孫淑敏,馬衛(wèi)賓,衛(wèi) 敏,李 倩,謝巖黎?
(河南工業(yè)大學(xué)糧油食品學(xué)院,河南省糧油食品安全檢測(cè)與控制重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,河南 鄭州 450001)
玉米赤霉烯酮(Zearalenone,ZEA)是一種由鐮刀菌產(chǎn)生的雌激素類毒素[1],主要污染小麥、玉米等農(nóng)作物原料及其制品,具有較強(qiáng)的生殖毒性、致突變和致畸作用,還能引起雌性激素中毒癥及誘發(fā)腫瘤[2]。因此亟需尋求簡(jiǎn)便高效的食品中ZEA檢測(cè)方法,保障食品安全和消費(fèi)者健康。
常規(guī)的玉米赤霉烯酮快速檢測(cè)方法主要包括酶聯(lián)免疫法和試紙條法[3-4]。但是這些依賴于抗體的免疫學(xué)方法存在抗體制備周期長(zhǎng),成本高,不易保存等缺陷[5]。核酸適體作為一種新型的識(shí)別分子,具有特異性強(qiáng),可人工大量合成,成本低,穩(wěn)定性好等優(yōu)勢(shì)[6]。尤其是對(duì)缺乏抗原的小分子污染物,其比抗體更具有優(yōu)勢(shì)。目前,在真菌毒素領(lǐng)域,主要針對(duì)赭曲霉毒素和黃曲霉毒素,構(gòu)建了一系列基于適配體的電化學(xué)方法、熒光法及比色法[7-9]。其中比色法具有操作簡(jiǎn)便、顯色快速、結(jié)果可視化,具有良好的應(yīng)用前景。納米金因具有高消光系數(shù)、距離依賴效應(yīng)和易合成等特點(diǎn),是比色法中最常用的顯色探針[10]。近幾年,圍繞納米金(AuNPs)開發(fā)了各種各樣的比色檢測(cè)方法,用于食品中農(nóng)藥殘留[11]、抗生素[12]、真菌毒素[13]及病原微生物[14]的快速檢測(cè)。目前,納米金比色法的原理主要有雙鏈 DNA保護(hù)法、單鏈DNA保護(hù)法、正電荷聚合物法、交聯(lián)法以及解交聯(lián)法[15]。其中單鏈 DNA保護(hù)法直接利用單雙鏈DNA與未修飾的納米金之間的靜電吸附能力差異實(shí)現(xiàn)顯色反應(yīng)[16-18],無需進(jìn)行修飾和輔助儀器,簡(jiǎn)單易行。但是,比色法的靈敏度通常低于熒光法和電化學(xué)等傳感方法,因此需要通過信號(hào)放大體系進(jìn)一步提高比色方法的靈敏度。
本研究以未修飾的納米金(AuNPs)為傳感指示劑,玉米赤霉烯酮適配體為信號(hào)識(shí)別元件,銀染技術(shù)為信號(hào)放大策略,開發(fā)了一種新型快速、高靈敏度的玉米赤霉烯酮比色傳感器。該方法可應(yīng)用于谷物和食用油中ZEA的快速檢測(cè),為食品中ZEA的污染控制提供了新的檢測(cè)途徑。
玉米赤霉烯酮適體(5'-GAT GGG GAA AGG GTC CCC CTG GGT TGG AGC ATC GGA CA-3'):生工生物工程(上海)股份有限公司合成;玉米赤霉烯酮標(biāo)準(zhǔn)品(ZEA)、黃曲霉毒素B1標(biāo)準(zhǔn)品(AFB1)、赭曲霉A標(biāo)準(zhǔn)品(OTA):Sigma公司;ZEA酶聯(lián)免疫試劑盒:上??祆`生物科技有限公司;福臨門玉米油、玉米糝、玉米粒:超市購買;實(shí)驗(yàn)所使用水均為超純水。實(shí)驗(yàn)中有機(jī)溶劑均為色譜純,其他實(shí)驗(yàn)材料為分析純。
