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    豬血球蛋白營養(yǎng)分析與水解工藝優(yōu)化及制備金屬螯合肽的研究

    2020-12-07 09:39:06孫子怡楊劍婷謝寧寧張福生
    食品與機(jī)械 2020年11期
    關(guān)鍵詞:血球螯合物豬血

    孫子怡 楊劍婷 謝寧寧 張福生

    (1. 安徽科技學(xué)院食品工程學(xué)院,安徽 滁州 239000;2. 安徽省農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)產(chǎn)品加工研究所,安徽 合肥 230031)

    微量元素補(bǔ)充劑能夠有效預(yù)防此類缺乏癥,其中,第1~3代補(bǔ)充劑分別為無機(jī)鹽類、有機(jī)酸鹽類和氨基酸螯合物[1]。此外,由金屬螯合肽(Metal Chelating peptide, MCP)與金屬離子配位結(jié)合生成的肽—金屬螯合物,可以作為第4代補(bǔ)充劑的良好備選。相比較而言,其具有吸收效率高和無競爭性等優(yōu)點[2],是當(dāng)下研究重點之一。

    天然蛋白質(zhì)的酶解工藝,既是獲得金屬螯合肽的關(guān)鍵技術(shù)手段之一,也是制備肽—金屬螯合物的重要前提[3-5]。盧素珍等[4]以草魚魚鱗為原料,采用雙酶法制備多肽,運(yùn)用響應(yīng)面法優(yōu)化獲得最佳酶解工藝,使酶解物的水解度得到顯著提升,且具有65.72%的鐵螯合活性。原洪等[5]以花椒籽蛋白為原料,通過單因素和Box-Behnken方法優(yōu)化酶解工藝,獲得最優(yōu)酶解物的水解度和鐵結(jié)合能力分別為7.23%和585.66 mg EDTA/g·蛋白質(zhì)。王常瞵等[6]運(yùn)用蚌肉為原料,以螯合率為指標(biāo),采用響應(yīng)面法優(yōu)化酶解工藝,制得蚌肉肽。

    近年來,中國豬肉消費(fèi)和生豬出欄量均為全球最大,其中,生豬年均出欄頭數(shù)約6億[7]。據(jù)估算[8],每年可產(chǎn)生約3.0×105t優(yōu)質(zhì)豬血。豬血富含優(yōu)質(zhì)蛋白質(zhì),經(jīng)預(yù)處理離心,可得到血漿液和血球液,分別占65%和35%左右[9]。課題組前期研究[10-11]表明,豬血和豬血漿均有制備優(yōu)異金屬螯合肽的潛力,可作為微量元素補(bǔ)充劑的良好載體。因此,有必要對豬血球制備金屬螯合肽的酶解工藝進(jìn)行優(yōu)化,形成系統(tǒng)化的工藝技術(shù)集成。

    研究擬以豬血血球蛋白為原料,檢測其基本營養(yǎng)指標(biāo)和氨基酸組成,再采用堿性蛋白酶進(jìn)行酶解,以水解度為考察指標(biāo),優(yōu)化血球蛋白肽的最佳工藝,評估血球蛋白肽的金屬螯合能力,以期為豬血資源高值化利用提供技術(shù)支撐。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    1.1.1 材料與試劑

    堿性蛋白酶:酶活≥2.4 U/g,合肥博美生物科技有限公司;

    豬血:合肥萬潤食品有限公司;

    鹽酸、硝酸、高氯酸、硫酸、氫氧化鈉、氯化亞鐵、硫酸鐵銨、硼酸鉀、三硝基苯磺酸等:分析純,國藥集團(tuán)化學(xué)試劑公司。

    1.1.2 儀器與設(shè)備

    雙光束紫外可見分光光度計:1900PC型,上海譜元儀器有限公司;

    pH計:PHS-3C型,上海儀電科學(xué)儀器有限公司;

    冷凍干燥機(jī):FD-1CE型,北京德天佑科技發(fā)展有限公司;

    原子吸收光譜儀:iCE 3500型,美國賽默飛世爾公司;

