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    抗犬細(xì)小病毒單克隆抗體的制備與鑒定

    2020-09-27 02:56:58楊凱越宋彩玲李彤彤王文靜陳慧宇趙爽爽劉明
    畜牧與獸醫(yī) 2020年10期
    關(guān)鍵詞:雜交瘤單克隆效價

    楊凱越,宋彩玲,李彤彤,王文靜,陳慧宇,趙爽爽,劉明

    (中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院哈爾濱獸醫(yī)研究所/獸醫(yī)生物技術(shù)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,黑龍江 哈爾濱 150069)

    犬細(xì)小病毒(canine parvovirus,CPV)屬于細(xì)小病毒科細(xì)小病毒屬成員,是引起幼犬嚴(yán)重腸胃炎的主要病原之一,特別是沒有免疫的幼犬或者沒有母源抗體的幼犬更易感染犬細(xì)小病毒病[1-2]。該病毒在1977年首次從患有出血性腸炎的病犬糞便中觀察到,1978年便從患有腸炎的病犬體內(nèi)分離得到,隨后在世界各地的犬科動物中相繼被發(fā)現(xiàn)[3-4]。病犬以劇烈嘔吐、腹瀉、白細(xì)胞顯著減少為主要特征,且該病一年四季均可發(fā)生[5]。

    犬細(xì)小病毒病自暴發(fā)以來,因其高致病率和高死亡率,給養(yǎng)犬業(yè)、經(jīng)濟(jì)動物養(yǎng)殖業(yè)造成了嚴(yán)重的影響,也危害了野生動物的生存,因此開展對CPV感染診斷防治方面的研究至關(guān)重要。單克隆抗體(monoclonal antibodies,MAb)因其高特異性和高均一性已經(jīng)在疾病的診斷和治療中被廣泛應(yīng)用[6-7]??笴PV 的MAb已成為治療和診斷犬細(xì)小病毒病的主要工具之一。本試驗(yàn)制備了抗CPV MAb,并對獲得的MAb進(jìn)行了效價、中和活性和亞類方面的鑒定,篩選到了3株效價較高、特異性較好的雜交瘤細(xì)胞株,為犬細(xì)小病毒病的診斷、治療及后續(xù)研究奠定了基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 主要材料

    毒株CPV-YN由本實(shí)驗(yàn)室分離鑒定,pCI-NS和pCI-VP1表達(dá)質(zhì)粒由本實(shí)驗(yàn)室構(gòu)建,SP2/0骨髓瘤細(xì)胞和F81細(xì)胞由本實(shí)驗(yàn)室保存;DMEM培養(yǎng)基、完全弗氏佐劑、不完全弗氏佐劑、HAT、HT、50% PEG、山羊抗小鼠IgG-FITC和辣根過氧化物酶標(biāo)記山羊抗小鼠IgG(IgG-HRP)均購自Sigma公司;CPV單克隆抗體購自北京金百奧生物技術(shù)有限公司;胎牛血清購自BIOCHROM公司;NAbTM純化柱購自GE公司;6~8周齡SPF BALB/c小鼠購自北京維通利華試驗(yàn)動物技術(shù)有限公司。

    1.2 動物免疫

    將CPV接種于生長狀態(tài)良好的F81細(xì)胞,進(jìn)行CPV的擴(kuò)增培養(yǎng),4~5 d當(dāng)細(xì)胞病變(CPE)達(dá)到80%時收取細(xì)胞培養(yǎng)上清病毒液并將其反復(fù)凍融3次。將收取的500 mL病毒液通過超速離心濃縮到5 mL,作為免疫小鼠的免疫原。

    初次免疫為CPV與完全弗氏佐劑等量混合乳化,腹腔注射0.2 mL/只。二免、三免為CPV與不完全弗氏佐劑乳化,劑量與初次免疫劑量相同,時間間隔2周,三免7 d后斷尾采血,采用間接ELISA檢測小鼠血清效價。將效價高的小鼠融合前3 d用CPV腹腔注射0.2 mL/只加強(qiáng)免疫。

