(動物使用許可證號:SYXK(新)2018-005;生產(chǎn)許可證號:SCXK(新)2018-005),體質(zhì)量(210±10)g,由新疆醫(yī)科大學提供。

    槲皮素上海化學試劑有限公司;鏈脲佐菌素美國Sigma公司;A006-2谷胱甘肽(glutathione,GSH)檢測試劑盒、A001-3超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)檢測試劑盒、A045-3蛋白標準測定試劑盒、A015總抗氧化能力(total antioxidative capability,T-AOC)檢測試劑盒和A003-1丙二醛(malondialdehyde,MDA)檢測試劑盒南京建成生物科技有限公司;NADP(H):醌氧化還原酶1(NADP(H):quinone oxido-reductase-1,NQO1)小鼠單克隆抗體(A180)、血紅素氧合酶1(heme oxygenase 1,HO-1)小鼠單克隆抗體、谷胱甘肽硫轉(zhuǎn)移酶(glutathione S-transferase,GST)pi山羊多克隆抗體、兔多克隆抗體(ab137550)艾博抗(上海)有限公司。

    1.2 儀器與設備

    Accu-Check血糖檢測儀羅氏診斷產(chǎn)品(上海)有限公司;電子天平德國賽多利斯儀器有限公司;FA2004B電子精密天平上海精密科學儀器有限公司;SHA-B恒溫水浴箱上海躍進醫(yī)療儀器有限公司;TGL-16G-A高速冷凍離心機上海安亭化學儀器有限公司;Mu1iskan MK3酶標儀美國Bio-Rad公司;漩渦振蕩儀上海亞榮分析儀器有限公司;手動玻璃勻漿器生工生物工程(上海)股份有限公司;EDC-810實時定量聚合酶鏈式反應(polymerase chain reaction,PCR)儀美國ABI公司。

    1.3 方法

    1.3.1 灌胃溶液的配制

    低劑量槲皮素混懸液:參考楊冉等[16]的方法,稱取1 g槲皮素溶于50 mL去離子水中,配制質(zhì)量濃度20 mg/mL的槲皮素混懸液;高劑量槲皮素混懸液:稱取1 g槲皮素并溶于25 mL去離子水中,配制質(zhì)量濃度為40 mg/mL的槲皮素混懸液。

    1.3.2 動物模型的建立

    48 只SD大鼠,體質(zhì)量(210±10)g,隨機選取10 只大鼠作為空白對照組,將剩余38 只大鼠進行T2DM造模。造模具體方法為每天飼喂高脂高糖飼料,飼喂2 周后腹腔注射鏈脲佐菌素30 mg/kgmb,每周1 次,共2 次。以大鼠隨機血糖濃度不低于16.7 mmol/L作為造模成功的判斷標準。剔除造模失敗的8 只大鼠,將血糖水平達標的30 只大鼠按血糖濃度分層隨機分為T2DM模型組、低劑量槲皮素(L-QU)干預組、高劑量槲皮素(H-QU)干預組,每組10 只。正常對照組、T2DM模型組大鼠均灌胃去離子水,L-QU、H-QU干預組大鼠分別以100、200 mg/kgmb的劑量灌胃相應槲皮素混懸液,每天1 次,干預12 周。實驗期間大鼠自由飲水、攝食,每周定期測定大鼠體質(zhì)量、血糖水平,觀察并記錄大鼠活動情況、飲水量、攝食量、尿液量。

    1.3.3 血液標本采集和胰腺組織提取

    大鼠麻醉后眼球取血,立即離心(3 600 r/min、10 min),收集血清。頸椎脫臼處死大鼠,即刻取出胰腺組織,用預冷生理鹽水沖洗血漬,待濾紙吸干后,用精準電子天平稱質(zhì)量。眼科剪分取0.4 g胰腺組織,置于玻璃勻漿管口剪碎,加入9 g/100 mL生理鹽水,充分研磨至無纖維狀物質(zhì),制成10 g/100 mL的胰腺組織勻漿,4 ℃、3 600 r/min離心10 min,取上清液,于-20 ℃保存,使用前室溫下解凍。

    1.3.4 血清胰島素水平測定

    采用放射免疫法[17]檢測大鼠血清胰島素水平。胰島素抵抗(homeostasis model assessment of insulin resistance,HOMA-IR)指數(shù)按下式計算。

