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    馬鈴薯蛋白-黃原膠微凝膠的制備及其乳化特性研究

    2021-03-10 08:51:05劉興麗楊龍松趙雙麗吳鳳張華
    關(guān)鍵詞:靜電乳液乳化

    劉興麗 楊龍松 趙雙麗 吳鳳 張華

    摘要:以馬鈴薯蛋白(PP)和黃原膠(XG)為原料,通過研究不同pH值、熱處理條件和PP/XG質(zhì)量比確定馬鈴薯蛋白-黃原膠微凝膠(PP-XGM)的最佳制備條件,對該條件下制備的PP-XGM結(jié)構(gòu)進行表征,以動力學穩(wěn)定性指數(shù)(TSI)為指標對其乳化穩(wěn)定性進行研究.結(jié)果表明:PP-XGM的最佳制備條件為PP/XG質(zhì)量比1:1,pH值3.0,80 ℃熱處理30 min;與PP-XG相比,PP-XGM的粒徑更大,多分散系數(shù)更小,顆粒分布更均勻;與PP相比,PP-XG和PP-XGM的最大吸收波長λmax發(fā)生了不同程度的藍移,且PP-XGM的熒光強度(FI)下降最顯著;采用透射電鏡發(fā)現(xiàn)PP-XGM呈核殼結(jié)構(gòu);在油相體積分數(shù)相同的條件下,PP-XGM的乳化穩(wěn)定性較PP顯著提高.

    Abstract:

    Potato protein (PP) and xanthan gum (XG) were used as raw materials.The optimal preparation conditions of xanthan gum microgel (PP-XGM) were determined through different pH value,heat treatment conditions,and potato protein/xanthan gum mass ratio.The structure of the PP-XGM prepared under this condition was characterized.The stability kinetic index was used as an indicator to study its emulsification stability.The results showed that the best preparation conditions for PP-XGM were PP/XG mass ratio of 1:1,pH value 3.0,and 80 ℃ water bath heating for 30 min.Compared with PP-XG,PP-XGM had larger particle size,smaller polydispersity coefficient and more uniform particle distribution.Compared with PP,the maximum absorption wavelength λmax of PP-XG and PP-XGM had a different degree of blue shift,and the fluorescence intensity FI of PP-XGM had the most significant decrease.Using projection electron microscopy,it was found that PP-XGM had a core-shell structure.Under the same oil phase volume fraction,the emulsion stability of PP-XGM was significantly higher than that of PP.

    0 引言

    馬鈴薯蛋白(PP)為馬鈴薯淀粉加工后的副產(chǎn)物[1],其氨基酸組成比例均衡,含有大多數(shù)谷物沒有的賴氨酸,營養(yǎng)價值可與動物蛋白媲美[2].PP按相對分子質(zhì)量大小可分為三部分:高相對分子質(zhì)量蛋白、馬鈴薯糖蛋白、蛋白酶抑制劑[3].其中,馬鈴薯糖蛋白具有良好的凝膠形成性、起泡性、乳化性等功能性質(zhì)[4].目前,我國對PP的研究較少且不深入,主要集中在淀粉廢液中蛋白的分離、改性等方面.

    微凝膠是通過生物大分子間的交聯(lián)形成三維網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu),同時保持大量的溶劑分子、尺寸在微米級及以下的凝膠顆粒[5].微凝膠在穩(wěn)定乳液等方面有著廣泛的應(yīng)用,其制備方法主要包括靜電復(fù)合法、噴射均質(zhì)法等[6].其中,靜電復(fù)合法是通過兩種或兩種以上聚合物間的靜電吸引力而相互聚集,如通過陰離子多糖與帶正電的蛋白質(zhì)靜電復(fù)合制備微凝膠.B.Yin等[7]利用大豆蛋白與大豆多糖,在pH值為3.5時所制備的靜電復(fù)合物具有良好的乳化能力,乳液粒徑達到250 nm,經(jīng)過加熱后的乳液可在NaCl濃度為200 mmol/L或pH值為2~8的介質(zhì)中保持穩(wěn)定.T.Tran等[8]通過研究大豆可溶性多糖對酸性大豆蛋白分散液和乳狀液的穩(wěn)定作用發(fā)現(xiàn),二者之間相互作用的本質(zhì)是靜電復(fù)合,所得靜電復(fù)合物可通過空間排斥作用有效改善基于大豆分離蛋白的O/W乳液的動力學穩(wěn)定性.樊雪靜等[9]利用大豆分離蛋白與寡糖在pH值為6.0時制備了靜電復(fù)合物,發(fā)現(xiàn)大豆分離蛋白-水蘇糖和大豆分離蛋白-棉子糖的乳化穩(wěn)定性比大豆分離蛋白分別提高了132.40%和116.00%.以上研究表明,采用靜電復(fù)合法制備的凝膠復(fù)合物可有效改善乳液的穩(wěn)定性.

