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    基于分子印跡技術(shù)分離淡竹葉中異葒草苷的研究*

    2020-11-25 03:09:20朱俊訪
    關(guān)鍵詞:淡竹葉印跡提取液

    朱俊訪,李 博,聶 陽(yáng)

    (廣東食品藥品職業(yè)學(xué)院實(shí)驗(yàn)實(shí)訓(xùn)中心 廣州 510520)

    淡竹葉為禾本科植物淡竹葉(Lophatherum gracileBrongn)的干燥莖葉[1],具有解熱、利尿、抗菌和抗腫瘤等藥理作用[2]。淡竹葉在我國(guó)大部分地區(qū)均有分布,具有良好的藥理活性且資源十分豐富。淡竹葉藥材含有豐富的碳苷黃酮[3],包括牡荊苷、異牡荊苷、葒草苷、異葒草苷、日當(dāng)藥黃素和當(dāng)藥黃素等,其中以異葒草苷含量較高[4]?,F(xiàn)有報(bào)道[5-6]表明,淡竹葉總黃酮具有清除自由基、抗氧化和抑制脂質(zhì)過(guò)氧化反應(yīng)等藥理作用,其中葒草苷具有抗缺氧、保護(hù)心肌、抗血栓等作用,牡荊素具有抗心肌缺血等作用[7],異葒草苷具有較強(qiáng)的抗氧化作用[8]。淡竹葉生長(zhǎng)周期短,更生能力旺,資源豐富,除藥用外,尚可用于食品、保健品等方面,值得充分開(kāi)發(fā)利用,因此,淡竹葉是一種具有廣闊開(kāi)發(fā)應(yīng)用前景的天然藥物。

    傳統(tǒng)的中藥活性成分提取、純化方法主要是先采用有機(jī)溶劑提取,如竹葉黃酮常用的提取方法有回流提取、超聲提取等,然后通過(guò)層析、大孔吸附樹(shù)脂、重結(jié)晶、制備色譜等進(jìn)一步分離、純化,存在步驟多而繁瑣、溶劑消耗大、成本高、污染環(huán)境等方面的問(wèn)題[9-11]。因此針對(duì)傳統(tǒng)分離方法的缺點(diǎn),有需要開(kāi)發(fā)一種有效、簡(jiǎn)便、選擇性高的分離新技術(shù)來(lái)解決這種高成本、低收率的問(wèn)題,分子印跡技術(shù)恰好滿足這一要求。分子印跡技術(shù)具有制備簡(jiǎn)單、成本廉價(jià)、能重復(fù)使用等優(yōu)點(diǎn),尤其是特異的分子識(shí)別性能、高效率的富集與分離能力能夠使結(jié)構(gòu)類(lèi)似的物質(zhì)很容易得到分離,使中藥成分純化工藝得以簡(jiǎn)化,節(jié)省了溶劑的用量,減少了環(huán)境污染,因此,分子印跡聚合物在中藥活性成分的分離純化應(yīng)用中具有極大的發(fā)展空間[12-15]。

    本研究利用分子印跡技術(shù),以異葒草苷為模板分子,制備異葒草苷的分子印跡聚合物(MIPs),采用電鏡掃描對(duì)MIPs 的結(jié)構(gòu)進(jìn)行了表征,對(duì)其吸附性能進(jìn)行了評(píng)價(jià),并研究了該聚合物對(duì)淡竹葉中黃酮類(lèi)成分異葒草苷的吸附分離效果。分子印跡技術(shù)具有強(qiáng)特異性及選擇性,在中藥有效成分研究中具有良好的應(yīng)用前景[16],通過(guò)本研究以期為分子印跡聚合物在中藥有效成分分離上的應(yīng)用提供一定的研究基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    本研究所用的材料與儀器包括:LC-2010A 高效液相色譜儀(日本島津儀器公司);UV2600 紫外分光光度計(jì)(尤尼科儀器有限公司);JSM7800掃描電鏡(日本電子株式會(huì)社);AUY120 電子天平(日本島津儀器公司);HH-4 恒溫水浴鍋(常州澳華儀器有限公司);SB5200DTN 超聲波清洗機(jī)(寧波新芝生物科技股份有限公司);異葒草苷對(duì)照品(質(zhì)量分?jǐn)?shù)99.26%,批號(hào)18020610),成都曼思特生物科技有限公司;淡竹葉(批號(hào)20160401,廣州市華宇藥業(yè)有限公司),經(jīng)廣東食品藥品職業(yè)學(xué)院康大力副教授鑒定為淡竹葉;2-乙烯基吡啶(2-VP)、丙烯酰胺(AM)、偶氮二異丁氰(AIBN),科密歐化學(xué)試劑有限公司;乙二醇二甲基丙烯酸酯(EDMA),喬科化學(xué)有限公司;甲醇為色譜純,其余試劑為分析純。