    1.3.5 胰腺組織氧化和抗氧化指標測定

    按照試劑盒說明書步驟,分別采用硫代巴比妥酸法測定大鼠胰腺組織MDA含量,微量酶標法測定GSH濃度和谷胱甘肽過氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px)活力,WST-1法測定SOD活力,比色法測定T-AOC,考馬斯亮藍法測定蛋白含量。

    1.3.6 免疫印跡檢測胰腺抗氧化酶表達量

    在RIPA裂解液中加入蛋白酶抑制劑混合物,混勻后置于冰上。蛋白定量后加入上樣緩沖液并煮沸,通過十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE)分離樣品并轉(zhuǎn)膜。用TBST洗滌3 次后,用牛血清白蛋白封閉2 h,再用TBST洗滌3 次,加入二抗在室溫下孵育,用TBST洗滌3 次,用ECL試劑顯影,以GAPDH為內(nèi)參,通過光密度法測定Nrf2、HO-1、GST、NQO1蛋白的相對表達量[18]。

    1.3.7 實時定量PCR測定Nrf2信號通路抗氧化酶mRNA表達量

    檢測Nrf2、GST、HO-1、NQO1mRNA表達量。TRIzol法提取胰腺組織中總RNA,將符合條件的RNA反轉(zhuǎn)錄成cRNA,反應條件:25 ℃、5 min,50 ℃、15 min,85 ℃、5 min,4 ℃、10 min。cDNA進行6 倍稀釋,反應體系:4 μL 6×cDNA、0.4 μL 10 μmol/L正向引物、0.4 μL 10 μmol/L反向引物、10 μL SYBR Green Master Mix、0.4 μL 50×ROX Reference Dye 2、4.8 μL超純水。反應條件:50 ℃、2 min,95 ℃、10 min;95 ℃、30 s,60 ℃、30 s,40 個循環(huán)。根據(jù)基因序列設計特異性引物,以GAPDH為內(nèi)參,運用實時熒光定量PCR檢測,以2-ΔΔCt進行數(shù)據(jù)分析。引物序列如表1所示。

    表 1 PCR擴增基因引物序列Table 1 Primer sequences used for PCR amplification of genes

    1.4 數(shù)據(jù)處理與分析

    采用SPSS 19.0軟件進行數(shù)據(jù)分析,用Graphpad Prism軟件繪圖。數(shù)據(jù)服從正態(tài)分布,結(jié)果以±s表示,多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用Bonferroni法。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 實驗期間大鼠一般情況

    正常對照組大鼠一般狀況良好,毛發(fā)光澤、活動迅速,攝食量、飲水量、尿液量均正常;T2DM模型組大鼠情況一般較差,精神萎靡、毛發(fā)無光澤、弓背蜷體、反應遲鈍,攝食量、飲水量、尿液量均增加。與T2DM模型組相比,L-QU、H-QU干預組大鼠的上述癥狀有所改善。

    2.2 槲皮素干預后大鼠體質(zhì)量和血糖的動態(tài)變化趨勢

    圖 1 槲皮素干預后T2DM大鼠體質(zhì)量的變化趨勢Fig. 1 Variation trend of body mass in T2DM rats with quercetin intervention

    表 2 槲皮素干預對T2DM大鼠體質(zhì)量和血糖濃度的影響Table 2 Effect of quercetin on body mass and blood glucose levels in T2DM rats

    由表2可知,各組大鼠初始體質(zhì)量無統(tǒng)計學差異(P>0.05),經(jīng)槲皮素干預12 周后,與正常對照組相比,T2DM組大鼠體質(zhì)量顯著下降(P<0.05)。結(jié)合實驗期間大鼠體質(zhì)量的變化趨勢(圖1)分析,正常對照組大鼠體質(zhì)量始終呈上升趨勢,T2DM組大鼠體質(zhì)量下降幅度最大,L-QU、H-QU干預組大鼠體質(zhì)量下降幅度較T2DM組小。

    由表2可知,造模結(jié)束后與正常對照組相比,T2DM模型組大鼠血糖濃度顯著升高(P<0.05);L-QU、H-QU干預組大鼠血糖濃度與T2DM組無統(tǒng)計學差異(P>0.05);槲皮素干預12 周后,與T2DM模型組相比,L-QU、H-QU干預組大鼠血糖濃度均顯著降低(P<0.05)。以上結(jié)果表明,槲皮素可以降低T2DM大鼠血糖濃度。

