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    源自螺旋藻渣枯草芽孢桿菌發(fā)酵抗菌肽SP-AP-1和伊枯草菌素對金黃色葡萄球菌抑菌機(jī)制對比研究

    2021-01-20 06:50:14趙謀明龐一揚(yáng)劉小玲
    食品科學(xué) 2021年1期
    關(guān)鍵詞:胞內(nèi)抗菌肽細(xì)胞膜

    付 云,趙謀明,2,龐一揚(yáng),劉小玲,*

    (1.廣西大學(xué)輕工與食品工程學(xué)院,廣西 南寧 530004;2.華南理工大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,廣東 廣州 510000)

    金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)是食品中常見的食源性致病菌,廣泛分布于自然界中,容易污染乳制品、水產(chǎn)品和肉制品等食品,造成食物中毒,進(jìn)而威脅人類的生命健康安全[1]。因此,有效抑制食品中金黃色葡萄球菌的生長繁殖、提高食品安全性,是對人類健康和生命安全的重要保障。

    抗菌肽是一類天然的具有抗細(xì)菌或真菌作用的小分子生物活性肽,因有望成為新型天然食品防腐劑而備受關(guān)注[2]。作為天然來源的抗菌肽,與傳統(tǒng)的抗菌劑相比,其獨(dú)特的抑制病原微生物生長且不易產(chǎn)生耐藥性的機(jī)理已成為廣大學(xué)者的研究熱點(diǎn)。Powers等[3]研究發(fā)現(xiàn)抗菌肽polyphemusin可破壞大腸桿菌細(xì)胞膜,從而使菌體裂解死亡;陳飛龍等[4]研究發(fā)現(xiàn)抗菌肽F1能夠以嵌插方式與金黃色葡萄球菌的DNA結(jié)合,干擾其正常代謝,從而達(dá)到抑菌效果。然而,由于抗菌肽生產(chǎn)成本高昂,且對其抑菌機(jī)理研究尚不夠深入,限制了其在食品及農(nóng)業(yè)生物防治等方面的應(yīng)用發(fā)展[5]。

    螺旋藻渣是螺旋藻粉生產(chǎn)過程中的沉積物,其蛋白質(zhì)含量高、價格低廉。在本課題組前期研究中,采用枯草芽孢桿菌YA215發(fā)酵螺旋藻渣,發(fā)現(xiàn)其發(fā)酵產(chǎn)物具有顯著的抗金黃色葡萄球菌效果[6],后續(xù)通過Sephadex LH-20凝膠層析柱和反相高效液相色譜法進(jìn)行分離純化,采用基質(zhì)輔助激光解吸電離飛行時間質(zhì)譜從發(fā)酵產(chǎn)物中鑒定得到兩種抗菌多肽:一種是伊枯草菌素(iturin A),分子質(zhì)量1 043.44 Da,為枯草芽孢桿菌自身代謝產(chǎn)物[7];另一種是螺旋藻渣發(fā)酵過程中產(chǎn)生的新型抗菌肽,將其命名為SP-AP-1,分子質(zhì)量1 422.60 Da,氨基酸序列為ATHDNCCLRQS。兩種抗菌肽iturin A和SP-AP-1對金黃色葡萄球菌的最小抑菌濃度(minimum inhibitory concentration,MIC)分別為0.052 mg/mL和0.014 mg/mL,本實驗以金黃色葡萄球菌為指示菌,從細(xì)胞膜表面疏水性、細(xì)胞膜通透性、K+泄漏情況、蛋白質(zhì)合成和基因組DNA遷移變化等方面探究兩種抗菌肽對金黃色葡萄球菌的抑菌機(jī)理,并比較其抗菌效果,以期為抗菌肽iturin A和SP-AP-1在食品和藥品領(lǐng)域中的應(yīng)用提供理論指導(dǎo)。