RT-6000型酶標(biāo)分析儀:深圳雷杜生命科學(xué)股份有限公司;Epoch型微孔板掃描分光光度計(jì):美國伯騰儀器有限公司;HT7700型透射電鏡:日本日立高新有限公司;PHS-3C型酸度計(jì):上海儀電科學(xué)儀器股份有限公司;XMTD-8222型電熱恒溫水浴鍋:上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;UV-6100S型紫外分光光度計(jì):上海美譜達(dá)儀器有限公司。
1.2.1 納米金和銀染液的制備
檸檬酸三鈉還原法制備13 nm粒徑納米金[19]:將HAuCl4配制成1 mmol/L水溶液,取100 mL加熱至沸,攪動(dòng)下準(zhǔn)確加入10 mL 38.8 mmol/L檸檬酸三鈉溶液,加熱煮沸15 min。此時(shí)可觀察到溶液由淡黃色很快變?yōu)榛疑?,轉(zhuǎn)而變?yōu)楹谏饾u穩(wěn)定成紅色。冷卻至室溫后,用超純水恢復(fù)至原體積。將所制備的AuNPs經(jīng)透射電鏡和紫外–可見光譜分析進(jìn)行表征。
參考李向麗等[20]的方法分別配置銀染增強(qiáng)實(shí)驗(yàn)中的引發(fā)液和增強(qiáng)液。引發(fā)液的配制如下:準(zhǔn)確稱量對(duì)苯二酚1.7 g,加入超純水30 mL溶解,與60 mL 1%明膠、10 mL檸檬酸緩沖液(pH 3.5)充分混勻。增強(qiáng)液配制時(shí)準(zhǔn)確稱量硝酸銀0.5 g,加入超純水2 mL溶解。
1.2.2 檢測(cè)原理
ZEA適配體可以通過靜電作用吸附在AuNPs顆粒表面上,使得納米金在高鹽濃度下仍保持分散穩(wěn)定,顯色呈紅色,且由于適配體的保護(hù)作用,納米金無法催化 Ag+還原成單質(zhì)銀,銀染后不會(huì)出現(xiàn)黑色的銀染信號(hào);而加入ZEA后,ZEA適體與ZEA發(fā)生特異性結(jié)合而從納米金表面解吸,在高鹽環(huán)境中AuNPs發(fā)生誘導(dǎo)聚集,顏色由紅色變?yōu)樽仙蛩{(lán)色,而裸露的納米金表面可以催化Ag+還原成單質(zhì)銀而在納米金周圍形成銀染放大信號(hào),因此反應(yīng)體系顏色和吸光度值大小與ZEA的濃度有關(guān)。見圖1。
圖1 納米金比色法檢測(cè)ZEA的原理圖
1.2.3 納米金比色法的可行性研究
為考察納米金比色法的可行性,分別設(shè)置 3組實(shí)驗(yàn),第一組實(shí)驗(yàn)僅在酶標(biāo)板孔中加入100 μL納米金和10 μL NaCl溶液,加入PBS緩沖液使總體積為210 μL;第二組實(shí)驗(yàn)在酶標(biāo)板孔中依次加入100 μL納米金液體和50 μL適體,孵育5 min后加入10 μL NaCl溶液,加入PBS緩沖液使總體積為210 μL;第三組實(shí)驗(yàn)在酶標(biāo)板孔中依次加入100 μL納米金液體和50 μL適體,孵育5 min后加入50 μL濃度 50 ng/mL玉米赤霉烯酮標(biāo)準(zhǔn)品,繼續(xù)孵育5 min,最后加入10 μL NaCl溶液。分別測(cè)定三組溶液在波長(zhǎng)520 nm和650 nm處的吸光度值。
1.2.4 NaCl濃度的優(yōu)化
在酶標(biāo)板孔中加入 50 μL 1 μmol/L 適體和100 μL AuNPs,孵育 5 min 后,加入 50 μL 濃度50 ng/mL玉米赤霉烯酮標(biāo)準(zhǔn)品,繼續(xù)孵育5 min,分別加入濃度為0.1、0.5、1、2、3、4、5 mol/L的NaCl溶液,反應(yīng)5 min后測(cè)定520 nm和650 nm波長(zhǎng)處的吸光度值。
1.2.5 適體濃度的優(yōu)化