    2.3 槲皮素干預后大鼠血清胰島素水平的變化

    表 3 槲皮素干預對T2DM大鼠血清胰島素含量和HOMA-IR指數(shù)的影響Table 3 Effect of quercetin on serum insulin levels and HOMA-IR index in T2DM rats

    由表3可知,槲皮素干預12 周后,與正常對照組相比,T2DM模型組大鼠的血清胰島素含量顯著降低(P<0.05),HOMA-IR指數(shù)顯著升高(P<0.05);與T2DM模型組相比,L-QU、H-QU干預組大鼠HOMA-IR指數(shù)顯著下降(P<0.05),表明槲皮素干預可以減輕T2DM大鼠的胰島素抵抗。

    2.4 槲皮素干預后大鼠胰腺的氧化損傷變化

    表 4 槲皮素干預對T2DM大鼠胰腺氧化損傷的影響Table 4 Effect of quercetin on oxidative pancreatic damage in T2DM rats

    由表4可知,槲皮素干預12 周后,與T2DM模型組相比,L-QU、H-QU干預組大鼠胰腺MDA含量均顯著降低(P<0.05),SOD活力、T-AOC水平、GSH-Px活力和GSH濃度均顯著上升(P<0.05)。結(jié)果表明,低、高劑量的槲皮素干預可以減輕T2DM大鼠胰腺組織氧化損傷,可能與SOD、T-AOC、GSH-Px以及GSH水平的提高有關(guān),機體抗氧化能力的提高使T2DM大鼠的血糖水平有所改善,并減輕胰島素抵抗。

    2.5 槲皮素干預后大鼠胰腺中Nrf2、HO-1、GST、NQO1蛋白表達的變化

    由圖2可知,槲皮素干預12 周后,與T2DM模型組相比,L-QU、H-QU干預組大鼠胰腺Nrf2、HO-1、GST、NQO1蛋白的相對表達量均顯著上升(P<0.05),表明槲皮素干預可以提升T2DM大鼠胰腺Nrf2蛋白的表達,從而激活下游抗氧化酶,使HO-1、GST、NQO1蛋白的表達上調(diào),從而使T2DM大鼠胰腺內(nèi)MDA含量顯著降低(P<0.05),改善胰腺氧化損傷,降低血糖水平,并減輕胰島素抵抗。

    圖 2 槲皮素干預對T2DM大鼠胰腺Nrf2、NQO1、HO-1、GST蛋白表達的影響Fig. 2 Effect of quercetin on Nrf2, NQO1, HO-1 and GST protein expression in T2DM rats

    2.6 槲皮素干預后大鼠胰腺中Nrf2、NQO1、GST、HO-1 mRNA表達的變化

    圖 3 槲皮素干預對T2DM大鼠胰腺Nrf2、NQO1、GST、HO-1 mRNA相對表達量的影響Fig. 3 Effect of quercetin on mRNA expression levels of Nrf2, NQO1,GST and HO-1 in T2DM rats

    由圖3可知,槲皮素干預12 周后,與T2DM模型組相比,L-QU、H-QU干預組大鼠胰腺Nrf2、HO-1、NQO1的mRNA相對表達量均顯著升高(P<0.05),L-QU干預組大鼠胰腺GSTmRNA相對表達量與T2DM模型組相比無統(tǒng)計學差異(P>0.05),僅H-QU干預組大鼠的胰腺GSTmRNA相對表達量顯著升高(P<0.05)。表明槲皮素干預可能通過激活Nrf2通路,上調(diào)Nrf2mRNA表達水平,進而上調(diào)下游相關(guān)抗氧化酶表達,使T2DM大鼠胰腺內(nèi)MDA含量顯著下降,減輕胰腺氧化損傷。

    3 討 論

    DM已經(jīng)成為危害我國城鄉(xiāng)居民健康的重大公共衛(wèi)生問題,DM及其并發(fā)癥的防治主要是通過降糖藥物和胰島素控制血糖,但血糖控制效果況并不理想[19-21]。長期使用降糖藥物會有明顯的副作用,植物化學物具有獲取方便、廉價、副作用小等特點,受到研究者的青睞[22]。