    酶標(biāo)分析儀:HR801型,華科瑞科技有限公司;

    全自動凱式定氮儀:L-8900型,丹麥福斯分析儀器公司;

    電感耦合等離子體原子發(fā)射光譜(ICP-AES):iCAP 7400型,賽默飛世爾科技公司。

    1.2 方法

    1.2.1 血球粉加工流程

    豬血→離心分離(6 000 r/min、-4 ℃、15 min)→血球液→超濾(壓力0.15 MPa,溫度45 ℃)→噴霧干燥(進(jìn)風(fēng)溫度150 ℃,排風(fēng)溫度105 ℃)→血球粉

    1.2.2 血球蛋白粉酶解工藝 取規(guī)定量血球粉于規(guī)定體積去離子水中,溶解,調(diào)節(jié)pH值,加入規(guī)定比例堿性蛋白酶后,置于恒溫水浴搖床進(jìn)行規(guī)定條件的酶解反應(yīng)。反應(yīng)結(jié)束后,水解物于100 ℃水浴滅酶3~5 min。冷卻至室溫后,血球酶解液在-4 ℃、6 000 r/min條件下離心15 min,過濾,取上清液,隨后真空冷凍干燥(-55 ℃,48 h),制備血球蛋白肽。

    1.2.3 基礎(chǔ)理化檢測

    (1) 脂肪含量:按GB 5009.6—2016的索氏抽提法執(zhí)行。

    (2) 水分含量:按GB 5009.3—2010的直接干燥法執(zhí)行。

    (3) 蛋白質(zhì)含量:按GB 5009.5—2016的凱氏定氮法執(zhí)行。

    1.2.4 氨基酸組成分析 取0.1 g樣品于水解管中,加入10 mL的6 mol/L鹽酸溶液,充氮氣排凈管中空氣。置于110 ℃的烘箱反應(yīng)22 h,再用超純水將溶液定容至50 mL。取其反應(yīng)液1 mL于燒杯中,真空干燥24 h,加入3 mL 0.2 mol/L的色譜純HCl溶液,混勻后取1 mL經(jīng)0.22 μm濾膜過濾,用氨基酸自動分析儀測定組分。

    1.2.5 水解度(DH)測定 采用三硝基苯磺酸法(TNBS法)[12]。稱取一定量樣品,用去離子水稀釋4倍,離心取10 μL上清液和100 μL硼酸鉀(1 mol/L pH 9.2)加入96孔酶標(biāo)板中,之后再加入40 μL TNBS (1.2 g/L),于37.1 ℃培育1 h。采用酶標(biāo)儀(405 nm)測量吸光值。

    1.2.6 單因素試驗

    (1) pH值:水解時間4 h、水解溫度50 ℃、底物添加量8%、酶與底物比(m酶∶m底物)1∶250,考察pH值(7.0,8.0,9.0,10.0,11.0)對豬血球蛋白水解物水解效果的影響。

    (2) 底物添加量:水解時間4 h、水解溫度50 ℃、酶與底物比(m酶∶m底物)1∶250、pH值9,考察底物添加量(4%,6%,8%,10%,12%)對水解效果的影響。

    (3) 水解溫度:水解時間4 h、底物添加量8%、酶與底物比(m酶∶m底物)1∶250、pH值9,考察水解溫度(40,45,50,55,60 ℃)對水解效果的影響。

    (4) 酶添加量:水解時間4 h、水解溫度50 ℃、底物添加量8%、pH值9,考察堿性蛋白酶與底物比(m酶∶m底物)(1∶500,1∶250,1∶167,1∶125,1∶100)對水解效果的影響。

    (5) 水解時間:水解溫度50 ℃、底物添加量8%、酶與底物比(m酶∶m底物)1∶250、pH值9,考察水解時間(2,4,6,8,10 h)對水解效果的影響。

    1.2.7 響應(yīng)面試驗 依據(jù)Box-Behnken中心組合試驗設(shè)計和單因素試驗結(jié)果,選取顯著影響蛋白水解度的因素(水解時間、pH和溫度)進(jìn)行優(yōu)化。