    1.3 間接ELISA篩選方法的建立

    以純化濃縮的CPV作為包被抗原,未免疫小鼠血清作為陰性對照,免疫小鼠血清作為陽性對照,優(yōu)化間接ELISA反應(yīng)條件,建立間接ELISA篩選方法。

    1.4 細(xì)胞融合與培養(yǎng)

    取加強(qiáng)免疫后小鼠的脾細(xì)胞與SP2/0細(xì)胞在50% PEG的作用下進(jìn)行細(xì)胞融合,融合后接種于飼養(yǎng)層細(xì)胞中,在37 ℃、5% CO2的條件下用HAT培養(yǎng)基進(jìn)行選擇性培養(yǎng)。

    1.5 陽性雜交瘤細(xì)胞的篩選及亞克隆

    利用間接ELISA方法篩選陽性雜交瘤細(xì)胞,有限稀釋法對陽性雜交瘤細(xì)胞進(jìn)行克隆化培養(yǎng),直至能篩選到穩(wěn)定分泌抗體的雜交瘤細(xì)胞株,將其擴(kuò)大培養(yǎng)并凍存。

    1.6 MAb腹水制備及抗體純化

    將滅菌石蠟油以0.5 mL/只的劑量注射10周齡雌性BALB/c小鼠,7 d后腹腔注射陽性雜交瘤細(xì)胞約5×106個,待小鼠腹腔明顯脹大后收集腹水,離心收集上清,采用親和層析方法純化腹水,SDS-PAGE鑒定純化抗體純度。

    1.7 MAb的中和活性鑒定

    將病毒濃度稀釋到200TCID50,與3株單抗倍比稀釋的腹水、細(xì)胞上清等體積混合,37 ℃、5% CO2的條件下孵育1 h,然后接種F81細(xì)胞,100 μL/孔,做4個平行重復(fù),同時設(shè)置只加培養(yǎng)基、只加病毒液的細(xì)胞孔作為陰性對照和陽性對照,培養(yǎng)4~5 d觀察細(xì)胞的CPE情況,檢測MAb的中和活性。

    1.8 MAb的鑒定

    1.8.1 效價的測定

    采用間接ELISA方法分別測定雜交瘤細(xì)胞上清、單克隆抗體腹水的抗體效價。

    1.8.2 染色體數(shù)目的測定

    在對數(shù)生長的雜交瘤細(xì)胞中加入秋水仙素溶液,使其終濃度為0.4 μg/mL,37 ℃培養(yǎng)4~6 h,離心棄上清,0.075 mol/L KCl低滲處理細(xì)胞30 min,經(jīng)固定液(甲醇∶冰醋酸=3∶1)反復(fù)固定離心后,留取0.5~1 mL固定液重懸細(xì)胞,將細(xì)胞懸液滴在預(yù)冷載玻片上,10% Giemsa染液染色,鏡檢進(jìn)行染色體計(jì)數(shù)。

    1.8.3 亞型鑒定

    按照免疫球蛋白分型檢測試劑盒說明書進(jìn)行MAb亞類測定。

    1.8.4 間接免疫熒光鑒定(IFA)

    將CPV接種至單層F81細(xì)胞中,37 ℃培養(yǎng)24 h,經(jīng)甲醛固定細(xì)胞,Triton X-100處理后,加入單克隆抗體腹水(1∶1 000)37 ℃孵育1 h,洗滌后加入山羊抗小鼠FITC-IgG(1∶250)37 ℃避光孵育2 h。同時設(shè)立未接種CPV的細(xì)胞作為陰性對照,以商品化CPV單克隆抗體孵育接種CPV的細(xì)胞當(dāng)作陽性對照,熒光顯微鏡觀察試驗(yàn)結(jié)果。