    1.2 功能單體選擇及用量篩選

    本研究采用紫外分光光度法考察異葒草苷與AM和2-VP 兩種功能單體在甲醇中的相互作用,通過(guò)紫外光譜的變化,對(duì)功能單體進(jìn)行篩選。在0.1 mmol·L-1異葒草苷溶液中分別加入不同濃度的AM 和2-VP,使異葒草苷與功能單體的比例分別為1∶2、1∶4、1∶6,充分振蕩后放置12 h,分別以相同濃度的功能單體做參比,測(cè)定紫外光譜,分析紫外光譜變化,分析確定最佳功能單體的種類(lèi)及配比。

    為了確定模板分子與功能單體的最佳比例,固定制備工藝中除功能單體外的其他條件,通過(guò)改變功能單體的用量,分別制備印跡聚合物,根據(jù)所得聚合物的性狀及平衡吸附量(Q)來(lái)判斷功能單體最佳用量。

    1.3 印跡聚合物的制備[17]

    稱(chēng)取1.5 mmol 異葒草苷溶解于25 mL 甲醇/氯仿(2∶3)中,超聲振蕩10 min,再加入一定量的功能單體2-VP,超聲振蕩10 min靜置30 min,加入30 mmol交聯(lián)劑EDMA,加入50 mg 引發(fā)劑AIBN,充分混勻超聲振蕩10 min,通氮?dú)?5 min,密封,置于65℃水浴中聚合24 h,得果凍塊狀聚合物。將聚合物取出晾干后研磨,粉末過(guò)120目篩后放入索氏提取器中,用甲醇-冰醋酸(9∶1,V/V)回流提取,直至提取液在360 nm下無(wú)模板分子吸收,再用甲醇洗去殘留的冰醋酸,粉末晾干后真空干燥24 h 后備用,得異葒草苷的分子印跡聚合物。空白印跡聚合物(NIPs)的制備除了不加模板分子異葒草苷外,其余步驟同MIPs的制備。使用掃描電鏡測(cè)定所得異葒草苷MIPs和NIPs的外貌形態(tài)并進(jìn)行分析。

    1.4 印跡聚合物靜態(tài)吸附性能實(shí)驗(yàn)

    稱(chēng)取40 mg 的異葒草苷印跡聚合物10 份,分別放入25 mL具塞錐形瓶中,分別加入用甲醇配制的濃度為0.01 mmol·L-1、0.02 mmol·L-1、0.03 mmol·L-1、0.04 mmol·L-1、0.05 mmol·L-1、0.06 mmol·L-1、0.07 mmol·L-1、0.08 mmol·L-1、0.09 mmol·L-1和 0.10 mmol·L-1的異葒草苷對(duì)照品溶液,室溫振蕩24 h,取吸附后的溶液進(jìn)行離心、過(guò)濾,濾液于360 nm 處測(cè)定吸光度??瞻拙酆衔锏撵o態(tài)吸附實(shí)驗(yàn)的處理和操作同上。根據(jù)吸附前后溶液中模板分子異葒草苷的濃度變化計(jì)算分子印跡聚合物的吸附量(Q),并繪制等溫吸附曲線,計(jì)算公式見(jiàn)公式(1)。

    上式中Q為平衡吸附量(μmol/g),C0為溶液中異葒草苷的起始濃度(μmol/L),Ce為平衡時(shí)溶液中異葒草苷的濃度(μmol/L),V為溶液體積(mL),W為印跡聚合物的質(zhì)量(g)。

