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    負(fù)載葡萄皮粉花色苷提取物的W/O/W型復(fù)乳制備及其體外消化評價

    2021-03-06 07:36:40徐偉麗魯兆新徐貴華
    中國食品學(xué)報 2021年2期
    關(guān)鍵詞:液滴乳液消化

    徐偉麗,穆 韡,魯兆新,徐貴華

    (1 哈爾濱工業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與工程系 哈爾濱150001 2 哈爾濱工業(yè)大學(xué)生物分子與化學(xué)工程系 哈爾濱150001 3 河南科技學(xué)院食品學(xué)院 河南新鄉(xiāng)453003)

    花色苷(anthocyanins,ACNs)是類黃酮水溶性色素,廣泛存在于花卉、水果、蔬菜、谷物和草藥中[1]。自然界中的ACNs 主要是黃酮基(2-苯基-苯并吡嗪鹽)的多羥基和多甲氧基糖苷衍生物[2]。流行病學(xué)研究表明,ACNs 的攝入可以改善許多慢性疾病,如心血管疾病、糖尿病、關(guān)節(jié)炎和癌癥[3]。富含ACNs 的植物提取物,如漿果果渣提取物比單一酚類化合物具有更強(qiáng)的抗氧化作用[4],但它們是不穩(wěn)定的化合物,在高pH 值、氧氣、光、熱和特定酶的存在下容易降解[5],很難到達(dá)腸道,口服后生物利用度低。保護(hù)ACNs 的生物活性以增強(qiáng)其穩(wěn)定性并促進(jìn)其在目標(biāo)吸收位點的釋放,是一項技術(shù)挑戰(zhàn)。

    研究證明W1/O/W2型復(fù)乳可以有效防止食品體系中各種成分的相互作用,是實現(xiàn)親水性生物活性物質(zhì)保護(hù)和靶向輸送的最佳微囊化技術(shù)[6-8]。最近,體外模型作為了解微膠囊的基本物理化學(xué)性質(zhì)和被包埋組分控釋的工具而備受關(guān)注[9]。消化時,內(nèi)水相、油相和外水相的物理性質(zhì)都對微膠囊的包埋率,生物活性成分的穩(wěn)定性及其控釋性質(zhì)起重要作用[10]。雖然此前報道了一些關(guān)于單層或雙層微膠囊的消化研究[11],但是就復(fù)乳在胃、腸道消化時微觀結(jié)構(gòu)的變化及其內(nèi)水相或內(nèi)部W1/O單一乳液的靶向輸送情況尚未闡明。

    此前關(guān)于包埋ACNs 的研究主要使用多糖作為外水相[12],而對于使用WPI 溶液作為乳化劑包埋ACNs,以及通過口腔和胃、腸道連續(xù)消化負(fù)載ACNs 的W/O/W 型復(fù)乳的信息有限。本研究的目的是評價以葡萄皮粉ACNs 提取液為內(nèi)水相(W1),含聚甘油聚蓖麻油酸酯(PGPR)的玉米油為油相,WPI 溶液為外水相(W2)的W/O/W 型復(fù)乳,表征其在體外消化過程中的微觀結(jié)構(gòu)、流變學(xué)特性、靶向傳輸和抗氧化活性的變化情況。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    葡萄皮粉,加拿大約瑟夫天然產(chǎn)物公司;WPI(97.5%蛋白質(zhì)),美國戴維斯科食品國際公司;玉米油,市購;ACN 標(biāo)準(zhǔn)品,美國Indofine 化學(xué)公司;HCl、檸檬酸和苯甲酸鈉,美國Sigma 公司;聚甘油聚蓖麻油酸酯(PGPR,4175),美國Palsgaard 公司;6-羥基-2,5,7,8-四甲基色滿-2-羧酸(Trolox)、2,2'-偶氮二-(2-甲基丙脒)二鹽酸鹽(AAPH)、2,2-二苯基-1-苦基肼(DPPH)、L-抗壞血酸、熒光素和苯甲基磺酰氟(PMSF),Sigma-Aldrich 化學(xué)公司;氯化鈉和HPLC 級溶劑,加拿大卡利登實驗室。