    多項研究表明槲皮素對DM患者具有一定的保護作用[23-25]。本研究結(jié)果表明,槲皮素干預12 周后,與T2DM模型組相比,L-QU、H-QU干預組大鼠的血糖濃度、HOMA-IR指數(shù)顯著降低(P<0.05),這一結(jié)果與Wang Zhenzhi等[26]的研究結(jié)果一致。這說明槲皮素具有降血糖作用,可以減輕T2DM大鼠的胰島素抵抗。

    氧化應激在DM發(fā)病過程中具有非常關(guān)鍵的作用。隨著人們對氧化應激認識的不斷深入,通過抗氧化途徑尋找預防和治療DM及其并發(fā)癥的方法,使抗氧化治療有望成為一種新的DM及其并發(fā)癥的防治手段[27]。研究表明,氧化應激參與DM發(fā)生、發(fā)展的整個過程,減輕氧化損傷可能會阻止或延緩DM發(fā)展及其并發(fā)癥的發(fā)生。DM患者由于胰島β細胞受損,其體內(nèi)抗氧化酶含量及活性相對降低,高糖聚集形成的活性氧簇也會直接損傷胰島β細胞[28]。王建禮等[29]研究發(fā)現(xiàn),與T2DM模型大鼠相比,槲皮素干預使T2DM大鼠血清MDA濃度降低,SOD活力明顯上升,減輕了氧化損傷,從而發(fā)揮對胰腺的保護作用。本實驗發(fā)現(xiàn),與T2DM模型組相比,L-QU、H-QU干預組大鼠胰腺的MDA含量顯著降低,SOD活力、T-AOC水平、GSH濃度、GSH-Px活力均顯著上升,說明槲皮素干預可以減輕T2DM大鼠胰腺氧化損傷并能提高胰腺抗氧化能力。

    有研究表明,Nrf2與抗氧化反應元件(anti-oxidative response element,ARE)結(jié)合,啟動下游II相解毒酶、抗氧化蛋白、蛋白酶體/分子伴侶等基因轉(zhuǎn)錄和表達以抵抗氧化應激[30]。Nrf2/ARE信號通路是機體抵抗外界氧化的防御性轉(zhuǎn)導通路,能夠提高機體的抗氧化能力[31]。Nrf2通路作為重要的內(nèi)源性抗氧化應激通路,與DM及其并發(fā)癥的發(fā)生、發(fā)展之間有著密切聯(lián)系,并有望成為極具前景的DM干預新靶標[32]。

    江穎娟等[14]研究發(fā)現(xiàn),槲皮素可通過激活Nrf2信號通路上調(diào)HO-1、GST、NQO1蛋白及其mRNA表達水平,進而對肝臟氧化損傷產(chǎn)生一定的保護作用。Wu Yuanseng等[33]研究結(jié)果顯示,Nrf2信號通路被激活后,可拮抗高糖所致氧化應激誘導的胰島β細胞損傷。伏旭等[13]研究發(fā)現(xiàn),蛙皮素聯(lián)合脂多糖能夠誘導急性胰腺炎大鼠通過Nrf2蛋白的過表達,顯著上調(diào)胰腺中HO-1、NQO1蛋白及其mRNA表達水平,從而拮抗胰腺氧化損傷。本研究結(jié)果顯示,與T2DM模型組大鼠相比,L-QU、H-QU干預組大鼠胰腺Nrf2蛋白及其mRNA表達水平均顯著上升,下游抗氧化酶HO-1、NQO1的蛋白及其mRNA表達量均顯著上升,表明槲皮素可通過激活Nrf2通路,上調(diào)下游相關(guān)抗氧化酶表達,拮抗DM所致胰腺氧化損傷。

    槲皮素作為防治DM的天然植物化學物質(zhì)一直備受關(guān)注。多項研究結(jié)果表明,槲皮素具有調(diào)節(jié)血糖的作用[23-24],但機制尚不明確。本研究結(jié)果表明,槲皮素可能是通過激活胰腺組織Nrf2信號通路,調(diào)節(jié)下游抗氧化酶表達,進而減輕胰腺氧化損傷,改善胰島素抵抗,調(diào)節(jié)血糖水平,從而發(fā)揮防治DM的作用。

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