    1.5 動(dòng)態(tài)吸附實(shí)驗(yàn)

    取二支玻璃色譜柱分別加入2.5 g干燥的MIPs,得異葒草苷的MIPs 填充柱A 柱和B 柱,另外再取一玻璃色譜柱加入2.5 g NIPs 為C 柱,分別以甲醇平衡色譜柱。分別吸取濃度為0.10 mmol·L-1的異葒草苷對(duì)照品溶液0.5 mL 加至平衡后的萃取柱MIPs-A 柱、MIPs-B 柱和NIPs-C柱。MIPs-A柱先用甲醇進(jìn)行淋洗,收集洗脫液,每份2 mL,再用甲醇-冰醋酸(9∶1)洗脫,收集洗脫液,每份2 mL。MIPs-B 柱直接用甲醇-冰醋酸(9∶1)洗脫,收集洗脫液,每份2 mL。NIPs-C柱用甲醇進(jìn)行淋洗,收集洗脫液,每份2 mL。在360 nm 處分別測(cè)定各洗脫液吸光度,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,分別繪制MIPs-A柱與MIPs-B柱、MIPs-A柱與NIPs-C柱的洗脫曲線。

    1.6 淡竹葉提取液的制備

    取淡竹葉100 g,粉碎后過(guò)50 目篩,使用80%乙醇浸泡提取24 h,提取3 次,合并提取液并濃縮至無(wú)醇味,使用等體積石油醚萃取3次,合并水相并濃縮得浸膏[18]。用甲醇超聲溶解上述浸膏,過(guò)濾,定容至25 mL容量瓶中,得供試品溶液(含異葒草苷37.6%)。

    1.7 HPLC分析

    吸取淡竹葉提取液上樣,用甲醇洗脫,分別收集MIPs 柱和NIPs 柱洗脫液。使用以下色譜條件進(jìn)行分析,考察MIPs對(duì)淡竹葉中異葒草苷的分離效果。

    表1 流動(dòng)相梯度表

    色譜條件:Agilent C18色譜柱(250 mm×4.6 mm,5 μm),流動(dòng)相為甲醇和0.5%醋酸水溶液,按表1 進(jìn)行梯度洗脫,進(jìn)樣量為10 μL,柱溫25℃,體積流量為1.0 mL·min-1,檢測(cè)波長(zhǎng)為360 nm[19-20]。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 功能單體選擇

    功能單體在聚合物制備過(guò)程中,主要是與模板分子通過(guò)共價(jià)或非共價(jià)作用形成復(fù)合物,模板分子和功能單體在聚合前能否形成穩(wěn)定的復(fù)合物是獲得高選擇性分子印跡聚合物的關(guān)鍵,因此,選擇合適功能單體種類(lèi)及確定功能單體用量至關(guān)重要。增加功能單體的用量,會(huì)使模板分子和功能單體的預(yù)組裝更完全,但用量過(guò)大單體自身會(huì)發(fā)生締合,影響印跡聚合物中特異性結(jié)合位點(diǎn)的產(chǎn)生。本實(shí)驗(yàn)通過(guò)紫外-可見(jiàn)分光光度法來(lái)確定最佳功能單體的種類(lèi)和配比。根據(jù)紫外光譜原理,價(jià)電子與氫原子形成氫鍵,電子能量發(fā)生變化,分子軌道發(fā)生扭曲變形,電子躍遷概率發(fā)生變化,這些原因?qū)е挛舛劝l(fā)生變化。因此,通過(guò)比較紫外光譜的變化,可推測(cè)模板分子與功能單體間相互作用強(qiáng)度和配比等信息。

