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    長鏈非編碼RNA Linc00658在結直腸癌中的表達及其與西妥昔單抗抵抗的關系

    2020-11-30 04:35:16張智勇裘豐
    溫州醫(yī)科大學學報 2020年11期
    關鍵詞:西妥孔板熒光素酶

    張智勇,裘豐

    (寧波醫(yī)療中心李惠利醫(yī)院東部院區(qū) 胃腸外科,浙江 寧波 315040)

    結直腸癌(colorectal cancer,CRC)是全球發(fā)病率、病死率均較高的惡性腫瘤[1]。表皮生長因子受體(epithelial growth factor receptor,EGFR)是上皮腫瘤中最重要的原癌基因之一,72%~89%的CRC組織中存在EGFR的高表達[2]。西妥昔單抗(Cetuximab)通過與EGFR內源性配體競爭性結合,阻斷下游酪氨酸激酶的激活,進而發(fā)揮抗腫瘤作用,是晚期CRC的一線治療藥物,但患者均易發(fā)生西妥昔單抗繼發(fā)性耐藥,找到發(fā)生耐藥的機制對 于臨床治療方案具有重要的指導意義。抑癌基因PTEN的丟失是導致CRC對西妥昔單抗耐藥的重要因素[3],但其丟失的機制仍有待揭示。非編碼RNA(non-coding RNA,ncRNA)作為機體內廣泛表達的表觀調控因子,參與多種生物學過程,包括腫瘤的發(fā)生發(fā)展[4-5]。本研究通過生物信息分析發(fā)現(xiàn)長鏈非編碼RNA(long non-coding RNA,LncRNA)Linc00658 可能通過micro RNA-19a-3p(miR-19a-3p)調控PTEN的表達,進而影響CRC細胞西妥昔單抗的敏感性。

    1 材料和方法

    1.1 材料

    1.1.1 細胞:人腎上皮細胞293T、人CRC細胞CaCo2(美國ATCC)。

    1.1.2 試劑:Cetuximab(美國Selleck公司),DMEM、RPMI-1640培養(yǎng)基及FBS(美國Gibco公司),DMSO、雙抗及CCK-8試劑(美國Sigma-Aldrich公司),miRNA Control及miR-19a-3p mimic(上海漢恒生物公司),Linc00658過表達載體及Vector對照載體(上海吉凱基因公司),Lipofectamine 2000(美國Thermo Fisher公司),PTEN、磷酸化AKT(p-AKT)及磷酸化mTOR(p-mTOR)抗體(美國Cell Signaling Technology公司),TRIzoL及SuperScript IV反轉錄試劑盒(美國Invitrogen公司),SYBR Green(美國MedChemExpress公司),Passive Lysis Buffer、Luciferase Assay Reaget、pGL3-basic Vector(美國Promega公司)。

    1.1.3 儀器:iMark酶標儀、ChemiDoc XRS+化學發(fā)光成像儀(美國Bio-Rad公司),7500熒光定量PCR儀(美國ABI公司)。

    1.2 方法

    1.2.1 生物信息網站預測以PTEN為靶基因的miRNA及其潛在結合的LncRNA:使用Targetscan數(shù)據(jù)庫及miRNA Cancer Association數(shù)據(jù)庫聯(lián)合預測與PTEN相互結合的miRNA,并采用LncBase v.2數(shù)據(jù)庫分析與靶miRNA相互作用的LncRNA。

    1.2.2 細胞培養(yǎng)及西妥昔單抗耐藥的誘導[6]:采用RPMI-1640培養(yǎng)基+10% FBS培養(yǎng)CaCo2細胞,培養(yǎng)環(huán)境:37 ℃、5% CO2、飽和濕度。接種對數(shù)生長期的CaCo2細胞至10 cm細胞培養(yǎng)皿中,傳代培養(yǎng)至4皿,隨機平均分為對照組及抵抗組。抵抗組采用4、8、16、32、64、128及256 nmol/L濃度梯度西妥昔單抗持續(xù)處理CaCo2細胞,每組濃度處理7 d,待細胞呈對數(shù)生長再使用更高濃度處理,直至細胞在 256 nmol/L西妥昔單抗中生長狀態(tài)良好;對照組采用等量的DMSO處理。