    1.2 儀器與設(shè)備

    勻漿器(PT 2500 E),瑞士Kinematica AG 公司;微流化器,加拿大ATS 公司;光學(xué)顯微鏡、照相機(jī)(AxioCam MRC5),德國Zeiss 公司;粒度電位儀(Zetasizer),英國Malvern 儀器公司;流變儀(ARES-LS1),美國TA 儀器公司;UV 微板讀數(shù)器,美國Bio-Tek 儀器公司;離心過濾裝置(30,000-MWCO Amicon-Ultra 15),德國Millipore 公司;光電二極管陣列檢測器,德國安捷倫科技公司;C18分析柱(150 mm×4.6 mm i.d.×5 μL),中國北京迪科馬科技公司。

    1.3 方法

    1.3.1 制備WPI 溶液和葡萄皮提取物 將WPI粉末溶于去離子水(2.5%,質(zhì)量分?jǐn)?shù))中,磁力攪拌2 h,4 ℃過夜和儲存。將20 g 葡萄皮粉在600 mL 50%(體積分?jǐn)?shù))甲醇中50 ℃超聲提取1 h,用濾紙(Whatman Grade No.1)過濾。如此進(jìn)行兩次,合并濾液,使用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀在40 ℃條件下對其濃縮。將最終提取物(不含甲醇)置-20 ℃儲存?zhèn)溆谩?/p>

    1.3.2 復(fù)乳的制備 參考文獻(xiàn)[13]制備W1/O/W2型復(fù)乳。

    1.3.3 模擬體外消化 根據(jù)先前報道[11]的方法進(jìn)行體外模擬消化。將沒有添加樣品的空白作對照,在相同條件下處理以校正來自消化酶和緩沖液的干擾。該體外消化模擬系統(tǒng)用于模擬人類口腔、胃和小腸的消化過程。

    1.3.4 顯微鏡觀察 拍攝照片,評估乳液表面形態(tài)的變化。將光學(xué)顯微鏡與AxioCam MRC5 照相機(jī)連接,觀察乳液的微觀結(jié)構(gòu)(100×)。

    1.3.5 粒徑和ζ-電勢測定 參考文獻(xiàn)[13]進(jìn)行檢測。

    1.3.6 流變學(xué)性質(zhì)測定 用ARES-LS1 流變儀測定乳液的流變學(xué)性質(zhì)。測量期間乳液的溫度保持在25 ℃。

    1.3.7 HPLC 法測定ACNs 將60 μL 葡萄皮提取物(相當(dāng)于1 mL W/O/W 乳液中的量)稀釋至5 mL(3.3 mL 5 mol/L HCl 和1.7 mL Milli-Q 水)。此溶液在100 ℃溫度下保持60 min,以確保將ACNs 完全水解成花青素。冷卻后,用0.45 μm 過濾器過濾。25 ℃條件下使用配備光電二極管陣列檢測器(PAD)和C18分析柱的Agilent 1100 系統(tǒng)進(jìn)行HPLC 分析。使用體積分?jǐn)?shù)10%甲酸(溶液A)和100%甲醇(溶液B)梯度洗脫,即:0~20 min,95%A/ 5%B 至40%A/60%B 的線性梯度洗脫;20~23 min,40%A/60%B 的等度洗脫;23~24 min,40%A/ 60%B 到95%A / 5%B 的線性梯度洗脫;24~28 min,95%A/5%B 的等度洗脫。洗脫液流速0.8 mL/min,注射樣品體積100 μL。在波長520 nm 處定量外標(biāo)(即氯化翠雀寧、氯化矢車菊素、氯化天竺葵素和氯化錦葵色素),并基于峰面積建立校準(zhǔn)曲線。

    1.3.8 W1/O/W2型復(fù)乳中ACNs 的釋放檢測 采用文獻(xiàn)[13]中的HPLC 法測定W/O/W 復(fù)乳中ACNs 的釋放率。計算ACNs 的包埋率(EE,%)公式:

    式中,G1——乳液中游離ACNs 的含量(μg/mL);G0——制備時加入的ACNs 總量(μg/mL)。

    ACNs 的釋放率(R)計算公式:

    1.3.9 W1/O/W2型復(fù)乳抗氧化活性評價 按照Li等[14]的方法測定樣品的抗自由基活性(DPPH 測定法)。提取物的氧自由基吸收能力(ORAC)測定采用文獻(xiàn)[11]的方法,通過標(biāo)準(zhǔn)曲線將結(jié)果表示為μmol/Trolox 物質(zhì)的量。根據(jù)文獻(xiàn)[10]方法測定鐵還原能力(FRAP),抗氧化活性表示為μmol/L 抗壞血酸物質(zhì)的量。

