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    miR-142-5p通過直接靶向ELK1調(diào)控動脈粥樣硬化內(nèi)皮細胞凋亡

    2020-12-09 05:45:52羌玲玉湯小星孫曉暉
    中國老年學(xué)雜志 2020年23期
    關(guān)鍵詞:檢測

    羌玲玉 湯小星 孫曉暉

    (1南通大學(xué)醫(yī)學(xué)院人體解剖學(xué)教研室,江蘇 南通 226019;2南通市中醫(yī)院介入科;3南通市老年康復(fù)醫(yī)院心內(nèi)科)

    研究顯示內(nèi)皮細胞損傷、氧化應(yīng)激及炎癥反應(yīng)等均與動脈粥樣硬化發(fā)病機制有關(guān)〔1,2〕。因而探尋動脈粥樣硬化內(nèi)皮細胞損傷機制可為動脈粥樣硬化防治提供新方向。微小RNA(miRNA)作為內(nèi)源性非編碼RNA分子,其可通過調(diào)控基因或信號通路進而參與心腦血管疾病發(fā)生及發(fā)展過程〔3〕。微小RNA-142-5p(miR-142-5p)在動脈粥樣硬化斑塊中呈高表達并可促進氧化型密度脂蛋白(ox-LDL)誘導(dǎo)的巨噬細胞凋亡,但關(guān)于miR-142-5p在動脈粥樣硬化斑塊形成過程中的具體作用機制尚未完全闡明〔4〕。通過靶基因預(yù)測網(wǎng)站發(fā)現(xiàn)包含轉(zhuǎn)錄激活因子ETS樣蛋白(ELK)1可能是miR-142-5p的靶基因,研究顯示miR-150可靶向ELK1而調(diào)節(jié)ox-LDL誘導(dǎo)的內(nèi)皮細胞凋亡〔5〕。相關(guān)研究表明ELK1可保護皮質(zhì)神經(jīng)元免受缺氧葡萄糖損傷,還可通過調(diào)控Wnt/β-catenin信號通路進而影響細胞增殖及遷移過程〔6,7〕。ox-LDL誘導(dǎo)主動脈內(nèi)皮細胞HAECs中miR-142-5p表達及其是否通過靶向ELK1影響內(nèi)皮細胞凋亡還有待驗證。本研究通過探討miR-142-5p在ox-LDL誘導(dǎo)的主動脈內(nèi)皮細胞損傷中的調(diào)控作用及其可能作用機制。

    1 材料與方法

    1.1細胞與主要試劑 人主動脈內(nèi)皮細胞(HAEC)購自美國ATCC細胞庫。ox-LDL購自北京索萊寶科技有限公司。RPMI1640培養(yǎng)基購自上海博升生物科技有限公司;胎牛血清(FBS)、胰酶均購自美國Gibco公司;細胞凋亡檢測試劑盒購自上海碧云天生物技術(shù)有限公司;熒光素酶檢測試劑盒購自美國Gene Copoeia公司;LipofectamineTM2000、TRIzol均購自美國Invitrogen公司;miR-142-5p mimic及陰性轉(zhuǎn)染質(zhì)粒、miR-142-5p抑制劑(anti-miR-142-5p)、anti-miR-NC均購自上海吉瑪制藥技術(shù)有限公司;ELK1 siRNA(si-ELK1)與陰性對照siRNA(si-NC)均購自德國Qiagen公司;實時熒光定量PCR與反轉(zhuǎn)錄試劑盒均購自北京寶日醫(yī)生物技術(shù)有限公司;活化的含半胱氨酸的天冬氨酸蛋白水解酶(Cleaved Caspase)-3、B淋巴細胞瘤-2相關(guān)蛋白(Bax)、B淋巴細胞瘤(Bcl)-2、磷酸化糖原合成酶激酶(pGSK-3β)、總GSK-3β與β-catenin抗體均購自美國CST公司;c-myc抗體購自美國Origene公司;辣根過氧化物酶(HRP)標記的IgG二抗(IgG-HRP)購自美國Santa Cruz公司。

