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    一種快速高效獲取絲狀真菌PCR反應(yīng)模板的方法

    2020-09-05 01:47:36鄧百萬(wàn)
    微生物學(xué)雜志 2020年3期
    關(guān)鍵詞:機(jī)械

    劉 柳, 張 琨, 鄧百萬(wàn)*, 萬(wàn) 一*

    (1.陜西理工大學(xué) 生物科學(xué)與工程學(xué)院,陜西 漢中 723000;2.陜西省微生物研究所 分子生物學(xué)研究中心,陜西 西安 710043;3.陜西省科學(xué)院 秦嶺天然產(chǎn)物工程中心,陜西 西安 710043)

    絲狀真菌種類繁多,廣泛存在于地球生物圈中,是整個(gè)生態(tài)系統(tǒng)的重要組成部分[1]。作為重要的生物資源,絲狀真菌在工業(yè)[2]、醫(yī)藥[3]、食品[4]、生物防治[5]、生態(tài)環(huán)境[6]等方面具有重要的應(yīng)用價(jià)值。對(duì)絲狀真菌的開發(fā)利用首先需要對(duì)菌種進(jìn)行分類鑒定,高效獲取絲狀真菌PCR反應(yīng)模板是對(duì)其進(jìn)行分類鑒定的必要條件[7]。由于絲狀真菌細(xì)胞壁成分復(fù)雜,結(jié)構(gòu)特殊,尤其是較高的幾丁質(zhì)含量增加了細(xì)胞壁的抗逆性,難以釋放出菌體DNA,因此,獲取PCR反應(yīng)模板的過程較為復(fù)雜[8]。目前,最常用的方法是利用十六烷基三甲基溴化銨(CTAB)法[9-10]、十二烷基磺酸鈉(SDS)法[11]、氯化芐法[12]、尿素法[13]、蝸牛酶法[14]等獲取絲狀真菌基因組DNA作為PCR反應(yīng)模板。上述方法雖然適用于絕大部分絲狀真菌,但操作耗時(shí)費(fèi)力,并且不同方法適用的絲狀真菌類群存在差異[15],不適合絲狀真菌的批量、快速鑒定。為了提高絲狀真菌PCR鑒定效率,快速高效獲取絲狀真菌PCR反應(yīng)模板顯得尤為重要。研究表明,玻璃珠法可以借助玻璃珠之間相互振動(dòng)擠壓及剪切力快速破碎細(xì)胞壁[16];加熱裂解法可以利用產(chǎn)生的高溫達(dá)到裂解細(xì)胞壁的目的[17]。另有研究報(bào)道,Chelex-100作為陽(yáng)離子螯合樹脂在高溫、低離子強(qiáng)度下可以絡(luò)合金屬離子,避免模板DNA 降解,快速獲取用于PCR反應(yīng)模板的DNA[18-21]。本文結(jié)合相關(guān)研究經(jīng)驗(yàn),通過多次實(shí)驗(yàn)摸索,利用機(jī)械破壁儀聯(lián)合微波爐共同作用對(duì)絲狀真菌細(xì)胞壁進(jìn)行裂解,快速獲得PCR反應(yīng)模板,提高絲狀真菌PCR鑒定效率。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 菌種 本實(shí)驗(yàn)室分離自秦嶺昆蟲體內(nèi)13株不同種屬的絲狀真菌:繩狀籃狀菌(Talaromycesfuniculosus)、澳大利亞腔孢菌(Cochliobolusaustraliensis)、層生鐮刀菌(Fusariumproliferatum)、易脆毛霉(Mucorfragilis)、魯本斯青霉(Penicilliumrubens)、皺折裸胞殼(Emericelladentata)、鏈格孢菌(Alternariaalternata)、平臍蠕孢屬(Bipolaristetramera)、黃曲霉(Aspergillusflavus)、枝狀枝孢菌(Cladosporiumcladosporioides)、歧皺青霉(Penicilliumsteckii)、黑曲霉(Aspergillusniger)、擬康寧木霉(Trichodermakoningiopsis),如圖1所示。

    圖1 實(shí)驗(yàn)菌株圖片F(xiàn)ig.1 The pictures of experimental strain1:繩狀籃狀菌;2:澳大利亞腔孢菌;3:層生鐮刀菌;4:易脆毛霉;5:魯本斯青霉;6:皺折裸胞殼;7:鏈格孢菌;8:平臍蠕孢屬;9:黃曲霉;10:枝狀枝孢菌;11:歧皺青霉;12:黑曲霉;13:擬康寧木霉1:Talaromyces funiculosus;2:Cochliobolus australiensis;3:Fusarium proliferatum;4:Mucor fragilis;5:Penicillium rubens;6:Emericella dentata;7:Alternaria alternata;8:Bipolaris tetramera;9:Aspergillus flavus;10:Cladosporium cladosporioides;11:Penicillium steckii;12:Aspergillus niger;13:Trichoderma koningiopsis

