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    納豆多糖的硫酸化改性工藝

    2020-11-21 08:42:10陳遠(yuǎn)嬌楊文麗
    關(guān)鍵詞:納豆磺酸酯化

    楊 波, 楊 光, 陳遠(yuǎn)嬌, 楊文麗

    (上海理工大學(xué) 醫(yī)療器械與食品學(xué)院,上海 200093)

    納豆起源于中國古代豆豉,是日本的發(fā)酵產(chǎn)品[1],它是天然的抗生物,富含多種營養(yǎng)素,有助于調(diào)節(jié)血壓和血脂,降低膽固醇,綜合提高人體免疫力等[2-3]。近年來,對(duì)納豆功能性成分的研究越來越多,納豆多糖是由納豆菌發(fā)酵大豆所得的副產(chǎn)物,其抗氧化、改善免疫學(xué)機(jī)制以及提高免疫力的作用已經(jīng)被證實(shí)[4-6]。多糖的生物活性與其復(fù)雜的空間結(jié)構(gòu)相關(guān),硫酸酯化多糖是一種酸性多糖,是單糖結(jié)構(gòu)中的羥基被硫酸基團(tuán)取代而形成的一類多功能生理活性物質(zhì)[7]。多糖經(jīng)硫酸化修飾后,蛋白質(zhì)構(gòu)象被改變,使其生物活性功能發(fā)生改變,有利于增強(qiáng)硫酸酯化多糖的抗氧化、抗癌、免疫調(diào)節(jié)和抗凝血活性等多種生物功能[8]。朱麗丹等[9]對(duì)硫酸酯化米糠多糖的研究中發(fā)現(xiàn),硫酸酯化米糠多糖在體外條件下可抑制腫瘤細(xì)胞的增殖。目前,多糖的硫酸酯化方法主要有濃硫酸法、三氧化硫–吡啶法、氯磺酸法,但這些方法均有缺陷,其中濃硫酸和氯磺酸屬于強(qiáng)酸,反應(yīng)條件難以控制,效果不甚理想。

    因此,本研究選擇氯磺酸–吡啶法來對(duì)納豆多糖進(jìn)行硫酸化修飾,單因素試驗(yàn)和正交試驗(yàn)確定了最佳工藝;采用傅立葉紅外光譜觀察分析硫酸酯化納豆多糖(以下簡稱酯化多糖)的官能團(tuán)變化;同時(shí)探究了酯化多糖與納豆多糖對(duì)阪岐桿菌(Bntorobater sakazakii)、嗜水氣單胞菌(Aeromonas hydrophila)及大腸桿菌 O157(Escherichia coli)的抑制作用,為納豆多糖的硫酸酯化改性提供一定的理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    原料:納豆多糖由本實(shí)驗(yàn)室利用購自連云港糧油工業(yè)有限公司的大豆豆粕提取得到。

    試劑:氯磺酸、吡啶、N,N–二甲基甲酰胺、牛肉膏、蛋白胨、氯化鈉、瓊脂、營養(yǎng)肉湯(國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司)、大腸桿菌、阪岐桿菌、嗜水氣單胞菌(上海一研生物科技有限公司)。

    1.2 儀 器

    精密增力電動(dòng)攪拌器(JJ-1):常州朗越儀器制造有限公司;數(shù)控升降水浴鍋:上海振捷設(shè)備有限公司;pH計(jì)(pHS-3TC):上海天達(dá)儀器有限公司;超凈工作臺(tái)(Vs-840-2):上海博訊實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠;生化培養(yǎng)箱(LRH-250):上?;厶﹥x器制造有限公司;可見分光光度計(jì)(WFJ 7200):優(yōu)尼柯儀器有限公司;數(shù)顯水浴恒溫振蕩器(SHZ-82B):常州人和儀器廠;紅外光譜儀(NICOLET5700):美國熱電公司。

