沈 婷,袁 婕,常 莎,馬 妮
(1. 西安工程大學(xué)校醫(yī)院內(nèi)科,西安 710048;2. 陜西省人民醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)一科,西安 710068)
缺血再灌注損傷[1]是指當機體組織或者細胞缺血一段時間后.重新恢復(fù)供血,但當恢復(fù)供血后其因缺血導(dǎo)致的損傷不僅沒有得到緩解反而加重的癥狀。一般情況組織缺血后再灌注其功能后人結(jié)構(gòu)也會得到恢復(fù)。但是在腦組織中,缺血再灌注是一個快速的級聯(lián)反應(yīng),不僅灌注后不會恢復(fù)其功能還會使得損傷加重[2]。腦部的缺血再灌注可能涉及到炎性反應(yīng)和氧化應(yīng)激導(dǎo)致神經(jīng)細胞凋亡[3]。醒腦靜是一種常見的急救藥。醒腦靜注射液是由安宮牛黃丸經(jīng)科學(xué)提取精制而成的水溶性靜脈注射液[4]。主要成分包括梔子、冰片、麝香等主要功效包括:開竅醒腦、清熱解毒。有研究表明[5,6]:醒腦靜注射液可以抑制神經(jīng)元的興奮性,并增加血腦屏障的通透性??梢杂行У木徑饽X部的缺血再灌注損傷。本文旨在研究解醒腦靜聯(lián)合缺血預(yù)適應(yīng)對腦缺血再灌注的作用機制。
1.1 動物雌性大鼠(SPF 級;6 周齡)30 只,由自北京維通利華實驗動物技術(shù)有限公司提供,動物許可證號SCXK(京)2017-0022。
1.2 藥物與試劑醒腦靜注射液 國藥準字 Z41020664;產(chǎn)品批號:20170821 購于廠家為河南天地藥業(yè)股份有限公司;Bcl-2、Bax 蛋白單克隆抗體購自美國Santa Cruz公司。
1.3 儀器恒溫水箱購自上海信帆生物科技有限公司,SG-51 正置型金相顯微鏡購自上海光學(xué)儀器廠;721 分光光度計購自美國sigma 公司;LD-66 實驗室切片機購自長沙益廣制藥機械公司。
1.4 模型建立[7]將大鼠麻醉,在大鼠頸總動脈距離頸內(nèi)動脈分叉處約5mm 處造口插入尼龍絲,使得大鼠腦中動脈閉塞2 小時,取出拔出栓線,恢復(fù)大鼠腦組織供血,制成大鼠腦缺血再灌注模型。
1.5 分組及缺血預(yù)適干預(yù)將造模的30 只大鼠為三組:模型組、醒腦靜聯(lián)合缺血預(yù)適組,選取醒腦靜聯(lián)合缺血預(yù)適組,從第5 周開始缺血預(yù)適應(yīng),缺血預(yù)適應(yīng)方法為:結(jié)扎大鼠5min 缺血,5 min 再灌反復(fù)循環(huán)3 次,一次/d。注射藥物:A 組(空白組):生理鹽水 15mL/kg,B 組(模型組)生理鹽水 15mL/kg,C 組(醒腦靜聯(lián)合缺血預(yù)適組)醒腦靜注射液 15mL/kg。
1.6 檢測項目
1.6.1 缺血側(cè)腦組織形態(tài)學(xué)變化常規(guī)使用HE 染色后使用中性樹膠封片。400 倍光鏡觀察腦組織凋亡情況。
1.6.2 醒腦靜聯(lián)合缺血預(yù)適應(yīng)對細胞凋亡影響使用TUNEL 染色,具體步驟為:使用二甲苯脫蠟浸泡10 min再梯度酒精脫蠟,完成后用PBS 沖洗 5min 后使用蒸餾水清洗 2 min,重復(fù)清洗多次后使用2 %過氧化氫的PBS 溶液浸泡5 min。使用PBS 緩沖液沖洗5 min 后使用TdT 酶反應(yīng)液浸泡1 h。使用PBS 緩沖液沖洗多次后使用過氧化物酶標記的抗地高辛抗體處理30 min 后PBS 洗5 min,使用DAB 顯色 5 min 后使用蒸餾水清洗多次。使用中性樹膠封片。400 倍光鏡觀察12h、24h、36h 細胞凋亡數(shù)目并計算凋亡率。
1.6.3 醒腦靜聯(lián)合缺血預(yù)適應(yīng)大鼠Bcl-2、Bax 蛋白表達影響使用Western blot 檢測大鼠腦組織Bcl-2、Bax蛋白表達情況,取大鼠腦組織,使用胰蛋白酶消化后,使用BCA 法測定蛋白濃度后,使用SDS-PAGE 電泳提取總蛋白,半干法將蛋白轉(zhuǎn)移到PVDF 膜后放入 TBST溶液中緩慢搖動洗膜5 分鐘,再將 PVDF 膜放入配制好的一抗液中孵育,室溫下緩慢搖動 30 分鐘后放入4℃恒溫箱中過夜。取出后使用TBST 洗滌三遍后放入二抗反應(yīng)液中室溫孵育 2 小時;封閉液:二抗為2000:1;曝光后以β-actin 為內(nèi)參蛋白,目的蛋白條帶灰度值/內(nèi)參條帶灰度值為相對蛋白表達水平。
1.7 統(tǒng)計學(xué)方法本研究采用SPSS 18.0 軟件和Excel2010 軟件對數(shù)據(jù)進行處理和分析,方差分析使用單因素方差分析,所有檢驗中P<0.05 即提示差異有統(tǒng)計學(xué)意義,本研究所有檢驗均為雙側(cè)檢驗。