    1 材料與方法

    1.1 菌株、材料與試劑

    金黃色葡萄球菌CGMCC 14519由中國普通微生物菌種保藏管理中心提供。

    抗菌肽SP-AP-1(純度>95%)由湖北普羅金科技有限公司合成;iturin A購自美國Sigma公司。

    正十六烷、鄰硝基苯-β-D-吡喃半乳糖苷 上海麥克林生化科技有限公司;曲拉通 北京索萊寶科技有限公司;細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒 天根生化科技(北京)有限公司;考馬斯亮藍(lán)R-250 天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司;Nisaplin 丹尼斯克(中國)有限公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    UV-6100紫外-可見分光光度計 上海美譜達(dá)儀器有限公司;SW-CJ-2F潔凈工作臺 蘇州安泰空氣技術(shù)有限公司;ZEEnit700P原子吸收光譜儀 德國耶拿分析儀器股份公司;MOS-450圓二色光譜儀 法國Bio-Logic公司;SCIENTZ-48L冷凍型高通量組織研磨器 寧波新芝生物科技股份有限公司;GI80TW高壓蒸汽滅菌鍋致微(廈門)儀器有限公司;ZQZY-85CS振蕩培養(yǎng)箱上海知楚儀器有限公司;Gel-Doc XRS免疫電泳成像系統(tǒng)美國Bio-Rad科技公司;RF-5301PC熒光分光光度計島津企業(yè)管理中國有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1 抗菌肽對金黃色葡萄球菌生長的影響

    參照孟兆麗[8]的方法并稍作修改,將Nisaplin、抗菌肽SP-AP-1和iturin A分別加入金黃色葡萄球菌菌懸液(菌液濃度為108CFU/mL)中,使其終質(zhì)量濃度均為1 MIC。37 ℃、200 r/min連續(xù)培養(yǎng)24 h,每隔2 h進(jìn)行取樣,測定OD600nm,繪制生長曲線,以未加入抗菌樣品溶液的金黃色葡萄球菌作為空白對照。

    1.3.2 抗菌肽對細(xì)菌細(xì)胞表面疏水性的影響

    表面疏水性的測定參照Hou Lixia[9]和Pelletier[10]等的方法并稍作修改,采用0.02 mol/L pH 7.2磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline,PBS)洗滌對數(shù)期金黃色葡萄球菌并用0.1 mol/L KNO3溶液重懸(菌液濃度為108CFU/mL),依次將質(zhì)量濃度分別為1、1/2、1/4、1/8 MIC的兩種抗菌肽溶液與菌懸液等體積混合,對照組為等量PBS。37 ℃、200 r/min培養(yǎng)30 min,測定OD405nm(OD0);然后吸取體積為1.2 mL的菌懸液,向其中加入200 μL十六烷,25 ℃搖床混勻2 min,靜置15 min,直至菌懸液和十六烷兩相溶液完全分層,小心吸取水相,測定OD405nm(OD1)。細(xì)菌細(xì)胞表面疏水性按下式計算。

    1.3.3 抗菌肽對細(xì)菌細(xì)胞內(nèi)膜滲透性的影響

    參照Ibrahim等[11]的方法并稍作修改,吸取1 mL對數(shù)生長期金黃色葡萄球菌菌液,8 000 r/min離心15 min,收集菌體沉淀并用己滅菌的生理鹽水清洗兩次,然后將洗滌后的菌液加入到10 mL的M9乳糖誘導(dǎo)培養(yǎng)基中,37 ℃振蕩培養(yǎng)8 h,離心,洗滌菌體沉淀并用β-半乳糖苷酶反應(yīng)緩沖液將其重懸,使其OD630nm在0.2左右。吸取重懸液1.6 mL,分別向其中加入200 μL 質(zhì)量濃度為1 MIC的兩種抗菌肽溶液,再加入200 μL質(zhì)量濃度為1 mg/mL的鄰硝基苯-β-D-吡喃半乳糖苷,混合均勻,37 ℃水浴5 h,間隔1 h測定OD405nm的變化情況,陰性對照為PBS,陽性對照為曲拉通。

    M9乳糖誘導(dǎo)培養(yǎng)基(以1 L滅菌水計):乳糖5 g、Na2HPO4·7H2O 12.8 g、NaCl 0.5 g、NH4Cl 1 g、KH2PO43 g、CaCl20.01 g、MgSO40.5 g,121 ℃、0.1 MPa濕熱滅菌15~20 min。