    1.3 方 法

    1.3.1 酯化納豆多糖的制備

    硫酸酯化試劑的制備:參照Qian等[10]的方法。將帶有冷凝和攪拌裝置的三頸瓶置于鹽水–冰浴中,取適量預(yù)冷的吡啶,按照一定比例緩慢加入氯磺酸,邊加邊攪拌,使兩者充分反應(yīng)??刂品磻?yīng)溫度在10 ℃以內(nèi),反應(yīng)時(shí)間為30~40 min即可得到淡黃色酯化試劑。

    酯化多糖的制備:稱取適量納豆多糖,使其溶于一定體積的N,N–二甲基甲酰胺中,并加入裝有酯化試劑的三頸瓶中。調(diào)節(jié)水浴鍋溫度,攪拌一定時(shí)間后,倒入裝有適量冰水的燒杯中,用4 mol/L的NaOH調(diào)節(jié)溶液pH值至中性。加入95%乙醇,使溶液中乙醇濃度為75%后放入4 ℃冰箱中醇沉過夜。離心得到多糖沉淀流水透析48 h,再蒸餾水透析12 h,濃縮、凍干即可得硫酸酯化納豆多糖。

    1.3.2 硫含量的測定

    硫酸根含量測定方法采用氯化鋇–明膠法[11]。以硫酸鉀的含量為橫坐標(biāo),以吸光度為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,如圖1所示。由圖1可以得到,以K2SO4為標(biāo)樣所做的標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為y=1.848x+0.016 6,相關(guān)系數(shù)R2=0.998 9。

    圖 1 硫酸根測定標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.1 Standard curve for the determination of sulfate

    樣品中硫酸根提取:準(zhǔn)確稱取樣品0.05 g于樣品瓶中,加入1 mol/L的鹽酸溶液2 mL,搖勻后密封,105 ℃ 水解 3 h。冷卻后用 1 mol/L 的鹽酸溶液定容至50 mL。按照標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作方法測定吸光度。每個(gè)樣品測定3次,取平均值。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算酯化多糖中硫酸根離子含量,根據(jù)公式計(jì)算其取代度。

    取代度計(jì)算公式為

    式中:DS為取代度;S為硫酸根離子質(zhì)量分?jǐn)?shù)。

    1.3.3 酯化多糖制備單因素試驗(yàn)設(shè)計(jì)

    a. 氯磺酸與吡啶的體積比V氯磺酸∶V吡啶對(duì)取代度的影響

    按照1.3.1中的方法,設(shè)置V氯磺酸∶V吡啶分別1∶1,1∶2,1∶3,1∶4,1∶5,探究在V酯化試劑∶V多糖為4∶3、酯化溫度70 ℃、酯化時(shí)間為2 h的條件下,測定V氯磺酸∶V吡啶對(duì)酯化多糖取代度的影響。

    b. 酯化試劑與納豆多糖溶液的體積比V酯化試劑∶V多糖對(duì)取代度的影響

    按照1.3.1中的方法,設(shè)置V酯化試劑∶V多糖分別為 4∶1,4∶2,4∶3,4∶4,4∶5,探究在V氯磺酸∶V吡啶為 1∶3、酯化溫度 70 ℃、酯化時(shí)間為2 h的條件下,測定V酯化試劑∶V多糖對(duì)酯化多糖取代度的影響。

    c. 多糖酯化溫度對(duì)取代度的影響

    按照1.3.1中的方法,設(shè)置酯化溫度分別為50,60 ,70,80 ,90 ℃,探究在V氯磺酸∶V吡啶為1∶3、V酯化試劑∶V多糖為 4∶3、酯化時(shí)間為 2 h的條件下,測定酯化溫度對(duì)酯化多糖取代度的影響。

    d. 多糖酯化時(shí)間對(duì)取代度的影響

    按照1.3.1中的方法,設(shè)置酯化時(shí)間分別為1,2,3,4,5 h,探究在V氯磺酸∶V吡啶為1∶3、V酯化試劑∶V多糖為4∶3、酯化溫度為70 ℃的條件下,測定酯化時(shí)間對(duì)酯化多糖取代度的影響。