    1.2方法

    1.2.1細胞培養(yǎng)及轉(zhuǎn)染 -80℃超低溫冰箱保存的HAECs經(jīng)恒溫水浴鍋溶解后,放入含有10%FBS的RPMI1640培養(yǎng)液中培養(yǎng),離心后(800 r/min)接種于細胞培養(yǎng)瓶,置于恒溫培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)(37℃、體積分數(shù)5%CO2),0.25%胰酶消化后進行傳代培養(yǎng)。轉(zhuǎn)染前1 d收集生長良好的HAECs接種于96孔板,待細胞融合至80%左右時進行轉(zhuǎn)染,應(yīng)用Lipofectamine2000轉(zhuǎn)染試劑分別將anti-miR-142-5p、anti-miR-con、pcDNA、pcDNA-ELK1轉(zhuǎn)染到HAECs中,轉(zhuǎn)染后6 h更換新鮮培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)48 h收集細胞。

    1.2.2ox-LDL處理及分組 用100 μg/ml的ox-LDL刺激HAECs,分別于0、12、24、48 h 時收集細胞〔8〕。收集“1.2.1”中轉(zhuǎn)染12 h后的HAECs,用100 μg/ml的ox-LDL分別處理HAECs 24 h,實驗將ox-LDL刺激HAECs分為anti-miR-con+ox-LDL組、anti-miR-142-5p+ox-LDL組、pcDNA+ox-LDL組、pcDNA-ELK1+ox-LDL組。為進一步驗證miR-142-5p與ELK1對ox-LDL刺激HAECs凋亡的影響,在HAECs中共轉(zhuǎn)染si-ELK1與anti-miR-142-5p,作用12 h后經(jīng)ox-LDL作用24 h,分別為anti-miR-142-5p+si-con+ox-LDL組、anti-miR-142-5p+si-ELK1+ox-LDL組。

    1.2.3實時熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)(qRT-PCR)檢測miR-142-5p、ELK1 mRNA表達水平 TRIzol法提取各組HAECs總RNA,應(yīng)用紫外分光光度計檢測RNA濃度,取1 μg RNA進行反轉(zhuǎn)錄得到cDNA,miR-142-5p、ELK1引物均由美國Invitrogen公司合成,miR-142-5p以U6為內(nèi)參基因,ELK1以β-actin為內(nèi)參基因,PCR條件為95℃ 5 min,95℃ 40 s,60℃ 40 s,72℃ 1 min(循環(huán)40次),72℃終延伸10 min,根據(jù)qRT-PCR儀自帶軟件分析各孔閾值Ct值,采用2-ΔΔCt法分析miR-142-5p、ELK1 mRNA相對表達量。實驗設(shè)置3次重復(fù)。

    1.2.4Western印跡法檢測ELK1及Wnt信號通路相關(guān)蛋白表達水平 收集處理后的HAECs,分別加入放射免疫沉淀(RIPA)裂解液以此提取總蛋白,二喹啉甲酸(BCA)測定蛋白濃度,十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)分離蛋白,反應(yīng)結(jié)束后將分離的蛋白凝膠轉(zhuǎn)移至聚偏氟乙烯(PVDF)膜,脫脂牛奶封閉2 h,分別加入ELK1、Cleaved Caspase-3、Bax、Bcl-2 及Wnt信號通路相關(guān)蛋白一抗(1∶1 000),孵育過夜后分別加入二抗(1∶5 000),增強型化學(xué)發(fā)光試劑(ECL)進行顯影,蛋白均以β-actin為內(nèi)參,置于凝膠成像分析系統(tǒng)分析蛋白相對表達量。

    1.2.5流式細胞術(shù)檢測細胞凋亡 收集各組HAECs,放入離心機(轉(zhuǎn)速1 000 r/min)離心10 min,棄上清,分別加入200 μl結(jié)合緩沖液,混勻后分別加入5 μl(Annexin V-FITC)和碘化丙啶(PI),室溫避光孵育20 min,置于流式細胞儀檢測細胞凋亡。