在酶標(biāo)板孔中分別加入 50 μL 濃度梯度為0.05、0.1、0.3、0.5、1、3、5 μmol/L 適體和 100 μL AuNPs,孵育5 min后加入50 μL 50 ng/mL玉米赤霉烯酮標(biāo)準(zhǔn)品,孵育5 min后加入5 mol/L的NaCl溶液,反應(yīng)5 min后測(cè)定520 nm和650 nm波長(zhǎng)處的吸光度值。
1.2.6 納米金與適體反應(yīng)時(shí)間的優(yōu)化
在酶標(biāo)板孔中分別加入50 μL 1 μmol/L適體和 100 μL AuNPs,孵育 5 min 加入 50 μL 50 ng/mL玉米赤霉烯酮標(biāo)準(zhǔn)品,繼續(xù)孵育5 min后加入濃度為5 mol/L的NaCl溶液,分別反應(yīng)5、10、20、30、40、50、60 min后測(cè)定520 nm和650 nm波長(zhǎng)處的吸光度值。
1.2.7 玉米赤霉烯酮的檢測(cè)
在酶標(biāo)板孔中加入50 μL 1 μmol/L ZEA適體和100 μL AuNPs,孵育5 min后分別加入50 μL濃度為5、10、50、100、200 ng/mL ZEA標(biāo)準(zhǔn)品,繼續(xù)孵育5 min后加入10μL 5 mol/L NaCl溶液,孵育5 min后測(cè)定520 nm和650 nm波長(zhǎng)處的吸光度值。平行實(shí)驗(yàn)3次。以A650/A520值為縱坐標(biāo),ZEA濃度為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.2.8 方法的特異性分析
在酶標(biāo)板孔中加入 50 μL 1 μmol/L適體和100 μL AuNPs,孵育 5 min 后分別加入 50 μL 的50 ng/mL OTA標(biāo)準(zhǔn)品、50 ng/mL AFB1標(biāo)準(zhǔn)品、50 ng/mL ZEA標(biāo)準(zhǔn)品、10 mmol/L 金屬離子(Ca2+,K+,Cu2+,F(xiàn)e3+),繼續(xù)孵育 5 min 后加入5 mol/L的NaCl溶液,孵育5min后測(cè)定520 nm和650 nm處的吸光度值。
1.2.9 銀染增強(qiáng)實(shí)驗(yàn)
將銀染增強(qiáng)液和引發(fā)液在銀染前 30 min 置于4 ℃儲(chǔ)存,銀染時(shí)取20 μL增強(qiáng)液加入1 mL引發(fā)液中,迅速混勻后立即每孔加入 100 μL反應(yīng),記錄630 nm波長(zhǎng)處的吸光度值。銀染增強(qiáng)過程在避光或弱光下進(jìn)行。實(shí)驗(yàn)中考察銀染時(shí)間對(duì)顯色結(jié)果的影響。
1.2.10 樣品檢測(cè)驗(yàn)證
根據(jù)國標(biāo) GB/T 23504—2009中糧食及糧食制品的處理方法,對(duì)市售玉米處理,得到濾液為實(shí)際樣品液;根據(jù)孟衛(wèi)芹[21]對(duì)玉米油的處理方法,得到濾液為實(shí)際樣品液。在最優(yōu)檢測(cè)條件下,分別對(duì)加標(biāo)濃度為10、50和100 ng/mL的玉米油和玉米樣品進(jìn)行檢測(cè)。記錄吸光度值,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線的理論值計(jì)算回收率,檢驗(yàn)納米金比色法對(duì)實(shí)際樣品檢測(cè)的可行性。
從圖2a可知,制備出的納米金粒子的粒徑大小較為一致,粒徑大小約為 13 nm,成均勻分散的球形,其在波長(zhǎng)520 nm處產(chǎn)生了最高吸收峰,溶液呈紅色。而在加入高濃度鹽溶液后(圖2b),AuNPs變成了團(tuán)聚狀態(tài),溶液顏色為紫藍(lán)色。其最大吸收波長(zhǎng)紅移至650 nm左右。