    目前,與微凝膠相關(guān)的蛋白研究主要集中在蛋清蛋白、大豆蛋白等,而關(guān)于PP與多糖靜電復(fù)合的研究未見報道.黃原膠屬于陰離子多糖,在較低濃度時會形成不受溫度、鹽濃度變化影響的黏性溶液,與其他多糖溶液相比具有較高黏度,是一種非常有效的穩(wěn)定劑.鑒于此,本文擬采用靜電復(fù)合法制備馬鈴薯蛋白-黃原膠微凝膠(PP-XGM),并對其結(jié)構(gòu)和乳化特性進行研究,以期為PP和多糖的開發(fā)利用提供一定的理論基礎(chǔ).

    1 材料與方法

    1.1 實驗材料

    PP(蛋白質(zhì)量分數(shù)為90.01%),西安四季生物科技有限公司產(chǎn).食品級黃原膠(XG),山東阜豐發(fā)酵有限公司產(chǎn);福臨門大豆油,中國糧油食品集團有限公司產(chǎn).實驗所用其他試劑均為分析純.

    1.2 主要儀器與設(shè)備

    MS7-H550-Pro型磁力攪拌器,龍興創(chuàng)實驗儀器有限公司產(chǎn);FE20 Plus 型pH測量計,梅特勒-托利多儀器有限公司產(chǎn);LGJ-50FD型冷凍干燥機,京松源華興科技發(fā)展有限公司產(chǎn);Turbiscan Lab型多重光散射儀,法國Formulaction公司產(chǎn);TD5M型低速離心機,上海盧湘儀離心機儀器有限公司產(chǎn);Nano-ZS90型激光納米粒度儀,英國Malvern公司產(chǎn); FA25型高剪切分散乳化機,德國弗魯克流體機械制造有限公司產(chǎn);UV762型紫外分光光度計,上海儀電分析儀器有限公司產(chǎn);JSM-7100F型場發(fā)射掃描電鏡,日本電子公司產(chǎn);F-7000型熒光分光光度計,日本日立公司產(chǎn);JEM-100CX-Ⅱ型透射電鏡,日本電子株式會社產(chǎn).

    1.3 實驗方法

    1.3.1 PP-XGM的制備 根據(jù)夏曉鳳[10]的方法,略有改動.稱取一定質(zhì)量的PP(質(zhì)量分數(shù)為1.00%)和XG(質(zhì)量分數(shù)分別為0.05%、0.10%、0.20%、1.00%),分別用去離子水進行溶解,持續(xù)攪拌3 h,將制備好的溶液放入 4 ℃ 冰箱中過夜;將XG溶液加入到PP溶液中,持續(xù)攪拌 4 h,使用濃度為0.1 mol/L的HCl溶液將上述溶液pH值分別調(diào)節(jié)至2.0~4.0,得到相應(yīng)pH值的PP-XG靜電復(fù)合溶液;在80 ℃、90 ℃溫度下,將上述靜電復(fù)合溶液水浴加熱不同時間后,立即放入冰水中冷卻至室溫,即得PP-XGM;最后將PP-XGM凍干保存,備用.

    1.3.2 ζ-電位的測定 在激光納米粒度儀上進行ζ-電位的測定.分別將凍干后的PP-XGM樣品和馬鈴薯蛋白-黃原膠物理復(fù)合物(PP-XG)配成溶液,用相同pH值的磷酸鹽緩沖液稀釋到合適的質(zhì)量濃度.測試溫度為 25 ℃,設(shè)置平衡時間為2 min.

    1.3.3 動力學穩(wěn)定性的測定 乳液的動力學穩(wěn)定性由動力學穩(wěn)定性指數(shù)(TSI)表征,乳液的TSI越大,表明其動力學穩(wěn)定性越差;反之,乳液的TSI越小,表明其動力學穩(wěn)定性越好[11].取 7.5 mL質(zhì)量濃度為 0.001 g/mL 的蛋白微凝膠溶液,加入2.5 mL 大豆油,用高速分散均質(zhì)機于19 000 r/min 條件下均質(zhì)120 s,得到新鮮的皮克林乳液.在近紅外光源波長880 nm,溫度25 ℃條件下,使用多重光散射儀對樣品進行動力學穩(wěn)定性測定.在儀器配套的圓柱形玻璃管中加入20 mL樣品,每隔25 s掃描一次,持續(xù)掃描1 h.

