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    駿棗的多糖提取及其蛋白脫除研究

    2021-01-09 02:36:48曹澤虹董玉瑋張廣亮
    關(guān)鍵詞:損失率紅棗提取液

    曹澤虹,董玉瑋,李 超,張廣亮

    (徐州工程學(xué)院 食品(生物)工程學(xué)院/江蘇省食品資源開發(fā)與質(zhì)量安全重點(diǎn)建設(shè)實(shí)驗(yàn)室/江蘇省食品與生物工程實(shí)驗(yàn)中心, 江蘇 徐州 221008)

    和田駿棗(ZiziphusjujubaMill. cv Junzao)又叫和田玉棗,是中國新疆地理標(biāo)志產(chǎn)品,也是無公害綠色產(chǎn)品[1]。由于和田地處新疆南部,干旱少雨,光照時間長,晝夜溫差大,因此和田駿棗的質(zhì)量明顯高于其他棗類,富含多糖、維生素、微量元素及黃酮類等生物活性物質(zhì)。許多實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,紅棗多糖具有提高免疫力和抗氧化的生理功能,可以補(bǔ)氣養(yǎng)血、預(yù)防心血管疾病,還有抗補(bǔ)體活性、抗腫瘤活性和促進(jìn)淋巴細(xì)胞增殖的作用[2-4]。

    采用水溶提取法提取紅棗多糖[5],具有無需大型設(shè)備、操作簡單安全性好、成本低、提取率高等優(yōu)勢,適合工業(yè)化大規(guī)模生產(chǎn)[6]。由于提取工藝的限制,在紅棗多糖中往往會摻有一些蛋白質(zhì),影響其品質(zhì)[7-8],對紅棗多糖中蛋白質(zhì)進(jìn)行脫除,可以提高紅棗多糖的純度和品質(zhì)。

    本研究以和田駿棗為研究材料,探究利用水提法提取紅棗多糖的工藝流程,以及紅棗多糖的蛋白脫除方法,以期為紅棗多糖的進(jìn)一步開發(fā)利用提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    和田駿棗(ZiziphusJujubaMill. cv Junzao),購買于徐州市大潤發(fā)超市。

    G- 250蛋白試劑,中國惠興生化試劑有限公司;考馬斯亮藍(lán),天津市益力化學(xué)試劑有限公司;實(shí)驗(yàn)用水為蒸餾水;其他試劑均為國產(chǎn)分析純。

    1.2 儀器與設(shè)備

    7230G型可見分光光度計(jì)、FA2104N型電子天平,上海精密科學(xué)儀器有限公司;PC- 1000型數(shù)顯式電熱恒溫水浴鍋、GZX- DH- 600型電熱恒溫干燥箱,上海躍進(jìn)醫(yī)療器械廠;L550型低速離心機(jī),常州國華電器有限公司;FAD- 100A型組織粉碎機(jī),華東冶礦機(jī)械廠;BCD- 13OH TB型海爾冰箱,青島海爾股份有限公司。

    1.3 紅棗的預(yù)處理

    研究所用紅棗的預(yù)處理方法見圖1。

    圖1 紅棗的預(yù)處理流程

    1.4 多糖的提取實(shí)驗(yàn)

    1.4.1單因素實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)

    取5份紅棗粉,每份1 g,以料液比、提取時間、提取溫度3個因素進(jìn)行單因素設(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn)[9-12]。選取提取時間2 h、提取溫度60 ℃的條件下進(jìn)行料液比實(shí)驗(yàn)研究,料液比(m(紅棗粉)∶V(水))選取1∶15、1∶20、1∶25、1∶30、1∶35 g/mL;選取提取溫度60 ℃、料液比1∶25 g/mL的條件下進(jìn)行提取時間實(shí)驗(yàn)研究,提取時間選取2、3、4、5、6 h;選取提取時間2 h、料液比1∶25 g/mL的條件下進(jìn)行提取溫度實(shí)驗(yàn)研究,提取溫度選取 60、70、80、90、100 ℃,研究各因素對紅棗多糖提取率的影響。

    1.4.2響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)

    在單因素實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)上,采取Box- Behnken設(shè)計(jì)方法,對料液比、提取時間和提取溫度進(jìn)行響應(yīng)面試驗(yàn),以提取率為響應(yīng)值,通過實(shí)驗(yàn)得到數(shù)據(jù)并對其進(jìn)行分析,利用響應(yīng)面法來優(yōu)化提取工藝條件,由此可得到影響因素與響應(yīng)值之間的擬合方程,生成響應(yīng)面圖[13-14],并利用軟件預(yù)測較佳工藝條件。