    1.3.10 乳液穩(wěn)定性測量 將不同消化階段收集的乳液轉(zhuǎn)移到無菌離心管中,用塑料蓋密封,25℃下儲存24 h。數(shù)碼相機(jī)拍攝乳液照片。

    1.3.11 統(tǒng)計分析 文中使用SPSS 14.0 軟件統(tǒng)計分析,結(jié)果表示為3 次獨(dú)立試驗結(jié)果的平均值(±s)。采用單因素方差分析(ANOVA)進(jìn)行組間比較。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 W1/O/W2 型復(fù)乳的形態(tài)和儲存穩(wěn)定性

    本研究使用PGPR 和WPI 作為乳化劑,制備包埋ACNs 提取物的W/O/W 型復(fù)乳(6%,質(zhì)量分?jǐn)?shù)),乳液的形態(tài)和微觀結(jié)構(gòu)如圖1~4所示。結(jié)果表明,制備的所有乳液都質(zhì)地均勻且表面光滑(圖1A),W1/O/W2和O/W2乳液為白色并具有良好的流動性,W1/O 乳液呈淺粉色,有黏性。W1/O/W2和O/W2乳液的平均粒徑分別為(287.90±3.12)nm(PDI=0.193±0.022)和(299.70±5.83)nm(PDI=0.146±0.023)。顯微鏡分析顯示,小油滴均勻分布在O/W2乳液的水相中(圖2B),水滴均勻分布在W1/O 乳液的油相中(圖2C)。此外,根據(jù)Florence等[15]分類,許多W1/O 小液滴存在于外水相內(nèi)部(圖2A),表明其為B 型W1/O/W2復(fù)乳。

    圖1 乳液照片F(xiàn)ig.1 Photographs of different emulsions

    乳液的穩(wěn)定性在食品加工和儲存過程中非常重要。4 ℃儲存5 周的樣品依舊均勻,無游離油滴,液滴未發(fā)生團(tuán)聚現(xiàn)象(圖1A)。結(jié)果表明,4 ℃儲存35 d 的復(fù)乳表現(xiàn)出良好的穩(wěn)定性。然而,W1/O/W2型復(fù)乳在胃中消化30 min 發(fā)生相分離現(xiàn)象,表明胃消化會破壞乳液的穩(wěn)定性(圖1B)。

    2.2 體外模擬消化對W1/O/W2 型復(fù)乳微觀結(jié)構(gòu)的影響

    使用顯微鏡(圖2)和激光衍射(圖3 和圖4)評估體外不同消化階段的W1/O/W2型復(fù)乳的微觀結(jié)構(gòu)。初始復(fù)乳乳滴的平均粒徑為(287.90±3.12 nm)(PDI=0.193±0.022)(圖3),整體粒徑分布在50~1 000 nm 范圍(圖4)。經(jīng)口腔消化后,液滴粒徑和形態(tài)未發(fā)生明顯改變 【d =(296.13 ± 2.52)nm】(圖3,圖2A,2D)。當(dāng)乳液經(jīng)口腔移動到胃部消化后,液滴仍保留雙層結(jié)構(gòu),但粒徑顯著增加【d=(619.40±15.96)nm】(圖2E,圖3 和圖4)。其原因是蛋白質(zhì)水解導(dǎo)致復(fù)乳的表面結(jié)構(gòu)改變,小液滴融合成具有雙層結(jié)構(gòu)的不穩(wěn)定的較大液滴。這也可能是圖1B所示相分離的原因。相反,Shima等[16]研究顯示雙層復(fù)乳在模擬胃部消化期間是穩(wěn)定的。而Xiao 等[17]發(fā)現(xiàn)大多數(shù)復(fù)乳液滴在胃消化過程中塌陷并釋放出內(nèi)水相。上述研究結(jié)果的不一致可能與模擬胃液化學(xué)組分和pH 值不同以及外水相有關(guān)。

    顯微照片證實,模擬腸道消化后乳滴完全失去雙層結(jié)構(gòu)并變?yōu)榭沼偷危▓D2F)。這表明雙層結(jié)構(gòu)的外部蛋白被完全消化,酶解使W1/O 液滴破裂并釋放ACNs,油相被膽汁鹽乳化后聚集并重新形成油滴,因此未觀察到相分離現(xiàn)象(圖1B)。Andrade 等[18]和Frank 等[19]的研究結(jié)果與本研究結(jié)果一致,也證實在體外消化過程中使用含脂肪酶和膽汁的人工消化液,W/O/W 型復(fù)乳發(fā)生油相的水解和聚結(jié)。

