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    碳酸鈣和根際作用對(duì)酸性紅壤解磷微生物豐度的影響①

    2020-10-05 07:30:38鄭曼曼沈仁芳
    土壤 2020年4期
    關(guān)鍵詞:解磷拷貝數(shù)磷酸酶

    鄭曼曼,王 超,沈仁芳

    (1 土壤與農(nóng)業(yè)可持續(xù)發(fā)展國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室(中國科學(xué)院南京土壤研究所),南京 210008;2 中國科學(xué)院大學(xué),北京 100049)

    在中國,酸性土壤(pH<5.5)總面積約2.18 億km2,主要分布在南方熱帶和亞熱帶地區(qū)[1]。酸性土壤中,磷缺乏是限制農(nóng)業(yè)發(fā)展的主要因素之一,在酸性紅壤區(qū)尤為明顯[2]。盡管土壤中存在大量的磷,但是植物能夠吸收利用的有效磷比例卻很低[3],主要?dú)w因于酸性土壤中磷極易與Fe3+和Al3+結(jié)合形成難溶態(tài)磷酸鹽,以及被固定到有機(jī)物中[4]。提高土壤磷庫中難溶性磷素的活化利用是節(jié)約磷肥資源和提高酸性土壤生產(chǎn)潛力的重要途徑。解磷微生物作為土壤生態(tài)系統(tǒng)中的重要組成部分,是土壤難溶性磷活化和形態(tài)轉(zhuǎn)化的主要驅(qū)動(dòng)者[5-6]。發(fā)揮解磷微生物功能是緩解土壤缺磷的一個(gè)有效途徑[3]。通過分泌磷酸酶,降解植酸鹽、磷脂等含磷有機(jī)化合物,釋放可溶性磷酸鹽是土壤解磷微生物的一個(gè)重要功能[7]。磷酸酶活性是反映土壤有機(jī)磷礦化潛力的一個(gè)重要指標(biāo),根據(jù)其最適pH 分為酸性磷酸酶(ACP)和堿性磷酸酶(ALP)[8]。ACP 和ALP 是非特異性磷酸水解酶,能夠水解許多正磷酸單酯(植酸除外)以獲取正磷酸鹽[9]。目前已經(jīng)克隆出了編碼ACP 的基因phoC[10]和編碼ALP 的基因phoD[11]。這些解磷微生物功能基因的克隆為檢測環(huán)境中解磷菌種類、豐度、分布狀況和群落結(jié)構(gòu)組成提供了有效手段。

    一些農(nóng)藝措施,比如碳酸鈣廣泛應(yīng)用于酸性土壤改良[12]。施用碳酸鈣能夠顯著降低土壤酸度[13],增加作物產(chǎn)量[14]。Wang 等[13]研究表明,酸性土壤中添加碳酸鈣能夠顯著增加細(xì)菌16S rRNA 基因豐度,主要原因是碳酸鈣降低了土壤酸毒害和鋁毒害水平。Acosta-Martínez 和Tabatabai[15]指出碳酸鈣施用可增加微生物數(shù)量和多樣性及土壤酶活性。在土壤-植物系統(tǒng)中,碳酸鈣還通過改善植物生長和根際環(huán)境,間接影響根際微生物。植物根際環(huán)境變化可影響微生物功能、豐度和群落組成[16]。然而,碳酸鈣添加對(duì)酸性土壤中解磷微生物,特別是對(duì)作物根際解磷微生物的影響還關(guān)注較少。

    鑒于解磷微生物在土壤磷轉(zhuǎn)化和有效性方面的重要作用,本研究通過設(shè)置碳酸鈣添加試驗(yàn),分析酸性土壤中玉米根際和非根際磷酸酶活性及phoC和phoD基因豐度,并探究它們與土壤理化性質(zhì)的相關(guān)性,以期闡明碳酸鈣和根際作用對(duì)酸性紅壤磷酸酶活性和解磷微生物豐度的影響。