    1.4.3多糖的提取

    取稱1 g紅棗粉,按照較佳提取工藝進(jìn)行提取,提取后離心,得到上清液,用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀進(jìn)行減壓蒸發(fā)濃縮,在60 ℃的條件下蒸發(fā)20 min,得到濃縮液,緩慢加入4倍體積的體積分?jǐn)?shù)為90%的乙醇溶液,放入4 ℃冰箱中冷藏12 h。將醇沉過夜的樣品在5 000 r/min條件下離心25 min,離心后將上清液倒出,取出沉淀物,在-50 ℃、10 Pa的條件下,冷凍干燥24 h,稱量得到一定質(zhì)量的紅棗多糖,計(jì)算粗多糖得率。

    1.5 多糖蛋白的脫除實(shí)驗(yàn)

    1.5.1多糖蛋白含量的測定

    采用考馬斯亮藍(lán)G- 250法測定蛋白質(zhì)的含量[7-8]。將紅棗多糖溶解于100 mL純水中,向試管中加入1 mL紅棗多糖溶液、5 mL G- 250蛋白試劑,振蕩均勻;2 min后,在595 nm波長處測吸光度,紅棗多糖中蛋白質(zhì)質(zhì)量濃度(mg/g)的計(jì)算見式(1)。

    (1)

    式(1)中,C為由樣品測定的吸光度代入回歸方程得到的蛋白質(zhì)質(zhì)量濃度,μg/mL;V為樣品提取液的總體積,mL;P為稀釋倍數(shù);10-3為將μg換算成mg的轉(zhuǎn)換系數(shù);W為稱取的紅棗粉質(zhì)量,g。

    1.5.2多糖蛋白脫除率的測定

    蛋白質(zhì)脫除率的計(jì)算見式(2)。

    (2)

    式(2)中,A0表示脫蛋白前樣品中蛋白質(zhì)質(zhì)量分?jǐn)?shù),mg/g;A1表示脫蛋白質(zhì)后樣品中蛋白質(zhì)質(zhì)量分?jǐn)?shù),mg/g。

    1.5.3多糖損失率的測定

    紅棗多糖損失率的計(jì)算見式(3)。

    (3)

    式(3)中,B0表示脫蛋白前樣品中多糖質(zhì)量分?jǐn)?shù),g/g;B1表示脫蛋白后樣品中多糖質(zhì)量分?jǐn)?shù),g/g。

    1.5.4多糖蛋白的脫除

    1.5.4.1 Seveage法脫除

    以m(紅棗多糖提取液)∶m(正丁醇與氯仿的混合液)=5∶1的比例,在紅棗多糖提取液中加入正丁醇與氯仿的混合液[V(正丁醇)∶V(氯仿)=1∶4],混合均勻,用搖床震搖20 min,倒入分液漏斗中,靜置30 min,分液。重復(fù)進(jìn)行3次,分別測定紅棗多糖提取液中和脫蛋白的紅棗多糖提取液中的蛋白質(zhì)含量[7-8],進(jìn)行蛋白質(zhì)的脫除率和紅棗多糖的損失率計(jì)算。

    1.5.4.2 三氯乙酸法脫除

    以m(紅棗多糖提取液)∶m(三氯乙酸)=1∶1.5的比例,在紅棗多糖提取液中加入體積分?jǐn)?shù)為5%的三氯乙酸(trichloroacetic acid,TCA)水溶液,混合均勻,在冰箱中靜置4~6 h,在離心速度為4 000 r/min條件下離心15 min,除去沉淀,保留上清液,重復(fù)2~3次,進(jìn)行蛋白質(zhì)的脫除率和紅棗多糖損失率的計(jì)算。

    1.5.4.3 CaCl2法脫除

    在紅棗多糖提取液中用質(zhì)量分?jǐn)?shù)為2%的氫氧化鈉水溶液調(diào)節(jié)pH值為8,并加熱到85 ℃。將CaCl2加入提取液中,使其質(zhì)量分?jǐn)?shù)為5%,加熱攪拌30 min,待溶液冷卻至室溫后過濾,濾液用2 mol/L稀HCl調(diào)整pH值至7。將濾液離心后收集上清液,重復(fù)2~3次,進(jìn)行蛋白質(zhì)的脫除率和紅棗多糖的損失率計(jì)算。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 多糖標(biāo)準(zhǔn)曲線方程的建立