    1.2.6雙熒光素酶報告實驗 根據(jù)生物學(xué)信息網(wǎng)站預(yù)測miR-142-5p的靶基因,發(fā)現(xiàn)miR-142-5p的靶基因可能是ELK1,分別構(gòu)建野生型ELK1熒光素酶報告基因載體(WT-ELK1)與突變型ELK1熒光素酶報告基因載體(MUT-ELK1),將兩種載體分別與miR-142-5p mimic、miR-con混合后共同轉(zhuǎn)染到HAECs中,繼續(xù)培養(yǎng)48 h后收集細胞,磷酸鹽緩沖液(PBS)洗滌細胞后檢測細胞熒光素酶活性。

    1.3統(tǒng)計學(xué)處理 采用SPSS21.0軟件進行t檢驗,方差分析,χ2檢驗。

    2 結(jié) 果

    2.1ox-LDL處理時間對HAECs凋亡、miR-142-5p和ELK1表達的影響 與0 h組比較,隨著ox-LDL處理時間的延長HAECs凋亡率明顯升高(P<0.05)。HAECs細胞經(jīng)ox-LDL刺激后miR-142-5p的表達水平與0 h相比明顯升高,而ELK1 mRNA及蛋白表達均明顯降低(均P<0.05)。Western印跡實驗結(jié)果顯示HAECs經(jīng)ox-LDL刺激后 Cleaved Caspase-3、Bax蛋白表達均明顯升高(P<0.05),Bcl-2蛋白表達明顯降低(P<0.05),見表1、圖1、圖2。

    表1 ox-LDL不同時間處理HAECs凋亡及相關(guān)蛋白表達比較

    圖1 流式檢測HAECs凋亡率

    圖2 Western印跡檢測ELK1蛋白表達

    2.2anti-miR-142-5p抑制ox-LDL處理HAECs凋亡 用miR-142-5p抑制劑(anti-miR-142-5p)轉(zhuǎn)染HAECs細胞,經(jīng)ox-LDL處理后采用流式細胞術(shù)檢測HAECs凋亡情況,結(jié)果顯示anti-miR-142-5p+ox-LDL組HAECs細胞凋亡率顯著低于anti-miR-con+ox-LDL組(P<0.05),Western印跡檢測結(jié)果顯示,與anti-miR-con+ox-LDL組相比,anti-miR-142-5p+ox-LDL組HAECs細胞中Cleaved Caspase-3、Bax蛋白表達明顯降低(P<0.05),而Bcl-2蛋白表達明顯升高(P<0.05),見表2、圖3。

    表2 anti-miR-142-5p抑制ox-LDL處理HAECs凋亡和抑制凋亡蛋白的表達

    2.3miR-142-5p靶向ELK1 雙熒光素酶報告基因?qū)嶒烌炞CmiR-142-5p與ELK1的靶向關(guān)系,結(jié)果顯示miR-142-5p mimic與WT-ELK1共轉(zhuǎn)染后HAECs細胞相對熒光素酶活性相較于miR-con與WT-ELK1共轉(zhuǎn)染后HAECs細胞相對熒光素酶活性明顯降低(P<0.05),而miR-con、miR-142-5p mimic與MUT-ELK1共轉(zhuǎn)染后HAECs細胞相對熒光素酶活性無明顯變化(P>0.05),見圖4A、表3。為了驗證miR-142-5p與ELK1之間的調(diào)控關(guān)系,采用Western印跡法分別檢測抑制miR-142-5p表達及miR-142-5p過表達后ELK1蛋白表達變化,結(jié)果發(fā)現(xiàn)抑制miR-142-5p表達HAECs細胞中ELK1蛋白表達明顯升高(anti-miR-142-5p組:0.72±0.05、anti-miR-con組:0.58±0.09,P<0.05),miR-142-5p過表達HAECs細胞中ELK1蛋白表達明顯降低(miR-142-5p組:0.32±0.04、miR-con組:0.61±0.06,P<0.05),見圖4B。