    β-半乳糖苷酶反應(yīng)緩沖液(以1 L滅菌水計):Na2HPO4·12H2O 2.9 g、NaCl 8 g、KH2PO40.24 g、KCl 0.2 g、MgSO40.25 g、β-硫基乙醇0.39 g。

    1.3.4 抗菌肽對細(xì)菌細(xì)胞內(nèi)K+泄漏的影響

    將金黃色葡萄球菌菌懸液( 菌液濃度為108CFU/mL)分別與質(zhì)量濃度1 MIC的兩種抗菌肽混合,37 ℃孵育一定時間,10 000 r/min離心10 min,對照組為金黃色葡萄球菌菌懸液(菌液濃度為108CFU/mL,不添加任何抗菌肽溶液),采用原子吸收光譜儀測定上述上清液中K+質(zhì)量濃度的變化情況,每隔10 min記錄一次,共記錄7 次。

    1.3.5 抗菌肽對細(xì)菌胞內(nèi)蛋白質(zhì)合成的影響

    1.3.5.1 菌體胞內(nèi)蛋白質(zhì)相對含量的測定

    參照郭娟等[12]的方法,將培養(yǎng)至對數(shù)生長期的金黃色葡萄菌10 000 r/min離心15 min,收集菌體并重懸為108CFU/mL菌懸液,在100 mL菌懸液中分別加入質(zhì)量濃度0.5 mg/mL的SP-AP-1和iturin A(終質(zhì)量濃度均為1 MIC)和質(zhì)量濃度0.5 mg/mL Nisaplin,對照組加入等體積無菌蒸餾水,37 ℃恒溫培養(yǎng),分別取間隔培養(yǎng)1 h的菌懸液10 mL,離心,收集菌體沉淀并用PBS洗滌兩次。將沉淀轉(zhuǎn)移至研缽,液氮研磨,加入500 μL 20 g/100 mL三氯乙酸和400 μL超純水,冰浴10 min后離心取沉淀。用10 g/100 mL三氯乙酸再次重懸取沉淀,將菌體轉(zhuǎn)移至無菌試管中,加入100 μL生理鹽水重懸,再加入5 mL考馬斯亮藍(lán)染色液,室溫放置30 min后在595 nm波長處測定OD595nm。

    1.3.5.2 菌體蛋白十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳分析

    將培養(yǎng)至對數(shù)生長期的金黃色葡萄球菌用LB液體培養(yǎng)基培養(yǎng)液重懸后,分別加入兩種抗菌肽溶液(質(zhì)量濃度設(shè)置:1 MIC和5 MIC),為確保實驗準(zhǔn)確性,本實驗采取兩次對照(加入等體積的無菌蒸餾水),37 ℃、200 r/min培養(yǎng)8 h,8 000 r/min離心20 min,收集菌體,向菌體沉淀中加入500 μL PBS和0.3 g石英砂,8 000 r/min離心4 min,收集上清液,取20 μL上清液進(jìn)行十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfatepolyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE)分析。

    1.3.6 抗菌肽對金黃色葡萄球菌基因組DNA的影響

    參考寧亞維等[13]的方法并稍作修改。采用DNA提取試劑盒對金黃色葡萄球菌基因組DNA進(jìn)行提取,利用凝膠阻滯法觀察SP-AP-1和iturin A對金黃色葡萄球菌基因組DNA的影響。將金黃色葡萄球菌基因組DNA與質(zhì)量濃度分別為1、2、3 MIC和4 MIC的兩種抗菌肽溶液按照體積比1∶1混合,對照組為金黃色葡萄球菌基因組DNA(不添加抗菌肽溶液),總反應(yīng)體積為4 μL。充分混勻后,37 ℃恒溫水浴60 min。反應(yīng)結(jié)束后,用質(zhì)量分?jǐn)?shù)1%的瓊脂糖凝膠電泳觀察并分析基因組DNA的遷移結(jié)果。