    1 材料方法

    1.1 試驗(yàn)材料和設(shè)計(jì)

    盆栽試驗(yàn)所用酸性紅壤采自江西省鷹潭市農(nóng)田,土壤基本理化性質(zhì)為pH 4.38,有機(jī)質(zhì) 16.79 g/kg,全氮 0.58 g/kg,全磷 0.39 g/kg,全鉀 10.62 g/kg,有效磷 6.37 mg/kg。試驗(yàn)時(shí)每盆裝土1.50 kg,并施用0.20 g/kg磷酸二氫鉀和0.50 g/kg硫酸銨作為基肥。試驗(yàn)設(shè)置了不添加碳酸鈣(CK)、每千克土添加0.3 g碳酸鈣(Ca-0.3)和0.5 g 碳酸鈣(Ca-0.5)3 個(gè)碳酸鈣水平處理,同時(shí)設(shè)置了各處理未種植物的對(duì)照(作為非根際土壤)。每個(gè)處理設(shè)置3 個(gè)重復(fù)。試驗(yàn)在人工氣候生長室進(jìn)行,光照 14 h(30℃),光照強(qiáng)度為400 μmol/(m2·s),黑暗10 h(25℃),相對(duì)濕度為65%。玉米品種鄭單958 為試驗(yàn)材料,種植植物處理每盆播種10 粒玉米種子,土壤含水量保持在20%(w/w)。玉米地上部長到1 cm 時(shí)間苗,每盆定植3 棵幼苗。自間苗之日起,進(jìn)行為期3 周的培養(yǎng)。

    1.2 植物樣品采集和元素測定

    收獲時(shí)測量玉米株高,玉米樣品分別收集根系和地上部,用蒸餾水沖洗后于105℃殺青,隨后70℃烘干至恒重,稱重。地上部樣品粉碎,經(jīng)H2SO4-H2O2消煮后用凱氏定氮儀(Hanon K9860)測定氮含量;經(jīng)HNO3消煮后,用ICP-AES(IRIS-Advantage,Thermo Elemental,MA,USA)檢測磷、鉀和鈣元素含量。

    1.3 土壤樣品采集和土壤理化性質(zhì)測定

    采用抖根法收集根際土壤,未種植玉米的土壤為非根際土。土壤樣品采集后分3 份保存:用于提取DNA 的土壤樣品放置于 -20℃ 冰箱;用于測定土壤磷酸酶活性的土壤放置于4℃冰箱;其余土壤經(jīng)風(fēng)干、研磨后用于測定土壤理化性質(zhì)。土壤pH 按照土水質(zhì)量比1∶2.5 振蕩后,用pH 計(jì)測定;土壤全碳(TC)和全氮(TN)采用CNS 元素分析儀測定;土壤銨態(tài)氮(NH-N)和硝態(tài)氮(NO-N)采用氯化鉀浸提-流動(dòng)分析儀法測定;土壤中全磷(TP)、全鉀(TK)、有效磷(AP)、速效鉀(AK)、交換性鈣(ECa)測定方法詳見《土壤農(nóng)業(yè)化學(xué)分析方法》[17]。土壤酸性磷酸酶(ACP)和堿性磷酸酶(ALP)活性測定參照Tabatabai[18]描述的方法。