    1.1.2 主要試劑及儀器 引物ITS1、ITS4由上海捷瑞生物有限公司合成,ITS1:5′-TCCGTAGTTGAACCTGCGG-3′,ITS4:5′-TCCTCCGCTTATTGA-

    TATGC-3′,10×Buffer TE由實(shí)驗(yàn)室自配,2×TaqMaster Mix(上海捷瑞生物有限公司),5×Loading Buffer(上海捷瑞生物有限公司),250 bp Maker(上海捷瑞生物有限公司),真菌基因組試劑盒(北京天根生化科技有限公司),Chelex-100(Sigma 公司),鋼珠(d=5 mm,QIAGEN Hilden)機(jī)械破壁儀(TissueLyser LT、QIAGEN Hilden),微波爐(WD700TL23-K5,格蘭仕微波爐電器有限公司),離心機(jī)(XI,基因公司),酶標(biāo)儀(EPOCH2,BioTek),PCR擴(kuò)增儀(T100TM,BIO-RAD),凝膠電泳儀(DYY-100,北京市六一儀器廠),凝膠成像系統(tǒng)(ChemiDoc XRS+,BIO-RAD)。

    1.2 方法

    1.2.1 菌種活化 將菌株接種于PDA培養(yǎng)基中,28 ℃恒溫培養(yǎng)3~4 d。

    1.2.2 PCR反應(yīng)模板制備 在無(wú)菌操作臺(tái),取100 μL 10×Buffer TE(100 mmol/L Tris-HCl, 10 mmol/L EDTA, pH 8.0)于2 mL離心管中,用無(wú)菌接種環(huán)挑取少半環(huán)菌絲體,迅速震蕩混勻,加一顆無(wú)菌鋼珠,先采用機(jī)械破壁儀進(jìn)行機(jī)械破壁,隨后對(duì)其進(jìn)行微波處理,待其溫度降至室溫,離心獲取上清液作為PCR反應(yīng)模板。

    1.2.3 機(jī)械破壁聯(lián)合微波法條件優(yōu)化 選取常見絲狀真菌黑曲霉Aspergillusniger為實(shí)驗(yàn)菌株,以PCR產(chǎn)物量為指標(biāo),以30 Hz機(jī)械破壁2 min,微波560 W裂解5 min為基礎(chǔ)條件[22],采取單因素法對(duì)機(jī)械破壁頻率(20、30、40、45、50 Hz)、機(jī)械破壁時(shí)間(0.5、1、2、3、4 min)、微波裂解功率(140、420、560、700 W)、微波裂解時(shí)間(1、3、5、8、10 min)進(jìn)行優(yōu)化,篩選出機(jī)械破壁聯(lián)合微波法獲取PCR反應(yīng)模板的最佳條件。

    1.2.4 ITS序列擴(kuò)增及PCR產(chǎn)物量分析 分別將上述不同條件下得到的PCR反應(yīng)模板進(jìn)行ITS序列擴(kuò)增。反應(yīng)體系為30 μL:2×TaqMaster Mix 15 μL,引物ITS1 0.5 μL,引物ITS4 0.5 μL,DNA模板3 μL,ddH2O 11 μL。反應(yīng)程序:94 ℃預(yù)變性5 min,94 ℃變性30 s,54.5 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,35個(gè)循環(huán),72 ℃終延伸10 min。PCR反應(yīng)結(jié)束后,取3 μL PCR產(chǎn)物用于1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)擴(kuò)增結(jié)果,并以Maker條帶濃度為對(duì)照(標(biāo)準(zhǔn)帶濃度為10 ng/μL、加亮帶濃度為25 ng/μL),通過Image Lab進(jìn)行PCR產(chǎn)量分析。

    1.2.5 快速獲取絲狀真菌PCR反應(yīng)模板方法的比較 采取上述實(shí)驗(yàn)得到的機(jī)械破壁聯(lián)合微波法的最佳條件獲取13株不同種屬絲狀真菌的PCR反應(yīng)模板,同時(shí)與機(jī)械破壁法、Chelex-100法得到的模板作對(duì)比,以試劑盒抽提法得到的基因組DNA為模板作陽(yáng)性對(duì)照,進(jìn)行ITS序列擴(kuò)增及目的條帶濃度分析,目的條帶清晰并在500~750 bp之間可認(rèn)為擴(kuò)增成功。將擴(kuò)增產(chǎn)物送至上海生工進(jìn)行測(cè)序,并對(duì)結(jié)果進(jìn)行BLAST比對(duì)分析。