    分別吸取葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液0.0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2、1.4 mL于大試管中,加入質(zhì)量濃度為6%的苯酚溶液1 mL和硫酸5.0 mL,靜置5 min,于100 ℃的水浴鍋中水浴15 min,適當(dāng)冷卻,然后在490 nm波長處測其吸光度。以葡萄糖含量質(zhì)量濃度(mg/mL)為橫坐標(biāo),吸光度為縱坐標(biāo),建立的多糖標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為C=15.245A+0.0147(R2=0.999 0)。

    2.2 蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線方程的建立

    分別吸取蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)溶液0.0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL于試管中,再分別吸取蒸餾水1.0、0.8、0.6、0.4、0.2及0.0 mL于試管中,最后在每個試管中加入5 mL考馬斯亮藍(lán)G- 250,混勻。按照1.5.1節(jié)方法建立蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線。以蛋白質(zhì)質(zhì)量濃度(μg/mL)為橫坐標(biāo),其吸光度為縱坐標(biāo),建立的蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為y=15.245x+0.014 7(R2=0.990 3)。

    2.3 多糖提取條件的優(yōu)化結(jié)果

    2.3.1單因素實(shí)驗(yàn)優(yōu)化結(jié)果

    圖2 料液比對紅棗多糖提取率的影響Fig.2 Effect of solid-liquid ratio on yield of jujube polysaccharide

    2.3.1.1 料液比的影響

    按1.4.1節(jié)進(jìn)行單因素實(shí)驗(yàn),料液比對紅棗多糖提取率的影響結(jié)果見圖2。

    由圖2可知,隨著料液比的降低,紅棗多糖在水溶液中的溶解度增加;但是當(dāng)料液比達(dá)到1∶30 g/mL以后,紅棗多糖的提取率又呈現(xiàn)出下降的趨勢,這是由于溶劑和溶質(zhì)之間的濃度差太大,反而會降低紅棗多糖在水中的溶解度,使紅棗多糖的提取率降低。因此當(dāng)料液比為1∶30 g/mL時,紅棗多糖的提取率最高,為40.07%。

    2.3.1.2 提取時間的影響

    按1.4.1節(jié)進(jìn)行單因素實(shí)驗(yàn),提取時間對紅棗多糖提取率的影響結(jié)果見圖3。

    圖3 提取時間對紅棗多糖提取率的影響Fig.3 Effect of extraction time on yield of jujube polysaccharide

    由圖3可知,提取時間越長,多糖提取越充分。但是,當(dāng)提取時間達(dá)到3 h后,則多糖結(jié)構(gòu)會被破壞,因此導(dǎo)致多糖提取率下降。當(dāng)提取時間為3 h時,紅棗多糖的提取率最高,為45.27%。

    2.3.1.3 提取溫度的影響

    按1.4.1節(jié)進(jìn)行單因素實(shí)驗(yàn),提取溫度對紅棗多糖提取率的影響結(jié)果見圖4。

    圖4 提取溫度對紅棗多糖提取率的影響Fig.4 Effect of extraction temperature on yield of jujube polysaccharide

    由圖4可知,紅棗多糖的提取率最初隨著溫度的升高而增加。這是因?yàn)殡S著水浴溫度的升高,分子運(yùn)動速度加快,因此多糖的提取率也增加。當(dāng)溫度達(dá)到85 ℃以上時,紅棗多糖的提取率降低,因?yàn)檫^高的溫度會破壞多糖的結(jié)構(gòu)。當(dāng)提取溫度為80 ℃時,紅棗多糖的提取率最高,為45.53%。

    2.3.2響應(yīng)面試驗(yàn)優(yōu)化結(jié)果

    通過單因素實(shí)驗(yàn),得到水提法提取紅棗多糖較佳單因素條件為料液比為1∶30 g/mL,提取溫度為80 ℃,提取時間為3 h。根據(jù)此條件設(shè)計(jì)3因素3水平的響應(yīng)面試驗(yàn),確定提取紅棗多糖的最佳工藝條件,響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)和結(jié)果見表1。

    表1 多糖提取條件響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)和結(jié)果Tab.1 Response surface experimental design and resultsof extraction conditions of ploysaccharides