    1.4 土壤DNA 提取和基因豐度測定

    采用DNA 試劑盒(FastDNA SPIN Kit for soil)提取土壤DNA。解磷微生物功能基因phoC和phoD擴(kuò)增的通用引物分別為phoc-A-F1(5′-CGGCTCCT ATCCGTCCGG-3′)/phoc-A-R1(5′-CAACATCGCTTT GCCAGTG-3′)[10]和ALPS-F730(5′-CAGTGGGACGA CCACGAGGT-3′)/ALPS-R1101(5′-GAGGCCGATCG GCATGTCG-3′)[11]?;蜇S度采用LightCycler 480 實(shí)時(shí)PCR 系統(tǒng)(Roche Diagnostics,Mannheim,Germany)測定。實(shí)時(shí)熒光定量PCR(qPCR)反應(yīng)體系為10 μl,包含1 μl DNA 溶液、0.4 μl 正向引物、0.4 μl反向引物、5 μl SYBR Premix ExTaq(Takara Bio,Inc.,Janpan)和3.2 μl 滅菌水。反應(yīng)條件如下:95 ℃ 30 s,58 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,40 個(gè)循環(huán)。為了獲得標(biāo)準(zhǔn)曲線,目的基因phoC和phoD片段分別連接到pMD19-T 載體(Takara,Dalian,China)上,并用Escherichia coliDH5α 完成轉(zhuǎn)化。經(jīng)篩選、測序驗(yàn)證后,采用質(zhì)粒提取試劑盒(Takara,Dalian,China)提取質(zhì)粒。將質(zhì)粒用ddH2O 進(jìn)行10 倍梯度稀釋,用于制備標(biāo)準(zhǔn)曲線。基因phoC和phoD的PCR 擴(kuò)增效率分別為98.2%(R2= 0.99)和105.5%(R2= 0.98)。

    1.5 數(shù)據(jù)處理與統(tǒng)計(jì)分析

    數(shù)據(jù)處理采用Microsoft Excel 2007,統(tǒng)計(jì)分析使用軟件 SPSS20.0。根際與非根際之間顯著性差異采用T 檢驗(yàn);不同處理之間顯著性差異采用Duncan 檢驗(yàn);相關(guān)性分析采用Pearson 分析。作圖使用軟件SigmaPlot 10.0。

    2 結(jié)果

    2.1 碳酸鈣對(duì)玉米生長和土壤理化性質(zhì)的影響

    Ca-0.3 和Ca-0.5 處理下玉米株高和生物量均顯著高于CK,并顯著增加了地上部氮、磷、鉀和鈣的吸收量(表1)。碳酸鈣添加顯著提高非根際土壤pH和NO-N、AP、ECa 含量,但降低NH-N 含量(表2)。碳酸鈣添加顯著提高根際土壤NO-N、AP、ECa含量,但顯著降低NH-N 和AK 含量。根際土壤中TC 和NO-N 含量顯著高于非根際土壤,但土壤pH和NH-N、AK、ECa 含量顯著低于非根際土壤。

    表1 碳酸鈣處理下玉米生長性狀及地上部元素含量Table 1 Maize growth characteristics and N, P, K, Ca contents in maize shoots under CaCO3 treatments

    表2 碳酸鈣處理下根際和非根際土壤理化性質(zhì)Table 2 Physicochemical properties of non-rhizosphere and rhizosphere soils under CaCO3 treatments

    2.2 酸性磷酸酶和堿性磷酸酶活性

    在CK、Ca-0.3 和Ca-0.5 處理樣品中非根際土壤ACP 活性(單位:pNP,mg/(kg·h))分別為63.79 ± 4.42、63.05 ± 4.87 和57.09 ± 3.69,明顯低于根際土壤(分別為81.46 ± 3.50、80.73 ± 7.58 和71.01 ± 9.09),且在CK 和Ca-0.3 處理中差異達(dá)顯著水平(P<0.01 或P<0.05)(圖1A)。然而,非根際或根際土壤ACP 活性在不同碳酸鈣處理間均無顯著差異(圖1A)。非根際土壤ALP 活性隨碳酸鈣用量的增加而增加,且Ca-0.5 處理顯著高于前兩個(gè)碳酸鈣處理(圖1B),但在根際土壤中各碳酸鈣處理間無顯著影響。各碳酸鈣處理根際土壤ALP 活性均顯著高于非根際土壤(P<0.01 或P<0.05)(圖1B)。

    圖1 碳酸鈣處理下根際和非根際土壤ACP(A)和ALP(B)活性Fig. 1 Activities of ACP (A) and ALP (B) of non-rhizosphere and rhizosphere soils under CaCO3 treatments