    1.8.5 MAb抗病毒蛋白的鑒定

    將本實(shí)驗(yàn)室構(gòu)建的pCI-NS和pCI-VP1表達(dá)質(zhì)粒分別轉(zhuǎn)染F81細(xì)胞,37 ℃、5% CO2的條件下培養(yǎng)24 h,以1D9、3G9和4F6的細(xì)胞培養(yǎng)上清作為一抗,山羊抗小鼠FITC-IgG作為二抗進(jìn)行IFA檢測,同時設(shè)立以轉(zhuǎn)染空載體pCI-Neo的細(xì)胞孔作為陰性對照,測定雜交瘤細(xì)胞株具體識別的CPV蛋白種類。

    1.8.6 交叉反應(yīng)性分析

    將犬瘟熱病毒(CDV)、犬冠狀病毒(CCV)、犬腺病毒2型(CAV2)和CPV分別包被酶標(biāo)板,分別以相應(yīng)的陰性、陽性血清作為陰、陽性對照驗(yàn)證病毒是否包板成功。以本研究獲得的單克隆抗體作為一抗進(jìn)行間接ELISA,判定單克隆抗體與常見病毒的交叉反應(yīng)性。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 間接ELISA檢測方法的建立

    經(jīng)過反應(yīng)條件的優(yōu)化,最終確定最佳的抗原包被濃度為 1∶100稀釋,37 ℃包被2 h;一抗反應(yīng)條件為1∶100倍稀釋,37 ℃反應(yīng)1 h;IgG-HRP反應(yīng)條件為1∶5 000稀釋,37 ℃避光反應(yīng)45 min;底物最佳反應(yīng)時間為10 min。

    2.2 亞類鑒定

    經(jīng)過3次亞克隆,獲得3株單抗,分別命名為1D9、3G9和4F6。亞類鑒定結(jié)果顯示,1D9和3G9重鏈為IgG1,4F6重鏈為IgG2b,輕鏈均為kappa鏈。

    2.3 腹水抗體的純化

    將純化的抗體進(jìn)行SDS-PAGE分析,結(jié)果如圖1,抗體重鏈大小為50 kDa左右,輕鏈大小為25 kDa左右。

    M.預(yù)染蛋白Marker;1.1D9;2.3G9;3.4F6

    2.4 效價測定

    1D9、3G9和4F6單抗細(xì)胞培養(yǎng)上清效價分別為1∶64、1∶64和1∶128,腹水效價為1∶104、1∶104和1∶105。

    2.5 染色體計(jì)數(shù)

    1D9、3G9和4F6染色體數(shù)分別為92、94和98(如圖2),均接近脾細(xì)胞(40)與骨髓瘤細(xì)胞(68)的染色體數(shù)目之和,表明本研究制備的3株單抗是2種細(xì)胞融合的產(chǎn)物。

    A.1D9雜交瘤細(xì)胞;B.3G9雜交瘤細(xì)胞;C.4F6雜交瘤細(xì)胞

    2.6 間接免疫熒光試驗(yàn)

    本試驗(yàn)制備的3株單抗均可與感染CPV的F81細(xì)胞反應(yīng),出現(xiàn)綠色熒光(如圖3),與陽性對照結(jié)果一致,而與未接種CPV的F81細(xì)胞不發(fā)生反應(yīng)。

    A.1D9與感染CPV的F81細(xì)胞反應(yīng);B.3G9與感染CPV的F81細(xì)胞反應(yīng);C.4F6與感染CPV的F81細(xì)胞反應(yīng);D.陰性對照;E.陽性對照。標(biāo)尺=400 μm

    2.7 MAb的病毒蛋白識別分析

    將pCI-NS、pCI-VP1表達(dá)質(zhì)粒以及空載體pCI-Neo分別轉(zhuǎn)染F81細(xì)胞,進(jìn)行IFA檢測,結(jié)果顯示如圖4。轉(zhuǎn)染了pCI-VP1細(xì)胞孔均能看到綠色熒光,而3株單抗與轉(zhuǎn)染了pCI-NS和空載體的細(xì)胞孔均無綠色熒光出現(xiàn),表明雜交瘤細(xì)胞株1D9、3G9和4F6產(chǎn)生的單克隆抗體針對的是CPV的VP蛋白。