    1.3.7 抗菌肽作用于細(xì)菌細(xì)胞膜時二級結(jié)構(gòu)的變化

    分別采用30 mmol/L SDS溶液和10 mmol/L PBS將兩種抗菌肽配制成質(zhì)量濃度為0.5 mg/mL的溶液,在石英比色皿中加入一定體積的抗菌肽溶液,25 ℃下用圓二色光譜儀對樣品進(jìn)行180~260 nm的遠(yuǎn)紫外掃描并采集數(shù)據(jù),掃描速率50 nm/min,帶寬1.0 nm。對掃描后的所有圖譜用CDNN軟件進(jìn)行減噪處理并對樣品溶液的二級結(jié)構(gòu)相對含量進(jìn)行擬合計算。

    1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計與分析

    所有實驗均重復(fù)3 次,實驗數(shù)據(jù)采用SPSS Statistics 19軟件與Origin 9.1軟件進(jìn)行統(tǒng)計分析,以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示。采用Duncan法進(jìn)行顯著差異性比較,P<0.05表示差異顯著。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 抗菌肽對金黃色葡萄球菌生長的影響

    由圖1可知,添加抗菌肽SP-AP-1和iturin A的金黃色葡萄球菌菌液在培養(yǎng)4 h后其生長曲線均發(fā)生明顯變化,菌液質(zhì)量濃度逐漸降低,8 h后OD600nm逐漸趨于穩(wěn)定,而對照組菌落生長正常,無明顯變化,表明兩種抗菌肽均能夠在金黃色葡萄球菌的對數(shù)生長期內(nèi)抑制其生長繁殖,且SP-AP-1比iturin A有更強(qiáng)的抑制作用。

    圖1 抗菌肽對金黃色葡萄球菌生長的影響Fig.1 Effects of antimicrobial peptides on the growth of S.aureus

    2.2 抗菌肽對細(xì)菌細(xì)胞表面疏水性的影響

    正十六烷是一種有機(jī)相,金黃色葡萄球菌在水相和有機(jī)相中的吸附率是不同的,因此,細(xì)菌細(xì)胞表面疏水性的改變可由吸附率來反映[14]。如圖2所示,當(dāng)抗菌肽SP-AP-1和iturin A作用于金黃色葡萄球菌后,各組間和組內(nèi)的細(xì)胞吸附率均存在顯著性差異(P<0.05)。其中,經(jīng)iturin A處理后,金黃色葡萄球菌細(xì)胞吸附率從PBS組的77.3%降為37.6%,而經(jīng)SP-AP-1處理的菌液細(xì)胞吸附率僅為33.5%,兩種抗菌肽對金黃色葡萄球菌細(xì)胞吸附率的影響均呈濃度依賴性。有研究表明,細(xì)胞表面疏水位點(diǎn)主要為蛋白質(zhì)-脂類和糖-脂類等物質(zhì)[15],故推測細(xì)胞表面疏水性降低的可能原因為抗菌肽與金黃色葡萄球菌細(xì)胞表面相互作用,吸引電負(fù)性基團(tuán)造成重排,從而導(dǎo)致金黃色葡萄球菌細(xì)胞表面電負(fù)性增強(qiáng),疏水性下降[16]。

    圖2 抗菌肽對金黃色葡萄球菌細(xì)胞表面疏水性的影響Fig.2 Effects of antimicrobial peptides on the cell surface hydrophobicity of S.aureus

    2.3 抗菌肽對細(xì)菌細(xì)胞內(nèi)膜滲透性的影響

    細(xì)菌經(jīng)乳糖誘導(dǎo)后,其細(xì)胞內(nèi)膜上能產(chǎn)生一種將乳糖水解成半乳糖和葡萄糖的β-半乳糖苷酶[17]。鄰硝基苯β-D-半乳吡喃糖苷可作為乳糖替代物被β-半乳糖苷酶水解成半乳糖和黃色的鄰-硝基苯酚,故通過測定反應(yīng)體系中OD值來反映抗菌肽對細(xì)菌細(xì)胞內(nèi)膜的破壞程度[18]。

    圖3 抗菌肽對金黃色葡萄球菌細(xì)胞內(nèi)膜通透性的影響Fig.3 Effects of antimicrobial peptides on the permeability of S.aureus cell membrane