    1.2.8 ICP-AES檢測螯合活性 改進(jìn)Wang等[13]的方法制備肽—金屬螯合物。向5 mL蛋白質(zhì)水解物(20 mg/mL)中添加1.0 mL ZnCl2(50 mg/mL)或FeCl2(50 mg/mL)或CuCl2(50 mg/mL)無機(jī)鹽溶液,用0.5 mol/L NaOH和0.5 mol/L HCl調(diào)節(jié)pH值至6.0。30 ℃ 下反應(yīng)45 min后在8 000× g下離心15 min,去除上清液,獲得沉淀物。針對沉淀物,采用80%乙醇溶液復(fù)溶,漩渦混合后,8 000× g離心,取沉淀,反復(fù)操作3次,制得金屬螯合物??瞻捉M以1 mL蒸餾水代替ZnCl2或FeCl2或CuCl2溶液。GSH(20 mg/mL)和EDTA(5 mg/mL)作為陽性對照組。

    參照Chope等[14]的方法,采用ICP-AES檢測金屬螯合物中鐵、銅和鋅的含量。分析條件:傳動功率1 300 W;冷卻氣體流速15 L/min;輔助氣體流速0.2 L/min;載氣流速0.8 L/min;注射速度1.5 mL/min;波長206.20 nm;觀察方法為軸位。

    螯合率按式(1)計算:

    R=[(C樣品-C空白)/(C總-C空白)]×100%,

    (1)

    式中:

    R——螯合率,%;

    C樣品、C空白、C總——分別是肽—金屬螯合物、蛋白水解物、混合溶液(無機(jī)鹽和蛋白水解物)的金屬離子含量,μg/mL。

    1.2.9 統(tǒng)計分析方法 采用SPSS 16.0的one-way (ANOVA)進(jìn)行方差分析,試驗數(shù)據(jù)取3個平行試驗的平均值。采用Design Expert 8.0進(jìn)行響應(yīng)面工藝設(shè)計。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 基本營養(yǎng)指標(biāo)

    對豬血及血球蛋白粉的基本營養(yǎng)指標(biāo)進(jìn)行分析比較,如表1所示。豬血水分含量為95.06%,脂肪含量較低。經(jīng)分離后制備出的血球蛋白粉水分含量為7.34%,蛋白含量為91.60%。有報道[15]指出,豬血球蛋白具有優(yōu)異的營養(yǎng)特征。團(tuán)隊前期研究[10-11]已經(jīng)證明豬血和豬血漿中蛋白質(zhì)是金屬螯合肽的優(yōu)異前體。因此,優(yōu)異的豬血球蛋白可用于后續(xù)金屬螯合肽的制備研究。

    2.2 氨基酸組成分析

    對豬血粉和血球蛋白粉的氨基酸組成及含量進(jìn)行分析比較,結(jié)果見表2。兩種蛋白粉的酸解產(chǎn)物中均檢測出16種氨基酸,色氨酸受到破壞,未檢出。豬血和血球蛋白中均檢出7種必需氨基酸,其中亮氨酸、賴氨酸、纈氨酸和苯丙氨酸含量豐富。這與趙治國等[16]報道的血球蛋白粉氨基酸組成特征類似。

    2.3 單因素試驗

    2.3.1 pH值 由圖1可知,水解度指標(biāo)值隨pH值的增大呈先增大后減小的趨勢,與薛照輝等[17]報道菜籽蛋白酶解有關(guān)規(guī)律的變化趨勢相似。當(dāng)反應(yīng)體系pH值>10時,蛋白酶在強(qiáng)堿性條件下空間構(gòu)象發(fā)生改變,降低蛋白酶對底物的酶解效率,導(dǎo)致水解能力降低[18]。故最佳pH值為10。

    表1 豬血和血球蛋白粉的基本營養(yǎng)指標(biāo)

    表2 豬血粉和豬血球蛋白粉的氨基酸組成分析?