    1.3.4 粒徑的測定 用磷酸鹽緩沖液將樣品稀釋至相同質(zhì)量濃度,采用激光納米粒度儀對樣品的平均表觀流體力學粒徑和多分散系數(shù)(PDI)進行測定[12],其中,PDI越小,說明顆粒的分布越均勻.測定溫度為25 ℃,平衡時間為 2 min.

    1.3.5 內(nèi)源性熒光光譜的測定

    內(nèi)源性熒光光譜用于評價色氨酸殘基周圍的構(gòu)象變化.

    首先將PP、PP-XG、PP-XGM用磷酸鹽緩沖液(pH=7.0,濃度為0.01 mol/L)稀釋至質(zhì)量濃度為1 mg/mL,然后用熒光分光光度計檢測溶液的內(nèi)源性熒光光譜[13].激發(fā)波長為290 nm,掃描發(fā)射光譜范圍為300~420 nm,激發(fā)波長和發(fā)射波長狹縫寬度均為2.5 nm.

    1.3.6 微觀形貌的測定 采用透射電鏡觀察PP-XGM的微觀結(jié)構(gòu):取一滴樣品稀釋液(約20 μL)滴加到透射電鏡專用的碳膜銅網(wǎng)上,吸附15 min后,用濾紙吸附多余部分,室溫下干燥10 min,測試的加速電壓為 80 kV.

    1.3.7 乳化特性的測定 取一定量的PP-XGM于容器中,加入濃度為0.01 mol/L的磷酸鹽緩沖液(pH=7.0),將PP-XGM溶液的質(zhì)量濃度稀釋至? 1 mg/mL;取1 mL稀釋后的PP-XGM溶液加入3 mL大豆油中,用高剪切分散乳化機攪打2 min,設(shè)置轉(zhuǎn)速條件為10 000 r/min;分別于0 min和10 min時從容器底部量取50 μL乳液,加入到5 mL 質(zhì)量分數(shù)為0.1% 的十二烷基磺酸鈉溶液中,充分混勻后,用紫外分光光度計測其吸光度值,波長設(shè)置為500 nm,以SDS空白溶液調(diào)零[14].乳液的乳化穩(wěn)定性指數(shù)(ESI)計算公式如下:

    ESI=A10A0×100%

    式中,A0 和A10分別表示乳液靜置0 min和10 min的吸光度值.

    1.4 數(shù)據(jù)分析

    所有實驗均重復(fù)3次,數(shù)據(jù)用Microsoft Excel 2016軟件處理,結(jié)果以(平均值±標準差)的形式表示.用Origin 8.5軟件作圖、SPSS 17.0 軟件進行顯著性分析,采用Duncans多重比較法進行顯著性檢驗,P<0.05為判定顯著性的條件.

    2 結(jié)果與分析

    2.1 PP-XGM的制備條件分析

    2.1.1 pH值范圍的確定 pH值會影響蛋白質(zhì)和多糖帶電基團的解離程度,進而影響二者的相互作用[15].因此,在制備PP-XGM前,首先需要考查pH值對PP和XG的影響.pH值對PP和XG的ζ-電位的影響如圖1所示.由圖1可以看出,當pH值為4.3時,PP的ζ-電位為0;當pH值大于4.3時,PP的ζ-電位均為負值,帶正電荷;當pH值小于4.3時,PP的ζ-電位均為正值,帶負電荷.當pH值在2.0~8.0范圍內(nèi)時,XG的ζ-電位均為負值.隨著pH值的增大,XG的羧基離子化程度增加,帶電量增多,ζ-電位的絕對值越來越高.當pH值在 2.0~4.0范圍內(nèi)時,PP和XG帶相反電荷,可實現(xiàn)二者之間有效的靜電吸引作用.