    1.3.4 正交試驗(yàn)優(yōu)化

    為了探究各單因素之間的相互作用,在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,采用軟件minitab 17.0對(duì)V氯磺酸∶V吡啶、V酯化試劑∶V多糖、酯化溫度和酯化時(shí)間制定四因素三水平的正交優(yōu)化試驗(yàn),以酯化多糖取代度為指標(biāo),確定最適酯化工藝。

    1.3.5 酯化多糖的紅外光譜分析

    參考馬小雙等[12]的測定方法,取2 mg納豆多糖樣品及200 mg干燥的溴化鉀放入瑪瑙研缽中,在紅外燈照射下將其混勻并研細(xì)。用壓片機(jī)將混合物壓成 0.3~0.5 mm 的透明薄片,在 400~4 000 /cm紅外波長范圍內(nèi)進(jìn)行掃描,觀察并分析譜峰情況。

    1.3.6 抑菌試驗(yàn)方法

    參考陳致印等[13]的方法,固體培養(yǎng)基:分別稱取牛肉膏 5 g、蛋白胨 10 g、氯化鈉 5 g、瓊脂 15 g,加熱溶解于1 000 mL蒸餾水中,滅菌后備用。液體培養(yǎng)基:粉狀營養(yǎng)肉湯7.2 g,加熱溶解于400 mL蒸餾水中,低濃度NaOH溶液調(diào)節(jié)其pH值為7.2~7.4,高壓滅菌后備用。

    菌懸液制備:選用活化后的大腸桿菌、阪岐桿菌和嗜水氣單胞菌,用接種環(huán)挑取單菌落至液體培養(yǎng)基中,根據(jù)各菌種的最適宜生長溫度,分別在150 r/min轉(zhuǎn)速下震蕩培養(yǎng),定時(shí)取樣計(jì)數(shù),使菌懸液濃度為106cfu/mL(每毫升待檢樣品中含有的菌落總數(shù))。

    抑菌作用測定:采用濾紙片法。將酯化多糖與納豆多糖配制成不同濃度梯度的溶液,過0.45 μm濾膜備用。使用十字交叉法測定抑菌圈直徑。抑菌圈大小可表示抑菌活性大小。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 酯化反應(yīng)條件對(duì)酯化多糖取代度的影響

    2.1.1V氯磺酸∶V吡啶對(duì)酯化多糖取代度的影響

    取納豆多糖 0.1 g,在V酯化試劑∶V多糖為 4∶3、酯化溫度70 ℃、酯化時(shí)間2 h的條件下,測定V氯磺酸∶V吡啶對(duì)酯化納豆多糖取代度的影響,結(jié)果如圖2所示。

    圖 2 V氯磺酸∶V吡啶對(duì)酯化多糖取代度的影響Fig.2 Effect of volume ratio of chlorosulfonic acid and pyridine on degree of substitution of sulfated polysaccharide

    由圖2可知,在制備酯化試劑時(shí),隨著吡啶體積的增加,酯化多糖的取代度逐漸升高,在V氯磺酸∶V吡啶為1∶4時(shí)達(dá)到最高,這可能由于氯磺酸為強(qiáng)酸;當(dāng)V氯磺酸∶V吡啶<1∶4時(shí),過量的氯磺酸使部分納豆多糖分解,小分子糖類羥基基團(tuán)即使被硫酸基取代,也會(huì)被透析除去;當(dāng)V氯磺酸∶V吡啶>1∶4時(shí),吡啶過量,與氯磺酸反應(yīng)的吡啶環(huán)上的磺酰氯基團(tuán)達(dá)到飽和,取代羥基的硫酸基團(tuán)不會(huì)增多。因此,利用氯磺酸和吡啶制備硫酸化試劑的最佳比例為1∶4。

    2.1.2V酯化試劑∶V多糖對(duì)酯化多糖取代度的影響

    取納豆多糖 0.1 g,在V氯磺酸∶V吡啶為 1∶3、酯化溫度70 ℃、酯化時(shí)間2 h的條件下,測定V酯化試劑∶V多糖對(duì)酯化納豆多糖的多糖取代度的影響,結(jié)果如圖3所示。