    由圖3可知,當(dāng)抗菌肽作用于金黃色葡萄球菌后,兩種抗菌肽的OD405nm均隨時間的延長而增大,且在3 h時OD405nm達(dá)到最高,反應(yīng)體系進(jìn)行到5 h時,SP-AP-1組OD405nm顯著高于iturin A組(P<0.05)。而在整個反應(yīng)過程中,PBS陰性對照組基本無明顯變化,其OD405nm穩(wěn)定在0.42左右,這表明添加SP-AP-1和iturin A對金黃色葡萄球菌細(xì)胞內(nèi)膜造成了一定的損傷作用,導(dǎo)致其細(xì)胞內(nèi)膜滲透性增大、通透性增強(qiáng),底物鄰硝基苯β-D-半乳吡喃糖苷進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)的數(shù)量增多,β-半乳糖苷酶催化分解速率加快,故黃色產(chǎn)物鄰-硝基苯酚增多,OD405nm增大。隨著時間的延長,由于β-半乳糖苷酶數(shù)量有限,催化分解的速率達(dá)到最大值時,OD405nm不再隨底物鄰硝基苯β-D-半乳吡喃糖苷的增加而增大,而是保持相對穩(wěn)定的趨勢。這與趙廣旭[19]和張宇[20]自主設(shè)計的抗菌多肽具有類似作用效果,說明抗菌肽通過引起細(xì)菌細(xì)胞內(nèi)膜通透性改變,達(dá)到抑制或殺死細(xì)胞的效果。

    2.4 抗菌肽對細(xì)菌細(xì)胞膜內(nèi)K+的泄漏影響

    圖4 抗菌肽誘導(dǎo)金黃色葡萄球菌細(xì)胞內(nèi)K+釋放量的變化Fig.4 Effect of antimicrobial peptides on the release of intracellular potassium ions from S.aureus

    細(xì)胞內(nèi)K+的泄漏是離子泄漏的典型代表之一,其泄漏程度可反映抗菌肽作用于細(xì)胞時細(xì)胞膜的損傷程度[21-22]。由圖4可知,金黃色葡萄球菌經(jīng)SP-AP-1和iturin A處理后,其胞內(nèi)K+釋放量隨時間的延長均呈快速增長趨勢,而對照組變化不明顯,表明SP-AP-1和iturin A均能使金黃色葡萄球菌細(xì)胞膜通透性發(fā)生改變,且比較兩種抗菌肽的作用效果發(fā)現(xiàn),SP-AP-1比iturin A對金黃色葡萄球菌細(xì)胞膜的透化作用更強(qiáng)(P<0.05),這與2.3節(jié)中抗菌肽對細(xì)菌細(xì)胞內(nèi)膜的滲透性影響結(jié)果相符,充分說明SP-AP-1和iturin A均能與金黃色葡萄球菌細(xì)胞膜相互作用,破壞其細(xì)胞膜的完整性,導(dǎo)致菌體死亡。然而SP-AP-1和iturin A引起金黃色葡萄球菌細(xì)胞膜完整性的破壞是否是導(dǎo)致其細(xì)胞死亡的主要原因還需進(jìn)一步研究。

    2.5 抗菌肽對細(xì)菌胞內(nèi)蛋白質(zhì)合成的影響

    2.5.1 菌體胞內(nèi)蛋白相對含量分析結(jié)果

    圖5 抗菌肽對金黃色葡萄球菌胞內(nèi)蛋白相對含量的影響Fig.5 Effects of antimicrobial peptides on intracellular protein content of S.aureus

    由圖5可知,對照組胞內(nèi)蛋白相對含量隨時間的延長而持續(xù)增加,且在10 h后保持穩(wěn)定,而添加抗菌肽的實驗組金黃色葡萄球菌胞內(nèi)蛋白相對含量均呈先增加后降低的趨勢。郭娟等[12]研究發(fā)現(xiàn),抗菌肽與細(xì)菌作用后,短時間內(nèi)細(xì)胞膜受損但尚未破裂,故其胞內(nèi)蛋白相對含量表現(xiàn)出升高趨勢。添加SP-AP-1和iturin A的實驗組金黃色葡萄球菌胞內(nèi)蛋白相對含量分別在4 h和6 h后急劇下降,且兩組具有顯著性差異(P<0.05),這可能是因為金黃色葡萄球菌細(xì)胞膜的破裂導(dǎo)致胞內(nèi)蛋白相對含量降低,也可能是由于抗菌肽進(jìn)入細(xì)胞后使其DNA轉(zhuǎn)錄和翻譯過程受到抑制,因而菌體本身胞內(nèi)蛋白含量降低[4]。