    2.1.2 pH值對皮克林乳液動力學穩(wěn)定性的影響 依據(jù)2.1.1研究結(jié)果,進一步研究pH值在 2.0~4.0范圍內(nèi)的PP-XGM對乳液動力學穩(wěn)定性的影響.pH值對皮克林乳液動力學穩(wěn)定性的影響如圖2所示.由圖2可以看出,所有乳液樣品的TSI均隨時間的延長而不斷增大,最后趨于平緩,說明時間越長,乳液越不穩(wěn)定.當pH值為4.0和3.5時,所制備的PP-XGM穩(wěn)定乳液的效果遠遠劣于其他pH值下所制備的PP-XGM.這可能是因為此時乳液的pH值處在蛋白質(zhì)等電點附近,PP發(fā)生自聚集,與XG相互作用較弱.當pH值為3.0時,乳液的TSI最低,說明該條件所制備的PP-XGM穩(wěn)定乳液的效果較好.

    2.1.3 熱處理條件對皮克林乳液動力學穩(wěn)定性的影響 熱處理條件對皮克林乳液動力學穩(wěn)定性的影響如圖3所示.未經(jīng)熱處理的PP與XG所形成的靜電復(fù)合物是可逆的,在復(fù)合物溶液 pH值高于蛋白質(zhì)等電點的情況下,不能形成相互作用的聚集體.熱處理可使蛋白質(zhì)分子結(jié)構(gòu)被破壞,與多糖結(jié)合的位點增加,疏水基團暴露,疏水相互作用增強,同時,熱處理也使多糖的構(gòu)象發(fā)生改變,二者的相互作用增強[16].另一方面,熱處理可減少可逆反應(yīng)的發(fā)生,提高聚合物的穩(wěn)定性,抑制蛋白質(zhì)分子間的聚集.由圖3可以看出,與90 ℃熱處理不同時間所制備的PP-XGM相比,80 ℃熱處理不同時間所制備的PP-XGM穩(wěn)定乳液的效果更好.這可能是因為超過一定溫度后,PP變性嚴重,PP與XG形成的微凝膠界面活性下降,從而穩(wěn)定乳液的能力下降.另外,由80 ℃熱處理30 min所制備的PP-XGM穩(wěn)定的乳液,其TSI最低,表明其動力學穩(wěn)定性最好.

    2.1.4 不同PP/XG質(zhì)量比對皮克林乳液動力學穩(wěn)定性的影響 XG的加入可增加蛋白質(zhì)的潤濕性、分子的伸展程度和疏水基團的暴露.當XG質(zhì)量分數(shù)較低時,因其不足以覆蓋所有液滴,會發(fā)生橋架絮凝現(xiàn)象;當XG質(zhì)量分數(shù)過高時,又會發(fā)生排斥絮凝現(xiàn)象[17].因此,XG和蛋白質(zhì)的質(zhì)量比會影響乳液的動力學穩(wěn)定性.

    保持PP質(zhì)量分數(shù)為1.00%,溶液pH值為3.0,80 ℃熱處理30 min,PP/XG質(zhì)量比對皮克林乳液動力學穩(wěn)定性的影響結(jié)果如圖4所示.由圖4可以看出,當PP/XG質(zhì)量比為5:1時,乳液動力學穩(wěn)定性最差.這可能是因為在pH值為3.0時,PP所帶正電荷與XG所帶負電荷相中和,使復(fù)合物所帶凈電荷接近于0,此時所形成的PP-XGM吸附的油滴無法抵抗吸引力而發(fā)生絮凝,乳液的TSI隨之減小.當PP/XG質(zhì)量比分別為20:1,10:1和1:1時,乳液的各TSI變化曲線相近,TSI均較小,其中,當PP/XG質(zhì)量比為1:1時,乳液的動力學穩(wěn)定性最好.

    綜上,PP-XGM的最佳制備條件為:PP/XG質(zhì)量比1:1,pH值3.0,80 ℃熱處理 30 min.

    2.2 PP-XGM的結(jié)構(gòu)表征分析

    2.2.1 PP-XGM的粒徑和PDI分析 PP、PP-XG 和PP-XGM的粒徑和PDI檢測結(jié)果見表1.由表1可知, PP-XG和PP-XGM的粒徑較PP均明顯增大.這是因為XG本身的粒徑較大,XG和PP以靜電作用形成復(fù)合物后,該復(fù)合物的粒徑明顯增大.PP-XGM的粒徑(473.10 nm)遠大于PP-XG的粒徑(222.85 nm),這可能是因為加熱導致蛋白質(zhì)分子結(jié)構(gòu)被破壞,與多糖結(jié)合位點增加,相互作用增強,形成了較大的聚集體[18] .PP-XGM的PDI明顯小于未處理的PP-XG,說明形成微凝膠后,顆粒分布更均勻.