    2.3 體外模擬消化對乳液ζ-電位的影響

    監(jiān)測體外不同消化階段乳液液滴所帶電荷情況,即ζ-電位。WPI 穩(wěn)定的初始乳液(pH 6.6~6.8)具有負(fù)ζ-電位(約-45 mV)(圖5),這主要取決于乳化劑WPI 的性質(zhì)。模擬口腔消化(pH 6.8~7.0)后,乳液液滴帶有相對較少的負(fù)電荷(約-39 mV)。當(dāng)乳液經(jīng)口轉(zhuǎn)移到胃消化后,乳液電勢為正【(12.80±0.28)mV】(pH=2.0)。乳液液滴電荷的變化與多種因素有關(guān),例如:溶液pH 值和離子強(qiáng)度的變化,或者帶電物質(zhì)從胃液吸附到乳化劑涂層上。模擬胃液消化后,如果界面組成沒有變化,pH 值低于等電點(PI),WPI 包被的微粒就會攜帶正電荷[20]。WPI 含有球狀蛋白質(zhì),如β-乳球蛋白,可以形成共價交聯(lián)的界面。在模擬胃消化過程中,β-乳球蛋白對酸和酶的降解具有抗性[21]。這可以解釋大量乳滴在模擬胃環(huán)境中保留蛋白層的現(xiàn)象。乳液經(jīng)胃轉(zhuǎn)移到模擬小腸(pH 6.8)消化后的ζ-電位值(-63.97±3.04)mV 甚至高于初始乳液。pH 值的影響是乳液微粒攜帶較多負(fù)電荷的主要原因。其它研究[22]也報道了在體外消化模型中β-乳球蛋白包被的液滴ζ-電位的類似結(jié)果。

    圖2 不同乳液的顯微照片F(xiàn)ig.2 Photomicrographs of different emulsions

    圖3 不同體外消化階段W1/O/W2 型復(fù)乳液滴的平均粒徑Fig.3 Mean particle diameters of W1/O/W2 emulsion after in vitro digestion

    圖4 W1/O/W2 型復(fù)乳的粒徑分布Fig.4 Particle size distributions of W1/O/W2 emulsions

    圖5 W1/O/W2 乳液的ζ-電位Fig.5 ζ-potential of W1/O/W2 emulsions

    2.4 體外模擬消化對乳液流變學(xué)性質(zhì)的影響

    流變特性與食品配方、加工條件以及食品口感等感官特性高度相關(guān)[23],這使其在食品應(yīng)用方面非常重要。在給定質(zhì)量濃度的乳液中,乳液黏度取決于液滴相互作用的性質(zhì)和聚集程度[24]。本研究使用流變儀追蹤體外不同消化階段乳液的黏度變化(圖6)。隨著剪切速率的增加,W1/O/W2復(fù)乳和O/W2乳液的黏度未發(fā)生明顯變化,表明這些乳液屬于牛頓流體。這與Wang 等[25]的研究結(jié)果一致。然而,另有報道顯示,復(fù)乳是非牛頓流體,其復(fù)雜的流變行為,使在高剪切力下變稀的程度更大[26]。最近的一項研究表明當(dāng)剪切速率在1~100 s-1時,O/W 乳液表現(xiàn)出典型的假塑性流體特性[27]。這些不同的結(jié)果可能是由所用乳化劑的類型和濃度,以及分散相的體積不同所致。隨著剪切速率的增加,W/O 乳液的黏度緩慢下降,表明這些乳液是非牛頓流體[28]。Jiao 等[29]也得出相同的結(jié)論。然而,Abivin 等[30]發(fā)現(xiàn)W/O 乳液的黏度與剪切速率曲線表現(xiàn)出牛頓流體特性。W1/O/W2和O/W2乳液與水的黏度相近(<0.1),W1/O 乳液的黏度高于這兩種乳液(W1/O/W2和O/W2)。體外消化后,W1/O/W2乳液發(fā)生剪切變稀,可能是由乳液液滴變形和/或結(jié)構(gòu)破壞導(dǎo)致的[31]。