    利用Design expert軟件對表2數(shù)據(jù)進(jìn)行擬合,得到提取率對以上三個因素的擬合回歸方程為多糖提取率=45.23+1.43×A+0.53×B-0.020×C+0.72×A×B+0.17×A×C-0.27×B×C-2.89×A2-1.31×B2-0.37×C2,對該模型進(jìn)行方差分析,分析結(jié)果表明,回歸方程具有較高的擬合度和可信度,實(shí)驗(yàn)誤差較小,表明模型的相關(guān)性非常好?;貧w系數(shù)R2>0.9,自變量與響應(yīng)值之間存在線性關(guān)系,因此,回歸方程可以進(jìn)一步用來進(jìn)行最佳提取工藝條件的優(yōu)化,所以可以使用該模型來分析響應(yīng)值的變化。根據(jù)回歸分析結(jié)果,作出響應(yīng)面圖和等高線圖,見圖5。利用Design Expert軟件對提取紅棗多糖的最佳工藝條件進(jìn)行預(yù)測,由圖5可知,紅棗多糖的較佳提取工藝條件是料液比為1∶30 g/mL,提取溫度80 ℃,提取時間3 h,提取率為45.96%。

    2.3.3驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)

    在響應(yīng)面試驗(yàn)得出的較優(yōu)條件下進(jìn)行3次平行實(shí)驗(yàn),測得的紅棗多糖提取率平均值為45.86%,與預(yù)測值基本相符。

    2.4 紅棗多糖脫蛋白研究

    2.4.1Seveage法脫除結(jié)果

    用Seveage法進(jìn)行紅棗多糖的脫蛋白實(shí)驗(yàn),脫蛋白前后蛋白質(zhì)質(zhì)量分?jǐn)?shù)依次為5.91 mg/g和1.22 mg/g,蛋白質(zhì)的脫除率為79.36%;脫蛋白前后多糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)依次為0.46 g/g和0.35 g/g,紅棗多糖的損失率為23.91%。

    2.4.2三氯乙酸法脫除結(jié)果

    用三氯乙酸法進(jìn)行紅棗多糖的脫蛋白實(shí)驗(yàn),脫蛋白前后蛋白質(zhì)質(zhì)量分?jǐn)?shù)依次為5.91 mg/g和1.06 mg/g,蛋白質(zhì)的脫除率為82.06%;脫蛋白前后多糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)依次為0.46 g/g和0.39 g/g,紅棗多糖的損失率為15.21%。

    2.4.3CaCl2法脫除結(jié)果

    用CaCl2法進(jìn)行紅棗多糖的脫蛋白實(shí)驗(yàn),脫蛋白前后蛋白質(zhì)質(zhì)量分?jǐn)?shù)依次為5.91 mg/g和1.15 mg/g,蛋白質(zhì)的脫除率為80.54%;脫蛋白前后多糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)依次為0.46 g/g和0.37 g/g,紅棗多糖的損失率為19.56%。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,在3種多糖脫除蛋白的方法中,三氯乙酸法的蛋白脫除率最高,為82.06%,紅棗多糖的損失率也是最低的,為15.21%。

    3 結(jié) 論

    通過單因素實(shí)驗(yàn)對水提法提取紅棗多糖的工藝條件進(jìn)行了研究,得到的較佳提取條件是料液比1∶30 g/mL、提取時間3 h、提取溫度80 ℃。在單因素實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上,采用響應(yīng)面對紅棗多糖提取工藝條件進(jìn)行研究,建立了提取率和各個因素之間的數(shù)學(xué)模型,得到了紅棗多糖提取的最佳工藝參數(shù)為m(紅棗)∶V(水)=1∶30 g/mL、提取時間3 h、提取溫度80 ℃,在此提取條件下,紅棗多糖的提取率為45.86%。

    圖5 多糖提取響應(yīng)面試驗(yàn)優(yōu)化結(jié)果Fig.5 Optimum results of polysaccharide extraction by response surface methodology

    采用Seveage法、三氯乙酸法和CaCl2法3種方法對紅棗多糖進(jìn)行了脫蛋白對比研究,結(jié)果表明,采用三氯乙酸法對紅棗多糖中蛋白質(zhì)的脫除效果最好、多糖損失率最低,多糖蛋白的脫除率為82.08%,多糖損失率為15.21%。

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