    2.3 解磷微生物功能基因phoC 和phoD 拷貝數(shù)

    碳酸鈣添加未顯著影響根際和非根際土壤phoC基因拷貝數(shù)(圖 2A)。雖然根際作用增加了phoC基因拷貝數(shù),但是統(tǒng)計(jì)上差異未達(dá)到顯著水平。圖2B 顯示,phoD基因拷貝數(shù)隨碳酸鈣用量的增加而增加,Ca-0.5 處理顯著高于CK。3 個(gè)碳酸鈣處理根際土壤phoD基因拷貝數(shù)均顯著高于非根際土壤(P<0.01)。線性回歸分析表明,ACP 活性與phoC基因拷貝數(shù)在非根際(P<0.01)和根際(P<0.05)土壤中均呈顯著正相關(guān)(圖3A)。ALP 活性與phoD基因拷貝數(shù)相關(guān)性在根際土壤中達(dá)到顯著水平(P<0.05)(圖3B)。

    圖2 碳酸鈣處理下非根際和根際土壤phoC(A)和phoD(B)基因拷貝數(shù)Fig. 2 phoC (A) and phoD (B) gene copy numbers of non-rhizosphere and rhizosphere soils under CaCO3 treatments

    圖3 土壤磷酸酶活性與phoC(A)和phoD(B)基因拷貝數(shù)相關(guān)性Fig. 3 Correlations between soil phosphate activities and phoC (A) and phoD (B) genes copy numbers

    2.4 土壤磷酸酶活性和基因拷貝數(shù)與土壤理化性質(zhì)的相關(guān)性

    非根際土壤中,ACP 活性與TK 呈顯著負(fù)相關(guān),而phoC基因拷貝數(shù)與NH-N、TP 含量呈顯著正相關(guān);ALP 活性與土壤pH、ECa 含量呈顯著正相關(guān),與NH-N 含量呈顯著負(fù)相關(guān),而phoD基因拷貝數(shù)與NO-N、ECa 含量呈顯著正相關(guān)(表3)。根際土壤中,phoC基因拷貝數(shù)與NO-N 含量呈顯著負(fù)相關(guān),phoD基因拷貝數(shù)與pH 及AP、ECa 含量均呈顯著正相關(guān),而與NH-N 含量呈顯著負(fù)相關(guān)(表3)。

    表3 土壤中磷酸酶活性、phoC 和phoD 基因拷貝數(shù)與土壤理化性質(zhì)的Pearson 相關(guān)分析Table 3 Pearson correlations between phosphate activities, phoC, phoD gene copy numbers and soil physicochemical properties

    3 討論

    土壤酶參與養(yǎng)分循環(huán),并反映土壤微生物活動(dòng)[8]。解磷微生物能夠通過分泌磷酸酶參與土壤有機(jī)磷礦化,提高土壤磷素有效性。Acosta-Martínez 和Tabatabai[15]研究表明碳酸鈣施用顯著增加土壤pH 和ALP 活性,但是降低ACP 活性。類似地,本研究中碳酸鈣添加顯著提高土壤ALP 活性和phoD基因拷貝數(shù),表現(xiàn)出降低ACP 活性和phoC基因拷貝數(shù)的趨勢(圖1 和圖2),這可能與碳酸鈣對(duì)土壤pH 的提高作用有關(guān)。兩種磷酸酶產(chǎn)生主要取決于外界環(huán)境pH,ACP 在酸性土壤中較多,而中性或堿性土壤中ALP 較為常見[19]。非根際土壤ACP 和ALP 活性分別與pH 呈負(fù)相關(guān)和正相關(guān)(表3),充分證明這個(gè)結(jié)果。與Dick 等[8]研究一致,酸性土壤ACP 活性顯著高于ALP(圖1),表明酸性土壤中ACP 在礦化有機(jī)磷方面起主導(dǎo)作用。