    2.5.2 菌體蛋白十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳檢測結(jié)果

    圖6 菌體蛋白SDS-PAGE分析結(jié)果Fig.6 SDS-PAGE analysis of the effect of antimicrobial peptides on intracellular proteins of S.aureus

    由圖6可知,對照組胞內(nèi)蛋白條帶完整清晰,而經(jīng)抗菌肽SP-AP-1和iturin A處理后的實驗組金黃色葡萄球菌胞內(nèi)蛋白出現(xiàn)不同程度的缺失現(xiàn)象。其中,蛋白條帶缺失較多的部分主要集中在分子質(zhì)量17、20、25~35 kDa,說明兩種抗菌肽可影響金黃色葡萄球菌的基因轉(zhuǎn)錄或翻譯功能,進(jìn)而抑制其蛋白質(zhì)的合成,導(dǎo)致金黃色葡萄球菌胞內(nèi)分子質(zhì)量17、20、25~35 kDa之間的蛋白含量降低;同時,研究發(fā)現(xiàn)當(dāng)兩種抗菌肽質(zhì)量濃度從1 MIC增大到5 MIC時,分子質(zhì)量在48~75 kDa之間的蛋白也會發(fā)生明顯的缺失現(xiàn)象,金黃色葡萄球菌的蛋白條帶清晰度明顯下降,顏色明顯變淺,特別是經(jīng)質(zhì)量濃度5 MIC抗菌肽SP-AP-1處理后,金黃色葡萄球菌胞內(nèi)蛋白條帶幾乎沒有,說明增大抗菌肽SP-AP-1質(zhì)量濃度,金黃色葡萄球菌胞內(nèi)蛋白含量急劇降低,金黃色葡萄球菌胞內(nèi)蛋白質(zhì)的合成完全受到抑制。因此,SDS-PAGE實驗進(jìn)一步表明抗菌肽進(jìn)入金黃色葡萄球菌細(xì)胞后,抑制其胞內(nèi)蛋白合成,從而導(dǎo)致菌體死亡,且高質(zhì)量濃度的抗菌肽對金黃色葡萄球菌具有更強(qiáng)的抑制效果。陳飛龍等[4]研究了抗菌肽F1對金黃色葡萄球菌的胞內(nèi)作用機(jī)制,也發(fā)現(xiàn)抗菌肽F1能夠造成分子質(zhì)量20~30 kDa的蛋白含量降低,蛋白條帶顏色顯著變淺。

    2.6 抗菌肽對菌體基因組DNA的影響

    圖7 抗菌肽對金黃色葡萄球菌基因組DNA的影響Fig.7 Effect of antimicrobial peptides on genomic DNA of S.aureus

    如圖7所示,不同質(zhì)量濃度的抗菌肽SP-AP-1和iturin A作用于金黃色葡萄球菌后,菌體DNA條帶并未發(fā)生明顯的遷移現(xiàn)象,且部分DNA滯留于上樣孔內(nèi),這可能是因為電荷電負(fù)性發(fā)生改變或DNA雙螺旋結(jié)構(gòu)改變,從而影響DNA遷移率[23-24]。增大兩種抗菌肽質(zhì)量濃度,iturin A作用的金黃色葡萄球菌菌體DNA條帶遷移率和亮度沒有明顯變化,而SP-AP-1作用的金黃色葡萄球菌菌體DNA條帶亮度逐漸變暗、顏色變淺,這是由于抗菌肽與溴化乙錠競爭性結(jié)合DNA[25],使金黃色葡萄球菌的基因功能受到影響,從而抑制其生長繁殖。Li Lirong等[26]研究發(fā)現(xiàn)細(xì)胞穿透肽衍生物可與溴化乙錠競爭性結(jié)合傷寒沙門氏菌DNA,從而導(dǎo)致菌體死亡;郭娟[12]和陳璇[27]等的研究也均證實了此觀點(diǎn)。因此,雖然兩種抗菌肽對金黃色葡萄球菌基因組DNA沒有明顯阻滯作用,但推測抗菌肽SP-AP-1可能與溴化乙錠競爭性結(jié)合DNA,使核酸合成受到抑制,而抗菌肽iturin A不能達(dá)到此效果。