    模板分子異葒草苷結(jié)構(gòu)具有多個(gè)酚羥基,具有一定的酸性,羰基氧原子上的未共用電子對(duì)有微弱的堿性。理論上,選擇堿性功能單體更有利于模板分子和功能單體形成穩(wěn)定的復(fù)合物,因此以AM 和2-VP 為備選功能單體。使用紫外分光光度法分別對(duì)0.1 mmol·L-1異葒草苷、異葒草苷:AM(1∶2、1∶4、1∶6)的和異葒草苷:2-VP(1∶2、1∶4、1∶6)進(jìn)行光譜掃描,結(jié)果見(jiàn)圖1。可以看出異葒草苷與不同比例的2-VP 混合后,在250-290 nm 范圍內(nèi)的吸收曲線發(fā)生了明顯變化,吸光值隨2-VP 濃度增大而減小,說(shuō)明模板分子與2-VP 之間有較強(qiáng)的作用力。異葒草苷與不同比例的AM 混合后,紫外圖譜沒(méi)有發(fā)生明顯變化,說(shuō)明模板分子與功能單體作用較弱。由此可推斷2-VP 是一種較理想的功能單體,這可能是由于其與模板分子間存在氫鍵及酸堿作用,因此產(chǎn)生了較好的識(shí)別位點(diǎn)。

    2.2 功能單體用量篩選

    固定制備工藝中模板分子用量為1.5 mmol、交聯(lián)劑的用量為30 mmol,將功能單體的用量分別設(shè)為3 mmol、6 mmol、9 mmol 和 12 mmol,分別制備印跡聚合物,記錄所得聚合物的性狀,計(jì)算平衡吸附量(Q)。結(jié)果見(jiàn)表2,不同的功能單體用量制備得到1-4 號(hào)MIPs,其中1-3 號(hào)聚合物為果凍狀固體,而4 號(hào)聚合物由于添加的功能單體較多所形成的聚合物結(jié)構(gòu)不夠緊密因此為膠狀。所以綜合1-4 號(hào)MIPs 的性狀和Q值可判斷較佳工藝為3 號(hào),即印跡分子異葒草苷的量為 1.5 mmol,功能單體 2-VP 的量為 9 mmol,交聯(lián)劑EDMA的量為30 mmol。

    圖1 異葒草苷與不同濃度功能單體的紫外光譜

    表2 功能單體用量篩選

    2.3 聚合物表面形態(tài)研究

    掃描電鏡是一種微觀形貌觀察手段,主要是利用二次電子信號(hào)成像來(lái)觀察樣品的表面形態(tài)。使用掃描電鏡對(duì)制備所得異葒草苷MIPs 和NIPs 的表面形態(tài)進(jìn)行測(cè)定,研究聚合物的微觀結(jié)構(gòu)以及表面的形態(tài)差異,對(duì)聚合物的聚合情況進(jìn)行評(píng)價(jià)。由圖2可以看出,異葒草苷MIPs 和NIPs 的表面形態(tài)具有較大差異,NIPs 的表面較為光滑、均一、質(zhì)地緊密,而異葒草苷MIPs 表面較為粗糙、具有大量的小孔,這可能是由于異葒草苷MIPs 中模板分子被洗脫后留下的“印跡”空穴,正是這些空穴使得該MIPs具有了特殊的吸附性和選擇性,因此這更有利于對(duì)模板分子的吸附。

    2.4 靜態(tài)吸附實(shí)驗(yàn)

    通過(guò)靜態(tài)吸附實(shí)驗(yàn)研究異葒草苷在印跡聚合物和非印跡聚合物上的吸附行為,使用吸附量對(duì)平衡濃度作圖,得吸附等溫線見(jiàn)圖3。由圖3可見(jiàn)在所研究的濃度范圍內(nèi),MIPs 對(duì)異葒草苷具有一定的吸附能力,吸附量隨著溶液濃度的升高逐漸增大,最大吸附量可達(dá) 2.5 μmol?g-1,在相同濃度下 NIPs 對(duì)異葒草苷的吸附相對(duì)較小。隨濃度的增加,MIPs和NIPs吸附量之差越來(lái)越大,推測(cè)MIPs對(duì)目標(biāo)分子具有選擇性的吸附能力,而NIPs 不存在這種特異性的結(jié)合位點(diǎn),且對(duì)模板分子只有弱的非選擇性吸附,因此,NIPs 對(duì)目標(biāo)分子吸附能力較差。

    圖2 分子印跡聚合物的SEM圖片

    圖3 印跡聚合物的等溫結(jié)合曲線

    2.5 動(dòng)態(tài)吸附實(shí)驗(yàn)