    1.2.3 細胞轉染:接種1孔對照組及2孔抵抗組細胞于6孔細胞培養(yǎng)板中,以7.5 μL脂質體Lipofectamine 2000與2 μg Linc00658過表達載體混合于無血清RPMI-1640培養(yǎng)基中,加入其中1孔抵抗組細胞中作為過表達組,另將15 μL脂質體與4 μg 對照載體混合于無血清RPMI-1640培養(yǎng)基中,平均分為2份分別加入對照組及另1孔抵抗組細胞中。 6 h后PBS洗細胞3次后RPMI-1640+10% FBS繼續(xù)培養(yǎng)24 h。同樣利用Lipofectamine 2000在CaCo2細胞中轉染miR-19a-3p mimic及mimic NC作為本研究的mimic組及NC組。

    1.2.4 CCK-8實驗檢測細胞西妥昔單抗的半數(shù)抑制濃度(IC50):接種對數(shù)生長期對照組、抵抗組、過表達組細胞、mimic組及NC組細胞于96孔板中,接種濃度為1×103/孔,每組細胞設置8個濃度梯度×5個重復樣本,12 h后更換含4、8、16、32、64、128、256及512 nmol/L西妥昔單抗的RPMI-1640+10% FBS處理48 h,10 μL CCK-8試劑加入待測樣本中,避光培養(yǎng)4 h,檢測450 nm吸光值,Graphpad Prism 8.0軟件繪制擬合曲線并估計每組細胞IC50值。

    1.2.5 qRT-PCR檢測Linc00658、miR-19a-3p及PTEN mRNA表達:接種對數(shù)生長期的各組細胞于6孔板中,1 mL TRIzoL提取細胞總RNA,1 μg RNA進行反轉錄,其中miR-19a-3p RT-引物為特異性引物,序列為:5’-CTCAACTGGTGTCGTGGAGTCGGCAATTCAGTTG AGTCAGTTTT-3’,得到cDNA進行實時熒光定量PCR反應,引物如下:Linc00658上游(F):5’-CGAGCAGCTCC ATCTACAGA-3’,下游(R):5’-GCTGGGTGGTTCAAACTCA G-3’;miR-19a-3p上游(F):5’-ACACTCCAGCTGGGTGTG CAAATCTATGCAA-3’,下游(R)為通用引物;PTEN上游(F):5’-GGACGAACTGGTGTAATGATATG-3’,下游(R): 5’-TCTACTGTTTTTGTGAAGTACAGC-3’;GAPDH上游(F): 5’-TCTCTGCTCCTCCTGTTC-3’,下游(R):5’-GTTGACTCC GACCTTCAC-3’。每組設置3個平行孔,GAPDH作為內 參,2(-△△CT)法計算各組細胞Linc00658、miR-19a-3p及PTEN mRNA相對表達水平。

    1.2.6 Western blot檢測PTEN、p-AKT及p-mTOR蛋白表達:接種對數(shù)生長期的各組細胞于6孔板中,收集各組細胞總蛋白,以30 μg行10%聚丙烯酰胺凝膠電泳2 h,轉至PVDF膜1.5 h,10%脫脂牛奶室溫孵育2 h,一抗4 ℃搖床孵育過夜,PBS洗膜3次,每次10 min,二抗室溫孵育條帶1.5 h,PBS洗膜3次,每次10 min,ECL化學發(fā)光液孵育條帶,化學發(fā)