    2.5 體外模擬消化對W1/O/W2 乳液中ACNs 釋放的影響

    研究了體外消化對W1/O/W2乳液中包埋的ACNs 釋放的影響,結(jié)果如圖7所示。初始W1/O/W2復(fù)乳ACNs 的包埋率為(93.19±2.78)%。在口腔消化后,ACNs 仍保持在乳液的內(nèi)水相中。經(jīng)胃消化后,復(fù)乳的內(nèi)水相中ACNs 少量被釋放,這是因為乳液微粒仍具有雙層結(jié)構(gòu),ACNs 主要存在于微粒的內(nèi)部水相(圖2E)。Frank 等[19]、Oidtmann 等[32]和Flores 等[11]也有類似的發(fā)現(xiàn)。然而,Xiao 等[17]和Andrade 等[18]證明,在胃消化階段由于液滴結(jié)構(gòu)的破壞,W/O/W 復(fù)乳的內(nèi)水相(W1)大部分釋放。而Shima 等[16]的研究表明復(fù)乳不受人工無酶胃液的影響,包埋率沒有變化。

    ACNs 主要在模擬腸道消化過程中釋放,釋放率為(41.89±2.95)%。其主要原因可能是胃蛋白酶和胰蛋白酶的消化,復(fù)乳成為單一的W1/O 乳液,而W1/O 液滴的油層進(jìn)一步被酶水解,ACNs 被釋放。相反,Aditya 等[33]報道在體外無酶腸道消化1 h,超過45%的姜黃素從W/O/W 復(fù)乳中釋放出來。這種差異可能與人工消化液的化學(xué)成分、包埋方法、壁材類型或內(nèi)層水相的物理化學(xué)性質(zhì)有關(guān)[18]。

    圖6 乳液的黏度-剪切速率曲線圖Fig.6 Viscosity-rate of shear curves for emulsions

    2.6 體外模擬消化過程中W1/O/W2 復(fù)乳抗氧化活性的變化

    圖7 ACNs 在W1/O/W2 復(fù)乳中的包埋率Fig.7 The encapsulation efficiency of ACNs in W1/O/W2 emulsions

    包埋ACNs 的復(fù)乳在體外不同消化階段的抗氧化活性如圖8所示。在體外消化過程中乳液的FRAP 值沒有明顯的變化。然而,DPPH 和ORAC值隨著體外消化的進(jìn)行呈顯著增加趨勢(P<0.05)。在模擬腸道消化后,從乳液檢測出最高的抗氧化活性,其原因主要是微膠囊中ACNs 的大量釋放。Ydjedd 等[34]研究表明:在腸道消化過程中最高劑量的酚類物質(zhì)和類黃酮物質(zhì)從微膠囊中釋放出來。這一結(jié)果與本研究發(fā)現(xiàn)一致。經(jīng)胃消化后,仍有(82.13±1.90)%的ACNs 包埋在油相中。然而,與初始復(fù)乳和經(jīng)口腔消化后的復(fù)乳(階段I)相比,經(jīng)胃消化后的復(fù)乳具有更高的抗氧化活性(P<0.05)。這可歸因于胃消化過程中W1/O/W2液滴的雙層結(jié)構(gòu)被破壞且ACNs 在親水介質(zhì)中易于擴(kuò)散[33]。WPI 被消化酶水解產(chǎn)生的抗氧化肽,可能也是這種高抗氧化活性的部分原因[35]。本研究結(jié)果表明,在整個模擬胃、腸消化過程中W1/O/W2復(fù)乳能夠穩(wěn)定ACNs 的高抗氧化活性。然而,Cofrades等[36]報道了相反的結(jié)果,由于體外模擬胃部和腸道消化使生物活性化合物損失,因此使復(fù)乳和凝膠化復(fù)乳的抗氧化活性顯著降低。

    圖8 W1/O/W2 乳液的抗氧化活性Fig.8 Antioxidant activity of W1/O/W2 emulsions

    3 結(jié)論

    本研究結(jié)果表明,負(fù)載ACNs 的W1/O/W2復(fù)乳具有較高的包埋率【(93.19±2.78)%】和較好的儲存穩(wěn)定性??谇幌髲?fù)乳的液滴未發(fā)生明顯的形態(tài)變化。經(jīng)模擬胃液消化后,大量液滴相互融合形成不穩(wěn)定的較大顆粒,然而仍具有雙層結(jié)構(gòu)。在腸道消化過程中,液滴釋放出內(nèi)部水相而變成油滴。黏度分析結(jié)果也表明,體外消化使復(fù)乳液滴的結(jié)構(gòu)受損。此外,ACNs 釋放率和抗氧化活性分析證實包埋的ACNs 可針對性地運(yùn)送至模擬小腸中。這些結(jié)果表明,W1/O/W2復(fù)乳是潛在的,可用于穩(wěn)定水溶性生物活性成分并控制其在腸道中靶向釋放的微載體系統(tǒng)。

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