    圖 3 V酯化試劑∶V多糖對(duì)酯化多糖的多糖取代度的影響Fig.3 Effect of volume ratio of sulfate reagent and natto polysaccharide on degree of substitution of sulfated polysaccharide

    由圖3可知,隨著V酯化試劑與V多糖比例的增加,酯化多糖的取代度先增加后降低。原因可能為以N,N–二甲基甲酰胺為分散劑,配制不同體積的納豆多糖溶液,當(dāng)V酯化試劑∶V多糖<4∶1時(shí),分散劑的量較低,不足以使全部納豆多糖與酯化試劑反應(yīng),部分納豆多糖被碳化,導(dǎo)致取代度降低。此外,酯化試劑較多時(shí),也會(huì)使納豆多糖出現(xiàn)板結(jié)碳化現(xiàn)象;當(dāng)V酯化試劑∶V多糖>4∶3時(shí),分散劑太多,使納豆多糖中的C位被硫酸基充分取代。劉捷等[14]對(duì)皺皮木瓜多糖的硫酸酯化研究發(fā)現(xiàn),氯磺酸與多糖的比例大于30(mL)∶1(mg)時(shí),酯化木瓜多糖的取代度不再增加,因?yàn)轷セ噭┨砑恿吭龃髸r(shí),酯化溶液粘稠性增強(qiáng),攪拌不均勻,使酯化多糖產(chǎn)率降低。因此,V酯化試劑與V多糖的最佳比例為4∶3。

    2.1.3 酯化時(shí)間對(duì)取代度的影響

    取納豆多糖 0.1 g,在V氯磺酸∶V吡啶為 1∶3、V酯化試劑∶V多糖為 4∶3、酯化溫度為 70 ℃的條件下,測定酯化溫度對(duì)硫酸化納豆多糖取代度的影響,結(jié)果如圖4所示。

    由圖4可知,酯化多糖取代度隨著酯化時(shí)間的延長先升高后降低,酯化時(shí)間為2 h時(shí)達(dá)到最高。原因可能為酯化時(shí)間較短,硫酸基對(duì)納豆多糖羥基的取代反應(yīng)不完全;酯化時(shí)間過長,納豆多糖長時(shí)間處于酸性條件下會(huì)被水解,不利于酯化多糖的提取回收。因此,納豆多糖最佳的酯化時(shí)間為2 h。高爽等[15]采用濃硫酸法修飾甜玉米芯多糖,反應(yīng)溫度為30 min,取代度為1.14。多糖樣品與濃硫酸直接接觸,很容易被碳化和降解,反應(yīng)時(shí)間不能太長,氯磺酸–吡啶試劑相對(duì)溫和,反應(yīng)時(shí)間延長才能提高硫酸基取代度。

    圖 4 酯化時(shí)間對(duì)酯化多糖取代度的影響Fig.4 Effect of sulfated time on degree of substitution of sulfated polysaccharides

    2.1.4 酯化溫度對(duì)取代度的影響

    取納豆多糖 0.1 g,在V氯磺酸∶V吡啶為 1∶3、V酯化試劑∶V多糖為 4∶3、酯化時(shí)間為 2 h的條件下,測定酯化溫度對(duì)硫酸化納豆多糖取代度的影響,結(jié)果如圖5所示。

    圖 5 酯化溫度對(duì)酯化多糖取代度的影響Fig.5 Effect of sulfated temperature on degree of substitution of sulfated polysaccharides

    由圖5可知,隨著酯化溫度的升高,酯化納豆多糖的取代度先增加后降低,在溫度60 ℃時(shí)達(dá)到最高。當(dāng)溫度低于60 ℃時(shí),納豆多糖與酯化試劑反應(yīng)速度較慢,原因可能為在一定時(shí)間內(nèi),納豆多糖基團(tuán)中硫酸根離子較少,取代度小,隨著溫度的升高,高分子多糖活性增強(qiáng),反應(yīng)速度加快,取代度逐漸升高;酯化溫度大于60 ℃并且反應(yīng)體系為酸性時(shí),納豆多糖會(huì)被高溫降解,導(dǎo)致酯化納豆多糖回收率低,取代度下降。闞國仕等[16]采用三氧化硫–吡啶法硫酸化修飾胡蘿卜多糖,反應(yīng)溫度為70 ℃時(shí)取代度最高。三氧化硫與吡啶的結(jié)合率比氯磺酸低,升高溫度可以提高硫酸基團(tuán)取代羥基的能量。因此,在氯磺酸–吡啶法中,酯化反應(yīng)的最適溫度較低,為60 ℃。