2.1 缺血側(cè)腦組織形態(tài)學(xué)變化空白對照組大鼠腦組織細胞數(shù)目較多,細胞輪廓清晰、緊密。模型組大鼠的腦組織細胞間質(zhì)水腫且結(jié)構(gòu)變得疏松,個數(shù)也顯著減少。相比模型組,醒腦靜聯(lián)合缺血預(yù)適應(yīng)組大鼠的細胞較多,輪廓較為清晰、緊密,細胞間質(zhì)水腫明顯減少,見圖1。
圖1 缺血側(cè)腦組織形態(tài)學(xué)變化(×400)
2.2 醒腦靜聯(lián)合缺血預(yù)適應(yīng)對細胞凋亡影響與空白組相比,模型組大鼠12 h 時,細胞凋亡百分比上升(P<0.01);24 h 時,細胞凋亡百分比上升(P<0.01);36 h 細胞凋亡百分比上升(P<0.01)。與空白組相比,實驗組大鼠12 h 時,細胞凋亡百分比上升(P<0.05);24 h 細胞凋亡百分比上升(P<0.05);36 h 細胞凋亡百分比上升(P<0.05)。與模型組相比,實驗組大鼠12 h 時,細胞凋亡百分比下降(P<0.01);24 h 細胞凋亡百分比下降(P<0.01);36 h 細胞凋亡百分比下降(P<0.01),見圖2。
2.3 醒腦靜聯(lián)合缺血預(yù)適應(yīng)大鼠Bcl-2、Bax 蛋白表達影響與空白組相比,模型組大鼠Bcl-2 蛋白的表達下降(P<0.01),模型組大鼠Bax 蛋白表達升高(P<0.01)。與空白組相比,醒腦靜聯(lián)合缺血預(yù)適應(yīng)組大鼠Bcl-2 蛋白的表達升高(P<0.01),醒腦靜聯(lián)合缺血預(yù)適應(yīng)組大鼠Bax 蛋白表達下降(P<0.01)。與模型組相比,醒腦靜聯(lián)合缺血預(yù)適應(yīng)組Bcl-2 蛋白的表達升高(P<0.01),Bax蛋白表達下降(P<0.01),見圖3。
由圖4 可知,相比空白組,模型組大鼠的Bcl-2 蛋白表達顯著下降,相比模型組腦靜聯(lián)合缺血預(yù)適應(yīng)組大鼠的Bcl-2 蛋白表達有一定的增加。
圖2 醒腦靜聯(lián)合缺血預(yù)適應(yīng)對細胞凋亡影響
圖3 醒腦靜聯(lián)合缺血預(yù)適應(yīng)大鼠Bcl-2、Bax蛋白表達影響
2.4 大鼠腦組織的Bcl-2、Bax 蛋白觀察由圖5 可知,相比空白組,模型組大鼠的Bax 蛋白表達顯著升高,相比模型組腦靜聯(lián)合缺血預(yù)適應(yīng)組大鼠的Bax 蛋白表達有一定的減少。
細胞凋亡(Apoptosis)是由Kerr 等提出的一種在形態(tài)學(xué)上和壞死完全不同的細胞死亡類型[8]。Steller 和GE 研究表明:在腦缺血后細胞受到影響會自行按照界定的程序死亡的[9,10]。本實驗中,使用醒腦靜聯(lián)合缺血預(yù)適應(yīng)方法的大鼠腦組織程序性死亡的數(shù)量顯著低于模型組,說明了使用醒腦靜聯(lián)合缺血預(yù)適應(yīng)方法有效保護了大鼠的腦組織細胞,達到了緩解了腦組織的凋亡的效果。
圖4 大鼠腦組織的Bcl-2蛋白表達觀察
圖5 大鼠腦組織的Bcl-2蛋白表達觀察
目前研究發(fā)現(xiàn):Bcl-2 是Bcl-2 家族調(diào)控細胞凋亡的蛋白,Bcl-2 可以抑制細胞的凋亡,Bcl-2 家族的Bax蛋白可以促進細胞的凋亡[11]也有研究發(fā)現(xiàn),Bcl-2 的高表達能夠使缺血性腦損傷得到有效的緩解[12,13],緩解缺血性腦損傷的主要作用是抑制細胞凋亡,Bcl-2 也是神經(jīng)系統(tǒng)的主要保護性蛋白,其表達量越高,對腦部的保護作用越強[14],Bax 蛋白作為抑制凋亡的蛋白,其表達越高,腦損傷越重。因此,檢驗Bcl-2 和Bax 的表達水平可有效的反映腦部損傷的程度。本實驗顯示,醒腦靜聯(lián)合缺血預(yù)適應(yīng)組的大鼠的Bcl-2 蛋白的表達上升,Bax 蛋白表達下降,可以看出使用醒腦靜聯(lián)合缺血法可以顯著抑制大鼠腦細胞的凋亡,達到保護大鼠腦組織的作用,從而有效緩解缺血性腦損傷,Wang 等研究[15]得出:上調(diào)Bcl-2 蛋白的表達、下調(diào)Bax 蛋白的表達可以有效緩解缺血再灌注損傷,與本研究得出的結(jié)論相一致。
可見,醒腦靜聯(lián)合缺血預(yù)適應(yīng)法可以有效的緩解腦缺血再灌注損傷,其機制可能與通過下調(diào)Bax 蛋白和上調(diào)Bcl-2 蛋白的表達有關(guān),在后續(xù)的實驗將進一步擴大樣本量進行實驗。
湖南師范大學(xué)學(xué)報(醫(yī)學(xué)版)2020年5期