    1~2:anti-miR-con+ox-LDL組,anti-miR-142-5p+tox-LDL組圖3 Western印跡檢測HAECs中凋亡相關(guān)蛋白表達

    A:miR-142-5p靶向ELK1 3′UTR的序列信息;B:miR-142-5p靶向調(diào)控ELK1蛋白表達;1~4:miR-con組,miR-142-5p組,anti-miR-con組,anti-miR-142-5p組圖4 miR-142-5p靶向調(diào)控ELK1蛋白表達

    表3 雙熒光素酶報告實驗

    2.4過表達ELK1抑制ox-LDL處理HAECs凋亡 pcDNA-ELK1+ox-LDL組HAECs細胞中ELK1蛋白表達明顯高于pcDNA+ox-LDL組(P<0.05)。pcDNA-ELK1+ox-LDL組HAECs細胞凋亡率明顯低于pcDNA+ox-LDL組(P<0.05);與pcDNA+ox-LDL組相比,pcDNA-ELK1+ox-LDL組HAECs細胞中Cleaved Caspase-3、Bax蛋白表達明顯下調(diào)(P<0.05),而Bcl-2蛋白表達明顯上調(diào)(P<0.05),見圖5、表5。

    表5 過表達ELK1抑制ox-LDL處理HAECs凋亡

    2.5沉默ELK1逆轉(zhuǎn)anti-miR-142-5p對ox-LDL處理HAECs抑制凋亡作用 雙抑制ELK1與miR-142-5p表達后HAECs細胞中ELK1蛋白表達明顯降低(P<0.05)。與anti-miR-142-5p+si-con+ox-LDL組相比,anti-miR-142-5p+si-ELK1+ox-LDL組HAECs細胞凋亡率顯著升高,Bcl-2蛋白表達水平均顯著降低,而Cleaved Caspase-3、Bax蛋白表達水平均顯著升高(均P<0.05),見表6、圖6。

    表6 沉默ELK1逆轉(zhuǎn)anti-miR-142-5p對ox-LDL處理HAECs抑制凋亡作用

    2.6ELK1和miR-142-5p表達對ox-LDL處理HAECs中Wnt信號通路的影響 與anti-miR-con+ox-LDL組相比,anti-miR-142-5p+ox-LDL組HAECs細胞中p-GSK-3β、β-catenin、c-myc蛋白表達水平均明顯降低(P<0.05)。進一步分析顯示anti-miR-142-5p與si-ELK1共同轉(zhuǎn)染后HAECs中p-GSK-3β、β-catenin、c-myc蛋白表達水平均明顯升高(P<0.05),見圖7、表7。

    1~2:pcDNA+ox-LDL組,pcDNA-ELK1+ox-LDL組圖5 Western印跡檢測HAECs中ELK1蛋白和凋亡相關(guān)蛋白表達

    1~4:anti-miR-con+ox-LDL組、anti-miR-142-5p+ox-LDL組、anti-miR-142-5p+si-con+ox-LDL組、anti-miR-142-5p+si-ELK1+ox-LDL組;圖7同圖6 Western印跡檢測HAECs中ELK1蛋白和凋亡相關(guān)蛋白表達

    圖7 Western印跡檢測HAECs中Wnt信號通路相關(guān)蛋白表達

    表7 ELK1和miR-142-5p表達對ox-LDL處理HAECs中Wnt信號通路的影響

    3 討 論

    動脈粥樣硬化發(fā)病機制尚未完全闡明,研究顯示內(nèi)皮細胞損傷是動脈粥樣硬化形成的主要因素〔9〕。ox-LDL是引發(fā)血管內(nèi)皮細胞損傷的重要作用因子,其可促使單核細胞轉(zhuǎn)化形成巨噬細胞進而形成脂質(zhì)斑塊〔10〕。研究表明miRNA可通過調(diào)控靶基因表達進而參與細胞增殖及凋亡等病理過程〔11〕。