    2.2 酯化反應(yīng)條件的優(yōu)化

    設(shè)置V氯磺酸∶V吡啶、V酯化試劑∶V納豆多糖、酯化溫度與酯化時(shí)間四因素的正交試驗(yàn)條件,其試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果如表1所示。

    由表 1可知,利用V氯磺酸∶V吡啶、V酯化試劑∶V納豆多糖、酯化溫度與酯化時(shí)間4個(gè)因素進(jìn)行正交優(yōu)化試驗(yàn)得出,各因素影響酯化多糖取代度的主次順序?yàn)轷セ瘯r(shí)間>V氯磺酸:V吡啶>V酯化試劑:V多糖>酯化溫度,即酯化時(shí)間對(duì)取代度的影響最大,其中最佳酯化條件是V氯磺酸∶V吡啶為1∶4、V酯化試劑∶V多糖為4∶3、酯化時(shí)間為 1 h、酯化溫度為 60 ℃,此最適條件不在正交表中,需做驗(yàn)證試驗(yàn)。驗(yàn)證結(jié)果表明,正交試驗(yàn)得出的最佳工藝條件下,酯化多糖的取代度可達(dá)1.613,相比單因素試驗(yàn)最優(yōu)試驗(yàn)結(jié)果,取代度提高了1.19%。陳小紅[17]采用氨基磺酸為改性試劑,對(duì)茯苓多糖進(jìn)行硫酸酯化,經(jīng)過單因素試驗(yàn)與響應(yīng)面試驗(yàn)優(yōu)化得出,酯化溫度為85 ℃、酯化時(shí)間達(dá)4.0 h、氨基磺酸與多糖質(zhì)量比為3.77∶1時(shí),酯化茯苓多糖的取代度為1.041,并且與氯磺酸–吡啶法的結(jié)果相似。證明了氯磺酸–吡啶法在合適的酯化條件下,可以有效地對(duì)多糖進(jìn)行硫酸化改性。

    表 1 正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果Tab.1 Design and results of orthogonal experiment

    2.3 紅外光譜分析

    采用溴化鉀壓片法,測得酯化多糖紅外光譜圖,如圖6所示。

    圖 6 納豆多糖和硫酸酯化多糖的紅外光譜圖Fig.6 Infrared spectra of nattopolysaccharidesand sulphated polysaccharides

    圖6為納豆多糖(P-natto)和硫酸酯化多糖(SP-natto)的紅外光譜圖。在酯化納豆多糖色譜圖中,在3 474.13 /cm處的兩個(gè)吸收峰為O—H及N—H的伸縮振動(dòng)峰,在2 943 /cm處的吸收峰為C—H的伸縮振動(dòng),在1 640.16 /cm處吸收峰是C=O的伸縮振動(dòng),在1 128.15 /cm處的吸收峰是C—O—C的伸縮振動(dòng),以上均為多糖的特征吸收峰。相比納豆多糖的振動(dòng)吸收峰,酯化多糖在1 239 /cm處的吸收為 S=O的伸縮振動(dòng)峰,808.03 /cm處吸收為C—O—S的伸縮振動(dòng)峰,兩者是硫酸酯的特征吸收峰[18],說明納豆多糖經(jīng)硫酸酯化后,硫酸基已與納豆多糖結(jié)合成多糖硫酸酯。