    土壤酶活性對(duì)土壤管理引起的土壤理化性質(zhì)變化很敏感,并且不同類型酶的敏感程度存在明顯差異[20]。本研究中,碳酸鈣添加顯著影響非根際土壤ALP 及非根際和根際土壤phoD基因拷貝數(shù)(圖1B 和2B),但對(duì)ACP 活性和phoC基因拷貝數(shù)影響不顯著(圖1A 和2A)。Acosta-Martínez 和Tabatabai[15]發(fā)現(xiàn)土壤ALP 活性相較于ACP 更易受碳酸鈣的影響。磷酸酶活性和基因拷貝數(shù)與土壤理化性質(zhì)間相關(guān)分析也表明,ALP 活性與phoD基因拷貝數(shù)更易受土壤理化因子的影響(表3),因此,ACP 和ALP 對(duì)碳酸鈣的響應(yīng)差異也支持了先前研究。磷酸酶是一類誘導(dǎo)酶,磷缺乏能夠誘導(dǎo)植物根系和微生物分泌磷酸酶和促進(jìn)磷酸酶活性增加,而磷酸酶的形態(tài)又與土壤pH 密切相關(guān)[8-9]。ALP 對(duì)碳酸鈣響應(yīng)強(qiáng)于ACP,證明碳酸鈣能夠促進(jìn)土壤微生物生長,尤其是phoD基因相關(guān)的微生物種類。這可能歸因于ALP 并不來自于植物,僅由微生物分泌[9]。此外,楊艷菊等[21]報(bào)道土壤中鈣離子含量顯著影響解磷微生物的生長。本研究發(fā)現(xiàn)非根際ALP 活性和phoD基因拷貝數(shù)與ECa 含量呈顯著正相關(guān),這也部分解釋了ALP 活性與phoD基因拷貝數(shù)對(duì)碳酸鈣響應(yīng)強(qiáng)于ACP 活性和phoC基因拷貝數(shù)。此外,Zaheer 等[22]研究表明,鈣離子能夠激發(fā)ALP 活性,添加鈣離子(0.5 ~ 2.0 mmol/L)能夠使ALP 活性提升約2.5 倍。鈣離子的存在在很大程度上保護(hù)ALP 免受其他金屬離子的抑制作用,說明磷酸酶對(duì)鈣離子有較高的親和力。

    根際是植物能量和物質(zhì)代謝最活躍的區(qū)域。植物根系釋放的各種分泌物可以選擇性地刺激微生物種群生長,因此,根際土壤形成了獨(dú)特的微生物群落[23-24]。在各種環(huán)境條件下,已經(jīng)廣泛報(bào)道了根際土壤微生物豐度和活性遠(yuǎn)高于非根際土壤[13,25],其中解磷微生物的分布表現(xiàn)出強(qiáng)烈的根際效應(yīng)[26]。植物生長引起根系分泌物增加和養(yǎng)分吸收增強(qiáng)能夠刺激根際微生物的解磷功能[10,27]。在本研究所有處理中根際土壤phoC、phoD基因拷貝數(shù)和磷酸酶活性均高于非根際土壤,尤其是phoD基因拷貝數(shù)和ALP 活性(圖1 和圖2),表明根際土壤具有較高的解磷微生物活性,并對(duì)磷酸酶活性有促進(jìn)作用。這強(qiáng)烈地暗示根際區(qū)域可能存在更高水平的生物解磷作用。

    4 結(jié)論

    綜上所述,ACP 在酸性土壤有機(jī)磷礦化方面強(qiáng)于ALP,其活性不易受碳酸鈣處理的影響。雖然碳酸鈣和根際效應(yīng)均影響解磷微生物功能和豐度,但是根際效應(yīng)更為強(qiáng)烈,主要表現(xiàn)在增加了磷酸酶活性和phoD基因豐度。因此,調(diào)控作物生長對(duì)促進(jìn)酸性土壤解磷微生物功能具有重要指導(dǎo)意義。

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