    miR-142-5p表達異常與腫瘤發(fā)生及發(fā)展密切相關(guān),研究顯示冠心病患者血清中miR-142-5p表達水平升高并可能參與動脈硬化及斑塊形成過程〔12,13〕。徐測梁等〔14〕研究表明急性冠脈綜合征患者血清中miR-142-5p表達水平升高且與患者心肌炎癥反應(yīng)及心肌損傷密切相關(guān)。李玉東等〔15〕通過構(gòu)建動脈粥樣硬化大鼠模型發(fā)現(xiàn)動脈粥樣硬化組織中miR-142-5p呈高表達并可通過抑制靶基因表達進而促進巨噬細胞凋亡。然而,miR-142-5p對動脈粥樣硬化內(nèi)皮細胞凋亡的影響及其可能作用機制仍未可知,本研究結(jié)果顯示隨著ox-LDL處理時間的延長HAECs凋亡率明顯升高,miR-142-5p表達上調(diào),而ELK1表達下調(diào),Cleaved Caspase-3、Bax蛋白表達明顯升高,而Bcl-2蛋白表達明顯降低,研究顯示Bcl-2作為抗細胞凋亡蛋白可參與氧化應(yīng)激所致的血管內(nèi)皮細胞凋亡等過程,Bax可拮抗Bcl-2抗凋亡作用,若Bax同源二聚體增多可促使細胞凋亡,Bcl-2/Bax失衡可促使線粒體釋放Caspase進而引發(fā)Caspase級聯(lián)反應(yīng),最終激活Caspase-3導(dǎo)致細胞凋亡,通過檢測Caspase-3表達可反應(yīng)細胞凋亡程度〔16〕。說明ox-LDL可能通過促使內(nèi)皮細胞凋亡進而引發(fā)動脈粥樣硬化。本研究結(jié)果說明抑制miR-142-5p可通過促進Bcl-2表達,抑制Caspase-3、Bax表達進而抑制內(nèi)皮細胞凋亡。提示抑制miR-142-5p表達可避免內(nèi)皮細胞損傷。

    ELK1表達下調(diào)可通過介導(dǎo)MAPK途徑進-而促進骨髓瘤細胞增殖,Ohguchi等〔17〕、Zeng等〔18〕研究表明慢性心房顫動患者心肌組織中ELK1表達下調(diào)。Yan等〔19〕研究表明ELK1表達異常與小鼠動脈粥樣硬化形成有關(guān)。本研究結(jié)果提示上調(diào)ELK1表達可抑制ox-LDL誘導(dǎo)的HAECs凋亡,抑制ELK1可逆轉(zhuǎn)anti-miR-142-5p對ox-LDL處理HAECs抑制凋亡作用,miR-142-5p可靶向調(diào)節(jié)ELK1表達進而參與動脈粥樣硬化內(nèi)皮細胞凋亡過程。但miR-142-5p又是通過調(diào)控哪些相關(guān)信號通路而發(fā)揮作用,研究顯示W(wǎng)nt/β-catenin信號通路激活后可通過促使內(nèi)皮細胞、巨噬細胞等功能發(fā)生障礙進而促進動脈粥樣硬化發(fā)生及發(fā)展〔20〕。細胞處于異常狀態(tài)時GSK-3β發(fā)生磷酸化形成p-GSK-3β,而p-GSK-3β不能促使β-catenin發(fā)生磷酸化而降解,β-catenin大量聚集可從細胞質(zhì)轉(zhuǎn)移至細胞核中進而激活c-myc,促使細胞凋亡〔21〕。本研究結(jié)果說明抑制miR-142-5p表達可抑制Wnt/β-catenin信號通路活化。miR-142-5p可通過下調(diào)ELK1表達而激活Wnt/β-catenin信號通路進而促使內(nèi)皮細胞凋亡。

    綜上所述,miR-142-5p在ox-LDL誘導(dǎo)的HAECs中呈高表達,而ELK1表達降低,miR-142-5p可能通過激活Wnt/β-catenin信號通路進而促進HAECs凋亡,為進一步研究動脈粥樣硬化發(fā)病機制奠定基礎(chǔ)。

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