    2.4 酯化多糖的抑菌作用研究

    2.4.1 酯化多糖與納豆多糖對(duì)阪岐桿菌的抑制作用

    分別配制一定濃度的硫酸酯化多糖與納豆多糖,探究相同濃度的兩種多糖對(duì)阪岐桿菌的抑制作用,抑制效果如圖7所示。納豆多糖與酯化多糖隨著濃度的增加,其抑菌圈直徑逐漸變大。質(zhì)量濃度為1 mg/mL時(shí),酯化多糖的抑菌圈直徑小于納豆多糖,說明酯化多糖抑制阪岐桿菌的效果低于納豆多糖;隨著濃度的增高,酯化多糖的抑菌圈直徑均大于納豆多糖,表明了在高濃度條件下,酯化多糖抑制阪岐桿菌的效果將逐漸高于納豆多糖。

    圖 7 酯化多糖和納豆多糖對(duì)阪岐桿菌的抑制作用Fig.7 Inhibition of Bntorobater sakazakii by sulphated polysaccharides and natto polysaccharides

    2.4.2 酯化多糖與納豆多糖對(duì)嗜水氣單胞菌的抑制作用

    在相同濃度下,酯化多糖與納豆多糖對(duì)嗜水氣單胞菌的抑制作用如圖8所示。隨著濃度的增高,硫酸酯化多糖的抑菌圈直徑一直大于納豆多糖,結(jié)果表明,納豆多糖經(jīng)硫酸酯化提高其硫酸根含量后,相同濃度下,酯化多糖對(duì)嗜水氣單胞菌的抑制作用高于納豆多糖。

    圖 8 酯化多糖和納豆多糖對(duì)嗜水氣單胞菌的抑制作用Fig.8 Inhibition of Aeromonas hydrophila by sulphated polysaccharides and natto polysaccharides

    2.4.3 酯化多糖與納豆多糖對(duì)大腸桿菌的抑制作用

    在相同濃度下,酯化多糖與納豆多糖對(duì)大腸桿菌的抑制作用如圖9所示。隨著多糖濃度的增加,酯化多糖和納豆多糖的抑菌圈直徑也在增大,但在1~10 mg/mL的質(zhì)量濃度范圍內(nèi),酯化多糖的抑菌圈直徑小于納豆多糖,當(dāng)多糖質(zhì)量濃度大于10 mg/mL時(shí),兩種多糖的抑菌圈直徑均增大,而酯化多糖增加的幅度更大。結(jié)果表明,酯化多糖和納豆多糖對(duì)大腸桿菌都有抑制作用,但在質(zhì)量濃度在1~10 mg/mL范圍內(nèi),納豆多糖的抑制效果高于納豆多糖;多糖質(zhì)量濃度在15~20 mg/mL中,兩種多糖的抑制效果相似;李公斌[19]探究了黑木耳多糖經(jīng)硫酸酯化后的抑菌功能,研究表明:隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長,對(duì)大腸桿菌的抑制作用為硫酸酯化黑木耳多糖大于黑木耳多糖。本試驗(yàn)的培養(yǎng)時(shí)間為24 h,若培養(yǎng)時(shí)間延長,酯化多糖對(duì)大腸桿菌的抑制效果有可能超越納豆多糖。

    圖 9 酯化多糖和納豆多糖對(duì)大腸桿菌O157的抑制作用Fig.9 Inhibition of Escherichia coli O157 by sulphated polysaccharides and natto polysaccharides

    3 結(jié) 論

    a. 通過單因素試驗(yàn)和正交試驗(yàn)確定了硫酸酯化的最佳工藝條件:V氯磺酸∶V吡啶為1∶4,V酯化試劑∶V納豆多糖為 4∶3,酯化時(shí)間為 1 h,酯化溫度為60 ℃。在此工藝條件下,硫酸化納豆多糖的取代度為1.613。

    b. 紅外光譜結(jié)果證實(shí)了納豆多糖經(jīng)硫酸酯化后,硫酸基已與納豆多糖成功結(jié)合成多糖硫酸酯。

    c. 硫酸化納豆多糖對(duì)阪岐桿菌與嗜水氣單胞菌的抑制作用比納豆多糖高,且呈現(xiàn)劑量依賴性,而對(duì)大腸桿菌的抑制作用接近納豆多糖。

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