    機(jī)械破壁法:參照文獻(xiàn)[21],取少半環(huán)菌絲體于裝有200 μL 10×Buffer TE的2 mL離心管中,加入一顆鋼珠,渦旋震蕩5 min后置于機(jī)械破壁儀中破壁2 min,12 000 r/min 離心2 min取上清液作為PCR反應(yīng)模板。

    Chelex-100法:參照文獻(xiàn)[19],取少半環(huán)菌絲體于裝有200 μL 10% Chelex-100溶液的2 mL離心管中,渦旋震蕩10 s,沸水浴10 min,冷卻至室溫后12 000 r/min 離心2 min取上清液作為PCR反應(yīng)模板。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 機(jī)械破壁聯(lián)合微波法條件優(yōu)化結(jié)果

    機(jī)械破壁聯(lián)合微波法在不同條件下得到的結(jié)果如下:機(jī)械破壁頻率在40 Hz時(shí),目的條帶最亮且PCR產(chǎn)物量最高為100.334 ng(圖2A、表1);機(jī)械破壁時(shí)間在2 min時(shí),目的條帶最亮且PCR產(chǎn)物量最高為82.868 ng,但1 min時(shí),目的條帶清亮、PCR產(chǎn)物量為81.726 ng,與2 min時(shí)相差不大,從快速的角度考慮選取1 min為最佳機(jī)械破壁時(shí)間(圖2B、表2);微波裂解功率在700 W時(shí)目的條帶最亮且PCR產(chǎn)物量最高為76.872 ng(圖2C、表3);微波裂解時(shí)間在3 min時(shí)目的條帶最亮且PCR產(chǎn)物量最高為128.516 ng(圖2D、表4)。綜上所述,機(jī)械破壁聯(lián)合微波法的最佳條件為40 Hz機(jī)械破壁1 min,微波700 W高溫裂解3 min。

    2.2 快速獲取絲狀真菌PCR反應(yīng)模板方法的比較

    2.2.1 ITS序列擴(kuò)增結(jié)果 對(duì)4種方法得到的PCR反應(yīng)模板進(jìn)行ITS序列擴(kuò)增后,經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),結(jié)果如圖3所示。采用Chelex-100法獲取的PCR反應(yīng)模板可成功擴(kuò)增6株絲狀真菌的ITS序列,擴(kuò)增率雖然較低,但目的條帶明亮、清晰(圖3A1、A2);采取機(jī)械破壁法獲取的PCR反應(yīng)模板,雖成功擴(kuò)增9株絲狀真菌的ITS序列,但目的條帶明亮度和清晰度明顯低于其他3種方法(圖3B1、B2);試劑盒抽提法獲取的PCR反應(yīng)模板可成功擴(kuò)增13株絲狀真菌的ITS序列,且目的條帶明亮、清晰(圖3C1、C2);機(jī)械破壁聯(lián)合微波法獲取的PCR反應(yīng)模板成功擴(kuò)增13株絲狀真菌的ITS序列,且目的條帶明亮、清晰(圖3D1、D2)。因此,機(jī)械破壁聯(lián)合微波法可快速、高效獲取絲狀真菌PCR反應(yīng)模板。

    圖2 ITS序列擴(kuò)增結(jié)果Fig.2 The results of ITS sequence amplificationM:250 bp Maker; A:不同機(jī)械破壁頻率(泳道1~5:20、30、40、45、50 Hz); B:不同機(jī)械破壁時(shí)間(泳道1~5:0.5、1、2、3、4 min); C:不同微波裂解功率(泳道1~5:140、420、560、700 W); D:不同微波裂解時(shí)間(泳道1~5:1、3、5、8、10 min)M: 250 bp Maker; A: Different mechanical wall-breaking frequency (lane1-5: 20,30,40,45,50 Hz); B: Different mechanical wall-breaking time (lane1-5: 0.5,1,2,3,4 min) ; C: Different microwave power (lane1-5: 140,420,560,700 W); D: Different microwave time (lane1-5: 1,3,5,8,10 min)