圖2 不同狀態(tài)下納米金粒子的TEM圖.(a)納米金;(b)高鹽環(huán)境下的納米金
由圖3可發(fā)現(xiàn),在高鹽環(huán)境中,納米金在ZEA適體的保護(hù)下免于聚集,體系的吸光度和顏色均未發(fā)生明顯變化,而在加入ZEA后,ZEA適體與ZEA的特異性結(jié)合使納米金暴露在高鹽溶液下,發(fā)生聚集反應(yīng),體系吸收波長(zhǎng)發(fā)生紅移,顏色變?yōu)樽仙?,初步?yàn)證了納米金比色法對(duì)ZEA檢測(cè)的可行性。
圖3 不同反應(yīng)體系的紫外吸收光譜圖及可視化結(jié)果
在納米金鹽聚誘導(dǎo)比色反應(yīng)中,主要優(yōu)化了NaCl的濃度、ZEA適體的濃度以及比色反應(yīng)時(shí)間。NaCl濃度的大小與該反應(yīng)中納米金聚集變色有著直接的作用。如圖4a所示,當(dāng)NaCl的濃度在0~1 mol/L時(shí),反應(yīng)體系的出峰位置和峰強(qiáng)度沒有改變。當(dāng)NaCl的濃度2 mol/L,特征峰右移,且反應(yīng)體系變?yōu)樽仙?,隨著濃度的增加,反應(yīng)體系的出峰位置在600~650 nm,體系顏色由紫色變?yōu)樗{(lán)色??梢?,當(dāng) NaCl濃度較小時(shí),不足以使未被保護(hù)的納米金聚集,當(dāng)NaCl濃度為2 mol/L時(shí),體系顏色由紅色變?yōu)樽仙?,說明部分納米金開始發(fā)生團(tuán)聚,隨著其濃度的增加,團(tuán)聚現(xiàn)象越為顯著,NaCl濃度為5 mol/L時(shí),說明聚集反應(yīng)已完全,較高的濃度范圍已經(jīng)超出了適體對(duì)納米金的保護(hù)能力,所以NaCl的最優(yōu)濃度為 2 mol/L。
適體的濃度是此實(shí)驗(yàn)的關(guān)鍵因素,適體濃度要保證高于靶物濃度以達(dá)到完全與靶物反應(yīng)的目的,剩余的適體可保護(hù)納米金在高鹽溶液下部分聚集。因此適體濃度不能較低,否則不能完全特異性結(jié)合靶物,納米金則在體系中完全聚集;也不能完全過量,否則在與靶物結(jié)合的基礎(chǔ)上,剩余的適體足夠保護(hù)納米金,使反應(yīng)體系無顏色變化。如圖4b所示,當(dāng)反應(yīng)體系中未加靶物時(shí),適體濃度較小則不足以保護(hù)納米金,使大部分納米金在高鹽溶液下聚集,當(dāng)適體濃度為3、5 μmol/L時(shí),其出峰位置在520 nm處,峰強(qiáng)度相近,且體系顏色為紅色;適體濃度為1 μmol/L時(shí),特征峰位置仍在520 nm處,峰強(qiáng)度相對(duì)降低;當(dāng)適體濃度小于 1 μmol/L時(shí),特征峰右移,適體濃度為0.1 μmol/L時(shí),520 nm處峰消失且在650 nm處出現(xiàn)新的特征峰。所以,適體濃度不應(yīng)小于1 μmol/L。當(dāng)反應(yīng)體系加入靶物后,反應(yīng)體系按照實(shí)驗(yàn)原理應(yīng)發(fā)生顏色的變化,即適體濃度不宜完全過量。根據(jù)圖4c結(jié)果可知,當(dāng)適體濃度為3、5 μmol/L時(shí),其出峰位置在520 nm處,峰強(qiáng)度相近,且體系顏色為紅色,說明適體已完全過量;適體濃度為1 μmol/L時(shí),其特征峰右移,體系顏色為紫色。所以適體最優(yōu)濃度為1 μmol/L。