    A.1D9與轉(zhuǎn)染pCI-VP1的F81反應(yīng);B.1D9與轉(zhuǎn)染pCI-NS的F81反應(yīng);C.1D9與轉(zhuǎn)染pCI-Neo的F81反應(yīng);D.3G9與轉(zhuǎn)染pCI-VP1的F81反應(yīng);E.3G9與轉(zhuǎn)染pCI-NS的F81反應(yīng);F.3G9與轉(zhuǎn)染pCI-Neo的F81反應(yīng);G.4F6與轉(zhuǎn)染pCI-VP1的F81反應(yīng);H.4F6與轉(zhuǎn)染pCI-NS的F81反應(yīng);I.4F6與轉(zhuǎn)染pCI-Neo的F81反應(yīng)。標(biāo)尺=400 μm

    2.8 特異性試驗(yàn)

    包被CDV、CCV、CAV和CPV的酶標(biāo)孔與相應(yīng)的陰、陽性血清反應(yīng)后,P/N均大于2.1,說明病毒已成功包被。間接ELISA結(jié)果(表1)顯示,3株單抗只與CPV發(fā)生反應(yīng),與CDV、CCV和CAV2均不發(fā)生反應(yīng),證明本研究制備的單克隆抗體與其他犬類病毒無交叉反應(yīng),特異性良好。

    表1 交叉反應(yīng)試驗(yàn)結(jié)果

    2.9 MAb的中和活性鑒定

    中和試驗(yàn)結(jié)果表明,雜交瘤細(xì)胞株4F6細(xì)胞上清稀釋16倍、腹水稀釋512倍時細(xì)胞未出現(xiàn)CPE,將其繼續(xù)稀釋時,出現(xiàn)CPE。雜交瘤細(xì)胞株4F6細(xì)胞培養(yǎng)上清完全中和效價為1∶16,腹水完全中和效價為1∶512。而1D9和3G9分泌的抗體不能阻止細(xì)胞發(fā)生CPE,不具有中和活性。

    3 討論

    單克隆抗體作為現(xiàn)代免疫學(xué)的重要工具之一,已廣泛應(yīng)用于病原檢測、治療、致病機(jī)制及抗原性研究等方面[8]。單克隆抗體制備的整個過程涉及到動物免疫、細(xì)胞融合、篩選等多個步驟。免疫環(huán)節(jié)是單抗成功制備的關(guān)鍵[9]。免疫原的純度直接影響免疫效果,高純度的抗原可以提高雜交瘤細(xì)胞的陽性率,有利于獲得所需的抗體。本研究采用純化濃縮的CPV作為免疫原進(jìn)行免疫,共獲得3株效價較高、特異性較好的單克隆抗體。而且其中1株具有中和活性,具有中和活性抗體的獲得可能與免疫原的純化有關(guān)。

    目前對于患病動物的治療臨床上主要采用高免血清或單克隆抗體進(jìn)行治療。相比于高免血清,單克隆抗體具有效價高、特異性好、可以規(guī)?;a(chǎn)等優(yōu)點(diǎn),對病毒感染的針對性治療具有較好的實(shí)用價值[10]。本研究獲得的單克隆抗體4F6具有中和活性,可應(yīng)用于疾病的治療。在診斷方面,常用的實(shí)驗(yàn)室診斷方法雖然敏感特異,但需要專業(yè)人員的專業(yè)操作,不適用于臨床診斷中[11]。膠體金檢測技術(shù)具有簡單、快速、直觀等優(yōu)點(diǎn)。王中力等[12]利用膠體金溶液標(biāo)記已純化的CPV單克隆抗體,組裝膠體金免疫層析試紙條,檢測樣品效果良好。本研究制備的3株單克隆抗體亞類鑒定均屬于IgG類,將有利于膠體金標(biāo)記抗體和質(zhì)控線包被抗體的選擇,為建立相應(yīng)的免疫學(xué)檢測方法提供了基礎(chǔ)。

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