    2.7 抗菌肽作用于細(xì)菌細(xì)胞膜時二級結(jié)構(gòu)的變化分析結(jié)果

    抗菌肽的抑菌活性與其二級結(jié)構(gòu)的變化密切相關(guān)[28]。圓二色光譜法是目前測定蛋白質(zhì)二級結(jié)構(gòu)、研究蛋白質(zhì)在稀溶液中的結(jié)構(gòu)和構(gòu)象變化的較為準(zhǔn)確和應(yīng)用廣泛的方法之一[29]。本實驗利用圓二色光譜法對兩種抗菌肽在PBS和SDS疏水環(huán)境下的二級結(jié)構(gòu)變化進(jìn)行研究分析(圖8)。

    圖8 兩種抗菌肽在PBS和SDS緩沖液中的圓二色光譜Fig.8 Circular dichroism spectra of two antimicrobial peptides in PBS and SDS buffers

    表1 兩種抗菌肽二級結(jié)構(gòu)的相對含量Table 1 Proportions of secondary structures in two antimicrobial peptides

    兩種抗菌肽在不同環(huán)境下的二級結(jié)構(gòu)相對含量見表1。當(dāng)抗菌肽SP-AP-1處于PBS體系中時,其二級結(jié)構(gòu)主要以無規(guī)卷曲(相對含量43.3%)為主;當(dāng)抗菌肽SP-AP-1處于SDS緩沖液體系中時,其二級結(jié)構(gòu)中無規(guī)卷曲相對含量減少,α-螺旋、反向平行、平行及β-轉(zhuǎn)角相對含量均有所增加,β-折疊(反向平行和平行)相對含量增加幅度最為明顯;而抗菌肽iturin A二級結(jié)構(gòu)相對含量變化主要以β-轉(zhuǎn)角為主,當(dāng)抗菌肽iturin A從PBS體系轉(zhuǎn)變到SDS緩沖液體系后,其二級結(jié)構(gòu)中β-轉(zhuǎn)角相對含量從6.7%增加到27.5%。有研究表明,大部分抗菌肽通常在液體環(huán)境中的二級結(jié)構(gòu)都是以無規(guī)卷曲為主,當(dāng)抗菌肽接觸細(xì)菌細(xì)胞膜后,其結(jié)構(gòu)或構(gòu)象會發(fā)生一定程度的變化,這種構(gòu)象變化與其抗菌活性緊密相關(guān)[30]。因此,本實驗中兩種抗菌肽在緩沖液環(huán)境及模擬膜的疏水環(huán)境下二級結(jié)構(gòu)的變化間接反映了當(dāng)抗菌肽作用于金黃色葡萄球菌時的抑菌機(jī)制。

    3 結(jié) 論

    本實驗以螺旋藻渣抗菌肽SP-AP-1和iturin A為研究對象,對比了兩種抗菌肽對金黃色葡萄球菌的抑菌機(jī)制。結(jié)果表明,iturin A主要通過引起金黃色葡萄球菌細(xì)胞膜通透性增加、抑制菌體蛋白合成,從而抑制菌體生長繁殖;而SP-AP-1對金黃色葡萄球菌的抑菌機(jī)制則是影響細(xì)胞膜通透性、抑制蛋白合成和競爭性結(jié)合DNA共同作用的結(jié)果,且其抑制效果比iturin A更為明顯,為進(jìn)一步探究抗菌肽SP-AP-1的廣譜抗菌機(jī)制提供了一定的理論指導(dǎo)。

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