如圖 4d所示,當(dāng)反應(yīng)時(shí)間為 5 min時(shí),A650/A520的比值最大,當(dāng)時(shí)間小于5 min時(shí),體系反應(yīng)還未完成,隨著反應(yīng)時(shí)間的增加,反應(yīng)體系處于降解狀態(tài),反應(yīng)體系顏色逐漸變淺。所以,最佳反應(yīng)時(shí)間為5 min。
在前述優(yōu)化條件下,用納米金比色法測(cè)定不同濃度的 ZEA,得到了 ZEA標(biāo)準(zhǔn)液濃度與A650/A520比值的線性關(guān)系。如圖5a所示,在線性范圍 5~200 ng/mL內(nèi),得到線性回歸方程y=0.249 3+0.000 4CZEA(R2=0.982 1),其最低檢測(cè)限為5 ng/mL。由圖5b可知,在最優(yōu)實(shí)驗(yàn)條件下分別檢測(cè)ZEA和其他干擾物,僅有加入ZEA的體系溶液由紅色變?yōu)樽仙銩650/A520顯著高于其他干擾物,表明該檢測(cè)方法特異性良好。
圖5 不同濃度ZEA與A650/A520比值的線性關(guān)系(a)及特異性分析(b)
如圖6所示,當(dāng)時(shí)間小于6 min時(shí),ΔG(A630樣-A630空白)急劇增加,在此時(shí)Ag+在納米金表面被大量還原成Ag單質(zhì);當(dāng)反應(yīng)時(shí)間為6 min時(shí),ΔG的值最大,此時(shí)反應(yīng)速率達(dá)到最大;隨著反應(yīng)時(shí)間的增加,AgNO3自身氧化成核,反應(yīng)體系處于降解狀態(tài),顏色逐漸變淺。所以,最佳銀染時(shí)間為6 min。
圖6 銀染時(shí)間優(yōu)化
在最優(yōu)銀染條件下,獲得不同ZEA濃度與銀染后溶液吸光度值的線性關(guān)系。如圖7所示,當(dāng)ZEA濃度為0.1~20 ng /mL時(shí),其濃度–吸光度線性回歸方程為y=0.054 3x+0.869 5(R2=0.981 9),回歸線性較好,最低檢測(cè)限為0.1 ng/mL。與銀染之前的最低檢出限5 ng/mL相比,靈敏度提高了50倍。
圖7 不同濃度ZEA與銀染吸光度值的線性關(guān)系
分別利用本實(shí)驗(yàn)建立的方法和酶聯(lián)免疫法對(duì)加標(biāo)濃度為10、50和100 ng/mL的玉米油和玉米樣品進(jìn)行檢測(cè)。結(jié)果如表1所示,利用建立的方法測(cè)定實(shí)際樣品的回收率為81.23%~116.16%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)為 4.72%~7.65%,與酶聯(lián)免疫法測(cè)定的結(jié)果基本一致,表明該方法對(duì)實(shí)際樣品檢測(cè)是可行的。
表1 實(shí)際樣品中ZEA的加標(biāo)回收率(n=3)
探究基于核酸適體技術(shù)–納米金比色建立ZEA可視化的快速檢測(cè)方法。在最優(yōu)實(shí)驗(yàn)條件下,ZEA濃度在5~200 ng/mL范圍內(nèi)與體系的吸光度值呈良好的線性關(guān)系,最低檢測(cè)限為 5 ng/mL,且方法特異性良好。進(jìn)一步通過銀染作用將該方法的靈敏度提高了50倍。通過對(duì)實(shí)際樣品進(jìn)行檢測(cè),其加標(biāo)回收率較好,成功的建立了一種簡(jiǎn)便、經(jīng)濟(jì)、結(jié)果可視化的ZEA檢測(cè)新方法。
備注:本文的彩色圖表可從本刊官網(wǎng)(http://lyspkj.ijournal.cn/ch/index.axpx)、中國知網(wǎng)、萬方、維普、超星等數(shù)據(jù)庫下載獲取。