    MIPs-A 柱、MIPs-B 柱和 NIPs-C 柱分別使用 0.10 mmol/L 異葒草苷對(duì)照品溶液上樣,使用分光光度法分別測(cè)定異葒草苷在相同MIPs 柱不同洗脫液及MIPs 柱與NIPs 柱間的洗脫保留情況,以洗脫體積為橫坐標(biāo),吸光值為縱坐標(biāo),繪制洗脫曲線。圖4-①為MIPs 柱與NIPs柱上樣后使用甲醇洗脫的泄露曲線圖,由圖可看出NIPs 柱比MIPs 柱更早出峰且峰型更窄,這是由于模板分子異葒草苷在MIPs中具有特異的結(jié)合位點(diǎn),而在NIPs 中不具有這種結(jié)合位點(diǎn),因此,異葒草苷在MIPs 柱上的保留時(shí)間更長(zhǎng)。圖4-②為MIPs 柱使用不同洗脫液洗脫的泄露曲線,MIPs-A 柱先使用甲醇洗脫、再用甲醇∶冰醋酸(9∶1)洗脫,相比MIPs-B 柱只使用甲醇進(jìn)行洗脫,MIPs-A 柱在洗脫后期多出一個(gè)峰,這是由于MIPs 對(duì)模板分子異葒草苷具有一定的吸附能力,在使用更強(qiáng)的洗脫劑甲醇∶冰醋酸(9∶1)時(shí)被更集中的洗脫下來(lái)。通過(guò)對(duì)比動(dòng)態(tài)吸附試驗(yàn)結(jié)果,可以說(shuō)明制備所得MIPs 對(duì)模板分子異葒草苷具有一定的吸附能力且吸附能力比NIPs強(qiáng)。

    2.6 方法學(xué)考察

    2.6.1 線性關(guān)系考察

    使用1.7 項(xiàng)下的色譜條件,測(cè)定異葒草苷的系列濃度的對(duì)照品標(biāo)準(zhǔn)溶液,平行測(cè)定3次,對(duì)平均峰面積(y)與質(zhì)量濃度(x)進(jìn)行線性分析,計(jì)算得回歸方程y=251960x+251712(r=0.9991)。結(jié)果顯示異葒草苷在17.44-52.32 μg/mL范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。

    2.6.2 精密度試驗(yàn)

    精密吸取異葒草苷對(duì)照品溶液10 μL,采用1.7 項(xiàng)的色譜條件,連續(xù)進(jìn)樣6 次,測(cè)定異葒草苷峰面積,經(jīng)計(jì)算RSD=0.22%(n=6),表明該方法精密度良好。

    2.6.3 重現(xiàn)性試驗(yàn)

    取同一供試品溶液5份,在1.7項(xiàng)的色譜條件進(jìn)行測(cè)定,記錄異葒草苷的峰面積,經(jīng)計(jì)算RSD=2.38%(n=6),表明該方法重現(xiàn)性良好。

    2.6.4 穩(wěn)定性試驗(yàn)

    取同一供試品溶液分別于0 h,2 h,4 h,8 h,16 h進(jìn)樣10 μL,記錄異葒草苷的峰面積,經(jīng)計(jì)算RSD=1.35%(n=6),結(jié)果表明供試品溶液在16 h內(nèi)穩(wěn)定。

    2.6.5 回收率試驗(yàn)

    采用加樣回收法,精密稱(chēng)取已知含量的供試品6份,分別加入適量的異葒草苷對(duì)照品,按1.6 項(xiàng)操作制備供試品溶液,在1.7 項(xiàng)的色譜條件進(jìn)行測(cè)定峰面積,計(jì)算異葒草苷的平均回收率為99.1%,RSD=1.40%。