    表1 不同機(jī)械破壁頻率對(duì)PCR產(chǎn)物量的影響

    表2 不同機(jī)械破壁時(shí)間對(duì)PCR產(chǎn)物量的影響

    2.2.2 PCR擴(kuò)增量及產(chǎn)物測(cè)序結(jié)果分析 結(jié)果如表5所示,機(jī)械破壁聯(lián)合微波法獲取的PCR反應(yīng)模板擴(kuò)增后的目的條帶質(zhì)量濃度菌株1、2、8、10、11、12與試劑盒抽提法相當(dāng),菌株3、4、5、6、7、9、13雖低于試劑盒抽提法,但條帶質(zhì)量濃度均大于20 ng/μL。

    表3 不同微波裂解功率對(duì)PCR產(chǎn)物量的影響

    表4 不同微波裂解時(shí)間對(duì)PCR產(chǎn)物量的影響

    圖3 ITS序列擴(kuò)增結(jié)果 Fig.3 The results of ITS sequence amplificationM:250 bp Maker; 1~13:13株實(shí)驗(yàn)菌株; A1、A2:Chelex-100法; B1、B2:機(jī)械破壁法; C1、C2:試劑盒抽提法; D1、D2:機(jī)械破壁聯(lián)合微波法M: 250 bp Maker; 1-13:13 experimental strains; A1,A2: Chelex-100 method; B1,B2: Mechanical wall-breaking method; C1,C2: Kit method; D1,D2: Mechanical wall-breaking united microwave method

    表5 目的條帶質(zhì)量濃度測(cè)定結(jié)果

    機(jī)械破壁聯(lián)合微波法、試劑盒抽提法獲得模板的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物送上海生工測(cè)序,測(cè)序結(jié)果進(jìn)行BLAST比對(duì)分析,機(jī)械破壁聯(lián)合微波法同試劑盒抽提法得到的鑒定結(jié)果一致。因此,機(jī)械破壁聯(lián)合微波法可快速、高效獲取用于絲狀真菌PCR反應(yīng)的正確模板。

    3 討 論

    要提高絲狀真菌PCR鑒定效率,首先需要快速高效獲取PCR反應(yīng)模板。我們通過大量實(shí)驗(yàn)建立了機(jī)械破壁聯(lián)合微波法獲取絲狀真菌PCR反應(yīng)模板的方法,以PCR產(chǎn)物量為指標(biāo),以常見絲狀真菌黑曲霉為實(shí)驗(yàn)菌株,對(duì)機(jī)械破壁聯(lián)合微波法的機(jī)械破壁頻率、機(jī)械破壁時(shí)間、微波裂解功率、微波裂解時(shí)間進(jìn)行條件優(yōu)化,得到了機(jī)械破壁聯(lián)合微波法獲取絲狀真菌PCR反應(yīng)模板的最佳條件:40 Hz機(jī)械破壁1 min,微波700 W高溫裂解3 min。

    采取優(yōu)化的機(jī)械破壁聯(lián)合微波法獲取13株不同種屬絲狀真菌的PCR反應(yīng)模板,與已報(bào)道的多個(gè)快速獲取方法作比較,同時(shí)以試劑盒抽提法作為陽(yáng)性對(duì)照,進(jìn)行ITS序列擴(kuò)增及結(jié)果分析。結(jié)果顯示,Chelex-100法獲取的模板進(jìn)行擴(kuò)增后雖然目的條帶明亮、清晰,但擴(kuò)增成功率較低(46.2%),與李煥宇等[15]研究結(jié)果一致;機(jī)械破壁法擴(kuò)增成功率(69.2%)雖然高于Chelex-100法,但擴(kuò)增結(jié)果不理想;機(jī)械破壁聯(lián)合微波法獲取的模板效果良好,13株不同屬的絲狀真菌ITS序列均成功擴(kuò)增(擴(kuò)增成功率100%),且條帶清晰明亮,PCR鑒定結(jié)果與試劑盒抽提法完全一致。

    試劑盒抽提法是目前獲取絲狀真菌PCR反應(yīng)模板最常用方法,但首先需對(duì)大量菌體進(jìn)行液氮研磨,提取過程約需1 h,提取費(fèi)時(shí)且成本高,不適合絲狀真菌的批量、快速鑒定。本研究建立的機(jī)械破壁聯(lián)合微波法僅需10 min即可獲得絲狀真菌用于PCR反應(yīng)的擴(kuò)增模板,效果與試劑盒抽提法相同,具備高效、低成本的優(yōu)點(diǎn)。因此,機(jī)械破壁聯(lián)合微波法可快速高效獲取絲狀真菌PCR反應(yīng)模板,提高絲狀真菌PCR鑒定效率。

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