    圖1 pH值對蛋白水解度的影響

    2.3.2 底物濃度 由圖2可知,當(dāng)?shù)孜锾砑恿繛?%~8%時,水解度指標(biāo)值隨底物濃度的升高而略微增加,但不顯著;當(dāng)達(dá)到8%時,水解度達(dá)到最大,與殷俊峰等[11]研究豬血漿蛋白的水解度與底物濃度之間的關(guān)系有著相似的影響。這可能是因為部分酶沒有與分離蛋白充分接觸以及產(chǎn)物達(dá)到一定量時會對反應(yīng)有抑制作用。因此,底物添加量應(yīng)控制在8%左右。

    圖2 底物添加量對蛋白水解度的影響

    2.3.3 水解溫度 由圖3可知,當(dāng)水解溫度<50 ℃時,水解度呈上升趨勢;當(dāng)水解溫度>50 ℃時,水解度開始下降。陳樹俊等[19]研究也表明在50 ℃時,酶解核桃粉的水解度達(dá)到最大。推測這是由于水解溫度在達(dá)到蛋白酶的最佳溫度之前,升高反應(yīng)體系的溫度將促進(jìn)蛋白酶活性,而之后升溫則會抑制其活性。因此,選擇水解溫度為50 ℃ 用于后續(xù)工藝優(yōu)化。

    2.3.4 酶添加量 由圖4可知,水解度在酶與底物比(m酶∶m底物)為1∶500~1∶100內(nèi)添加量呈上升趨勢而后緩慢下降。這可能與酶本身也是一種蛋白質(zhì),當(dāng)酶與底物比過大時對酶解過程造成干擾有關(guān)。因此,酶與底物比(m酶∶m底物)可選擇1∶250。

    2.3.5 水解時間 由圖5可知,水解度呈先快速增加后緩慢增大的趨勢,與黃艷燕等[20]報道水解大米蛋白的酶解時間與水解度的變化趨勢相似。這可能是因為隨著產(chǎn)物濃度的增加一定程度上抑制了反應(yīng)的進(jìn)行。考慮到經(jīng)濟(jì)及生產(chǎn)效率,最終選擇水解時間為6 h用于后續(xù)工藝優(yōu)化。

    通過上述5個酶解水解度單因素試驗發(fā)現(xiàn):水解溫度、水解時間及pH值對血球蛋白粉水解度具有顯著影響(P<0.05),蛋白酶與底物比和底物添加量對血球蛋白粉水解度的影響不顯著(P>0.05)。

    圖3 水解溫度對水解度的影響

    圖4 酶與底物比對蛋白水解度的影響

    圖5 水解時間對蛋白水解度的影響

    由此,在響應(yīng)面優(yōu)化中僅對水解度具有顯著影響的3個因素進(jìn)行酶解工藝優(yōu)化。其中固定酶與底物比(m酶∶m底物)為1∶250,底物添加量為8%。

    2.4 響應(yīng)面試驗

    2.4.1 響應(yīng)面優(yōu)化試驗與回歸模型分析 用Design-Expert 8.0.5軟件對酶解工藝進(jìn)行三因素三水平響應(yīng)面優(yōu)化設(shè)計,試驗因素與水平見表3,結(jié)果見表4。

    對試驗結(jié)果進(jìn)行二次多元回歸模型擬合,分析得到血球蛋白粉酶解工藝的回歸方程為:

    Y=-616.485 25+56.702 5A+12.512B+12.561C-0.069 5AB+0.308 75AC-0.106 75BC-2.590 75A2-0.112 63B2-0.741 44C2。

    (2)

    為驗證上述擬合模型的準(zhǔn)確性和有效性,對回歸方程進(jìn)行方差分析,結(jié)果見表5。

    表3 響應(yīng)面試驗因素與水平

    表4 豬血球蛋白制備螯合肽的酶解工藝響應(yīng)面分析結(jié)果

    模型P<0.000 1差異水平極顯著,失擬項不顯著。由此可知,該模型可合理解釋大部分試驗變化情況。因此,該模型具有較好的合理性和準(zhǔn)確性。

    通過上述一次項回歸方程,發(fā)現(xiàn)影響水解度的順序為A>C>B,且A和C項影響呈極顯著(P<0.000 1);平方項中A2、B2和C2項均呈極顯著(P<0.000 1);交互項中只有BC項影響顯著。因此,影響水解度大小因素順序:pH值>水解時間>水解溫度。