    2.2.2 PP-XGM的內(nèi)源性熒光光譜分析 PP-XGM的內(nèi)源性熒光光譜和熒光指數(shù)(FI)如圖5和表2所示.由圖5和表2可知,與PP相比,PP-XG和PP-XGM的最大吸收波長λmax發(fā)生了不同程度的藍移,這可能是因為熱處理時,原來包埋在PP分子內(nèi)的色氨殘基被暴露在溶劑中,而疏水作用又將色氨殘基重新包埋[19].PP-XGM的λmax向更短波長處移動,這是由于PP與XG通過靜電、氫鍵等非共價相互作用引起了藍移.PP-XGM的熒光強度(FI)下降最顯著,這可能是因為XG與PP之間的靜電相互作用導致蛋白質(zhì)構(gòu)象改變,發(fā)生熒光猝滅.

    2.2.3 PP-XGM的微觀形貌分析 PP-XGM的微觀形貌如圖6所示.由圖6可以看出,PP為單分散的球形顆粒,與XG靜電復(fù)合后,PP-XG為圓球狀.將PP-XGM中的單一顆粒放大后發(fā)現(xiàn),核與殼的密度不同,說明PP-XGM為核殼結(jié)構(gòu).有研究表明,核殼結(jié)構(gòu)內(nèi)部為蛋白質(zhì),外部較疏松的結(jié)構(gòu)為多糖[12].PP與XG通過靜電作用形成PP-XG,當?shù)鞍踪|(zhì)被加熱到接近其熱變性溫度時,會從PP-XG中分離出來,并聚集在一起形成蛋白質(zhì)核,而蛋白質(zhì)表面的陽離子與帶負電的XG相互吸引,形成具有核殼結(jié)構(gòu)的顆粒.PP-XGM的尺寸小于通過激光粒度儀測得的粒徑.這可能是因為納米顆粒中大部分水分在TEM的高真空室內(nèi)蒸發(fā),導致一些顆粒收縮.由圖6c)可知,PP-XGM與背景對比強烈,表明PP與XG交聯(lián)緊密.

    2.3 PP-XGM的乳化特性分析

    油相的體積分數(shù)在乳狀液乳化過程中起主導作用.PP、PP-XG和PP-XGM對乳液乳化穩(wěn)定性的影響如圖7所示.由圖7可以看出,所有實驗組別的ESI值均隨油相體積分數(shù)的增加呈先增大后減小的趨勢,其中,由PP和PP-XG

    穩(wěn)定的乳液在油相體積分數(shù)為40%時穩(wěn)定性最好.這是因為油相體積分數(shù)的增加提高了乳液黏度,降低了乳化速度[20].而隨著油相體積分數(shù)的進一步增加,顆粒的數(shù)量變得不足以完全穩(wěn)定油滴,乳液的穩(wěn)定性下降[21].在油相體積分數(shù)相同的條件下, PP-XGM的乳化穩(wěn)定性高于PP,這一方面可能是因為PP-XGM的電位絕對值越大,微凝膠表面所帶電荷越多,顆粒之間的靜電斥力越強,可有效抑制顆粒之間的聚集,提高乳液穩(wěn)定性;另一方面可能是因為由PP穩(wěn)定的乳液中絮凝物以開放的結(jié)構(gòu)存在,而由PP-XGM穩(wěn)定的乳液中,油滴被固定在微凝膠網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)中,乳液的穩(wěn)定性增強[22].此外,PP-XGM吸附到油滴表面可增加水相黏度,抑制液滴的移動,進而提高乳液的穩(wěn)定性[23].

    3 結(jié)論

    本研究對PP-XGM的制備條件進行了優(yōu)化,確定了PP-XGM的最佳制備條件為PP/XG質(zhì)量比1:1,pH值3.0,80 ℃熱處理 30 min.結(jié)構(gòu)表征分析發(fā)現(xiàn):靜電復(fù)合后,PP-XGM的粒徑變大,PDI變小,顆粒分布更均勻;與PP相比,PP-XG和PP-XGM的最大吸收波長λmax發(fā)生了不同程度的藍移,且PP-XGM的FI下降最顯著; PP-XGM呈核殼結(jié)構(gòu).制備條件優(yōu)化后的PP-XGM可提高乳化體系的穩(wěn)定性.該研究可為馬鈴薯蛋白及多糖資源的開發(fā)利用提供一定的技術(shù)支持.

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