    光成像系統(tǒng)對條帶印跡進行曝光顯影并拍照。

    1.2.7 雙熒光素酶報告基因檢測Linc00658與miR-19a-3p的結合:將Linc00658構建至pGL3-basic載體上(長沙優(yōu)寶生物公司),DMEM+10% FBS培養(yǎng)293T細胞,接種至6孔板中并分為Negative control(NC)組及mimic組,NC組共轉染pGL3-basic-Linc00658及miRNA control,mimic組共轉染pGL3-basic-Linc00658及miR-19a-3p mimic,48 h后收集細胞懸液,預冷PBS洗細胞3次,100 μL PBL裂解液室溫孵育30 min,2組細胞各取10 μL上樣至96孔板中,每組設置5個平行孔,加入100 μL預混Luciferase Assay Reagent II檢測熒光強度為RLU1,加入100 μL 預混Stop & Glo Reagent檢測熒光強度為RLU2,以RLU1/RLU2作為各組相對熒光強度。

    1.2.8 雙熒光素酶報告基因檢測Linc00658對miR-19a-3p介導的PTEN抑制的影響:將PTEN 3’UTR區(qū)構建至pGL3-basic載體上,接種293T細胞至6孔板中并分為PTEN+NC+Vector(PNV)組、PTEN+mimic+ Vector(PMiV)組及PTEN+mimic+Linco0658(PMi58)組,PNV組轉染pGL3-basic-PTEN、miRNA control及Vector;PMiV組轉染pGL3-basic-PTEN、miR-19a-3pmimic及Vector;PMi58組轉染pGL3-basic-PTEN、miR-19a-3p mimic及Linc00658過表達載體,方法同前。

    1.3 統(tǒng)計學處理方法 采用Graphpad Prism 8.0軟件。正態(tài)分布計量資料以±s表示,2組比較采用t檢驗,多組比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用SNK-q檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

    2 結果

    2.1 過表達Linc00658可部分逆轉CaCo2細胞對西妥昔單抗的耐藥 與對照組比,抵抗組及過表達組在4~512 nmol/L西妥昔單抗處理時,細胞存活率顯著增高(P<0.01),通過曲線擬合法計算IC50,抵抗組及過表達組西妥昔單抗IC50均顯著增高(P<0.01);而相比抵抗組,過表達組在32~512 nmol/L 西妥昔單抗處理時,細胞存活率顯著降低(P<0.01),通過曲線擬合法計算IC50,過表達組西妥昔單抗IC50顯著降低(P<0.05),見圖1。

    圖1 3組細胞在不同濃度西妥昔單抗下的細胞存活率

    2.2 miR-19a-3p mimic可促進CaCo2細胞對西妥昔單抗的抵抗 與NC組比,mimic組在8~512 nmol/L 西妥昔單抗處理時,細胞存活率顯著增高(P<0.01),通過曲線擬合法計算IC50,mimic組西妥昔單抗IC50顯著增高(P<0.01),見圖2。

    2.3 過表達Linc00658可抑制miR-19a-3p并上調PTEN mRNA的表達 qRT-PCR結果顯示,相比對照組,抵抗組Linc00658及PTEN mRNA表達顯著降低,miR-19a-3p表達顯著增高(P<0.01);相比抵抗組,過表達組Linc00658及PTEN mRNA表達顯著增高,miR-19a-3p表達顯著降低(P<0.01),見圖3。

    圖2 NC及mimic組細胞在不同濃度西妥昔單抗下的細胞存活率

    圖3 各組細胞Linc00658、miR-19a-3p及PTEN mRNA相對表達量

    2.4 過表達Linc00658可上調PTEN并抑制p-AKT及p-mTOR的蛋白表達 Western blot結果顯示,與對照組比,抵抗組PTEN表達顯著降低,p-AKT及p-mTOR蛋白表達顯著增高(P<0.05);相比抵抗組,過表達組PTEN表達顯著增高,p-AKT及p-mTOR蛋白表達顯著降低(P<0.05),見圖4。

    圖4 各組細胞PTEN、p-AKT及p-mTOR的Western blot結果

    2.5 miR-19a-3p可抑制Linc00658熒光素酶活性 LncBase數(shù)據(jù)庫分析與miR-19a-3p具有潛在結合的LncRNA,結果顯示miR-19a-3p與Linc00658轉錄本48~65位點以8mer的形式結合(見圖5A),同時,相比NC組,mimic組熒光素酶活性顯著降低(P<0.01),見圖5B。