    2.7 淡竹葉中異葒草苷分離研究

    圖4 異葒草苷的動(dòng)態(tài)吸附曲線

    圖5 淡竹葉提取液高效液相色譜圖

    圖6 淡竹葉洗脫液高效液相色譜圖

    淡竹葉中含有多種黃酮類(lèi)化合物,其中以異葒草苷含量較高,圖5 為淡竹葉提取液(含異葒草苷37.6%)使用1.7 項(xiàng)下色譜條件得到的高效液相色譜圖,圖6 為淡竹葉提取液經(jīng)過(guò)MIPs 柱洗脫所得的中段洗脫液(含異葒草苷83.6%)在同一色譜條件下所得的高效液相色譜圖。對(duì)比兩色譜圖可以看出,淡竹葉提取液經(jīng)MIPs 柱洗脫后的中段洗脫液除異葒草苷外其他色譜峰明顯減少,異葒草苷含量提高了46%,這可能是由于MIPs 對(duì)淡竹葉提取液中的異葒草苷具有一定的選擇性吸附能力,而對(duì)淡竹葉中的其他成分沒(méi)有選擇性吸附。淡竹葉中的其他成分在MIPs 柱中的保留時(shí)間較短,主要在洗脫前期被洗脫下來(lái),而異葒草苷保留時(shí)間較長(zhǎng)洗脫較慢。因此,說(shuō)明MIPs柱對(duì)淡竹葉提取液中的異葒草苷存在一定的純化能力。

    將淡竹葉提取液分別過(guò)MIPs 柱和NIPs 柱,收集洗脫液,洗脫液進(jìn)行HPLC 分析,以異葒草苷為指標(biāo)考察聚合物對(duì)異葒草苷的分離效果。以異葒草苷的百分含量為縱坐標(biāo),洗脫體積為橫坐標(biāo),作異葒草苷在MIPs 柱和NIPs 柱的洗脫曲線圖,見(jiàn)圖7。通過(guò)比較兩條曲線可以看出,由于MIPs柱對(duì)異葒草苷具有特異性吸附性能力,異葒草苷在MIPs 柱的保留時(shí)間要比在NIPs 柱長(zhǎng),因此可將該MIPs 用于異葒草苷的分離純化。

    3 討論

    本研究制備了異葒草苷分子印跡復(fù)合物,并對(duì)該聚合物的表面形態(tài)和吸附性能進(jìn)行了研究,結(jié)果表明,該分子印跡復(fù)合物對(duì)異葒草苷有較好的結(jié)合性能與分離能力,這是由于MIPs與模板分子異葒草苷之間存在多個(gè)相互作用的位點(diǎn)和相互匹配的空間,且形成了氫鍵等非共價(jià)鍵,使得MIPs對(duì)模板分子具有較強(qiáng)的吸附能力。制備的分子印跡聚合物能有效的富集淡竹葉中的異葒草苷,質(zhì)量分?jǐn)?shù)可達(dá)83.6%,與傳統(tǒng)方法相比,分子印跡聚合物在分離的效率、效果上有明顯的提高,不過(guò)與制備色譜的分離結(jié)果相比[11],在純度上仍存在一些差距。雖然制備色譜能達(dá)到很好的分離純化效果,但也存在成本高、應(yīng)用不便等問(wèn)題。因此制備所得異葒草苷分子印跡聚合物的吸附性能還有待進(jìn)一步提高,可考慮進(jìn)一步優(yōu)化制備條件、引入先進(jìn)的制備方法,或者結(jié)合計(jì)算機(jī)模擬技術(shù)來(lái)提高合成和研發(fā)效率。

    圖7 淡竹葉中異葒草苷的洗脫曲線圖

    本研究為淡竹葉中異葒草苷的提取分離提供了新的方法,也為中藥有效成分的分離純化提供了新的思路。分子印跡技術(shù)具有制備過(guò)程簡(jiǎn)單、周期短、穩(wěn)定性好、選擇性好、消耗少等優(yōu)點(diǎn),應(yīng)用于中藥有效成分的分離純化,可以提高分離效率,減少溶劑用量,并有助于推動(dòng)綠色中藥的發(fā)展。但是,分子印跡技術(shù)在其應(yīng)用過(guò)程中仍然存在一些問(wèn)題,如水相中分子印跡聚合物的不相容性、結(jié)合位點(diǎn)不均勻、模板滲漏等,因此,分子印跡技術(shù)在中藥方面的應(yīng)用有待更進(jìn)一步的研究。

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