    2.4.2 響應(yīng)面圖分析 由圖6可知,當(dāng)水解溫度為50 ℃,pH值在9.0~10.0范圍內(nèi)增加時,蛋白水解度快速上升,pH值在10.0~11.0范圍內(nèi)增加時,水解度緩慢下降;pH值為10時,水解度隨水解溫度的增加先升后降。

    表5 響應(yīng)面回歸模型的方差分析?

    由圖7可知,當(dāng)水解時間為6 h,水解溫度在45~50 ℃ 范圍內(nèi)增加時,蛋白水解度呈上升趨勢,水解溫度在50~55 ℃范圍內(nèi)增加時,水解度有下降趨勢;水解溫度為50 ℃時,水解度隨水解時間的增加先升后降。

    由圖8可知,當(dāng)水解時間為6 h,pH值在9.0~10.0范圍內(nèi)增加時,蛋白水解度快速上升,pH值在10.0~11.0 范圍內(nèi)增加時,水解度緩慢下降;當(dāng)pH值為10時,水解度隨水解時間的增加先上升后下降。

    2.4.3 響應(yīng)面試驗最優(yōu)工藝參數(shù) 由軟件程序優(yōu)化得到最佳工藝參數(shù)為pH值10.69、水解溫度48.50 ℃、水解時間6.76 h。在此工藝條件下,豬血球蛋白粉的酶解水解度的預(yù)測值為37.81%。

    按最佳酶解工藝設(shè)計3次平行實驗,取試驗數(shù)據(jù)結(jié)果的平均值,獲得實測酶解水解度為37.83%,較預(yù)測值高0.02%。相對誤差絕對值的平均值小于10%,表明響應(yīng)面法優(yōu)化的酶解工藝結(jié)果是準(zhǔn)確可靠的。

    圖6 pH與水解溫度相互作用影響的三維圖和等高線圖

    圖7 水解溫度與水解時間相互作用影響的三維圖和等高線圖

    圖8 pH與水解時間相互作用影響的三維圖和等高線圖

    2.5 豬血球蛋白肽金屬螯合能力

    將制備的酶解產(chǎn)物分別與FeCl2、ZnCl2和CuSO4溶液進(jìn)行螯合,得到含有不同金屬元素的螯合物,采用ICP-AES檢測鐵、銅和鋅的含量,扣除空白,計算其金屬螯合能力的強(qiáng)弱。以GSH和EDTA制備的金屬螯合物為陽性對照[13,21],進(jìn)行螯合產(chǎn)物的活性比對。由表6可知,豬血球蛋白肽金屬螯合物的鐵、銅、鋅螯合能力分別達(dá)到EDTA的38.45%,12.13%,50.78%,分別達(dá)到GSH螯合能力的46.55%,14.12%,62.23%。

    3 結(jié)論

    采用堿性蛋白酶水解豬血血球液中的血球蛋白制備水解物,并評價其金屬螯合潛力。在單因素試驗中發(fā)現(xiàn),水解溫度、水解時間和pH對蛋白水解具有明顯影響,底物添加量和酶與底物比影響不顯著。選擇底物添加量為8%、酶與底物比(m酶∶m底物)為1∶250為固定條件,通過響應(yīng)面試驗優(yōu)化血球蛋白酶解工藝,得到最佳工藝條件為pH 10.69,水解溫度48.50 ℃,水解時間6.76 h。在該條件下,蛋白水解度的預(yù)測值為37.81%,實測值為37.83%。豬血球蛋白肽具有對鐵、銅和鋅離子的螯合能力,具有制備第4代微量元素補(bǔ)充劑的潛力。在后續(xù)試驗中還需對金屬螯合物的結(jié)構(gòu)性質(zhì)進(jìn)行表征研究。

    表6 豬血球蛋白肽金屬螯合物的鐵、銅、鋅含量?

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