    2.6 Linc00658對PTEN熒光素酶活性的影響 TargetScan及miRcancer數(shù)據(jù)庫聯(lián)合分析與PTEN相互作用miRNA,發(fā)現(xiàn)miR-19a-3p與PTEN 3’UTR區(qū)411-417位點以7mer-m8的形式結合(見圖6A),相比PNV組,PMiV組熒光素酶活性顯著降低(P<0.01);相比PMiV組,PMi58組熒光素酶活性顯著增高(P<0.01),見圖6B。

    3 討論

    ncRNA作為分布廣泛的表觀遺傳調控因子,參與機體絕大多數(shù)生物學過程。西妥昔單抗耐藥的發(fā)生同樣存在ncRNA的異常表達及調控,LU等[7]及THOMAS等[8]研究發(fā)現(xiàn)LncRNA miR100HG可協(xié)同miR-100和miR-125b介導Wnt/β-catenin通路的激活,進而促進CRC及頭頸鱗癌細胞西妥昔單抗耐藥;JING 等[9]及PENG等[10]發(fā)現(xiàn)LncRNA Linc00973可通過調控糖代謝促進西妥昔單抗耐藥細胞株的惡性表型。另外,miR-204、miR-143、miR-145及miR-146a等均被發(fā)現(xiàn)通過不同途徑參與影響腫瘤細胞西妥昔單抗耐 藥[11-13]。

    miR-19a-3p作為PTEN的上游負性調控因子,在多種惡性腫瘤中發(fā)揮促癌作用,包括骨肉瘤、胃癌、肝細胞癌及乳腺癌等[14-17],其中,LI等[15]研究發(fā)現(xiàn)LncRNA SLC25A5-AS1可作為miR-19a-3p的內源競爭性RNA(competing endogenous RNAs,ceRNA),抑制其介導的PTEN丟失及胃癌細胞的惡性表型;miR-19a-3p在結直腸癌中同樣也被發(fā)現(xiàn)可通過抑制FOXF2 mRNA水平,進而促進細胞上皮-間充質轉化、侵襲、遷移和增殖能力[18]。考慮到PTEN的丟失是腫瘤細胞西妥昔單抗耐藥的重要原因之一[19-20], 同時,基于LncRNA與西妥昔單抗耐藥的廣泛聯(lián)系,本研究首先通過生物信息技術在CRC細胞中預測到與miR-19a-3p潛在結合的LncRNA Linc00658,并觀察到Linc00658及miR-19a-3p在西妥昔單抗抵抗的CRC細胞株中異常表達,提示兩者可能存在相互作用并參與調控PTEN進而影響CRC細胞西妥昔單抗抵抗的形成。故我們在抵抗細胞中外源性過表達Linc00658,發(fā)現(xiàn)miR-19a-3p表達顯著降低,而PTEN mRNA及蛋白表達均顯著增高,其靶分子AKT及mTOR顯著激活,同時抵抗細胞西妥昔單抗敏感性增高,表明Linc00658可能作為miR-19a-3p的ceRNA發(fā)揮表觀調控作用,間接影響PTEN的表達,進而影響CRC細胞西妥昔單抗敏感性。進一步我們通過熒光素酶報告基因驗證了Linc00658與miR-19a-3p存在顯著結合,表明Linc00658同SLC25A5-AS1一樣[15],可作為miR-19a-3p的ceRNA發(fā)揮調控PTEN的作用。綜上,Linc00658通過競爭性結合miR-19a-3p,促進CRC細胞PTEN的表達及西妥昔單抗的敏感性。我們將進一步通過構建突變體及體內實驗證實上述推論,為相關藥物靶點及標志物的開發(fā)提供依據(jù)。

    圖5 miR-19a-3p對Linc00658熒光素酶活性的影響

    圖6 Linc00658對PTEN熒光素酶活性的影響

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