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    基于ITS序列的DNA條形碼技術(shù)鑒定紅豆杉屬植物

    2020-07-27 09:09:52尹文秀張明哲樓成杰王金磚于文濤胡美玲虞惠貞張曉峰李明福
    浙江林業(yè)科技 2020年2期
    關(guān)鍵詞:進(jìn)化樹紅豆杉東北

    尹文秀 ,張明哲,樓成杰,王金磚,于文濤,胡美玲,吳 姍,虞惠貞,許 瑾,張曉峰,李明福

    (1.浙江省檢驗(yàn)檢疫科學(xué)技術(shù)研究院,浙江 杭州 310016;2.南京市產(chǎn)品質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)院,江蘇 南京 210000;3.福州海關(guān),福建 福州 350001;4.中國(guó)檢驗(yàn)檢疫科學(xué)研究院,北京 100176)

    紅豆杉屬Taxus植物隸屬于紅豆杉科Taxaceae,為常綠喬木或灌木,是第三紀(jì)孑遺植物[1],含有多種藥用成分[2]。紅豆杉屬植物廣泛分布于歐洲、北美洲及東亞等北半球地區(qū),在全世界有11種,分別為球果紅豆杉T.globosa,短葉紅豆杉T.brevifolia,歐洲紅豆杉T.baccata,加拿大紅豆杉T.canadensis,佛羅里達(dá)紅豆杉T.floridana和曼地亞紅豆杉T.×Media[2]。我國(guó)有3種2變種,即密葉紅豆杉T.funana,東北紅豆杉T.cuspidata,西藏紅豆杉T.wallichiana,紅豆杉T.wallichianavar.chinensis和南方紅豆杉T.wallichianavar.maire[3-4],均為《國(guó)家重點(diǎn)保護(hù)野生植物名錄(第一批)》中的I級(jí)重點(diǎn)保護(hù)野生植物[5]。

    近年來(lái),紅豆杉屬植物的藥用價(jià)值得到了廣泛關(guān)注和深入研究。1971年,首次從短葉紅豆杉樹皮中提取出的紫杉醇,是迄今為止最成功的抗癌藥物之一[6-7],然而紅豆杉屬樹種耐蔭性強(qiáng),在天然林中生長(zhǎng)緩慢,分布星散,野生樹木更是日漸減少[8]。紅豆杉物種有限的自然資源限制了紫杉醇的提取[9-10],供需矛盾日益突出。為更好地加強(qiáng)對(duì)紅豆杉屬植物的保護(hù)和利用,開展準(zhǔn)確鑒定必不可少。DNA條形碼技術(shù)(DNA barcoding)是利用標(biāo)準(zhǔn)的一個(gè)或多個(gè)DNA片段進(jìn)行物種鑒定及探索其親緣進(jìn)化關(guān)系的方法[11-13],劉潔等選取了rbcl,matk,trnH-psbA,trnL-F和internal transcribed spacer(ITS)5對(duì)引物對(duì)歐洲和亞洲的紅豆杉進(jìn)行鑒別,結(jié)果表明trnl-F和ITS這兩對(duì)引物可單獨(dú)使用或者結(jié)合起來(lái)對(duì)歐洲和亞洲紅豆杉進(jìn)行鑒別[14]。本研究采用DNA條形碼技術(shù)開展對(duì)紅豆杉屬植物的準(zhǔn)確鑒定,依據(jù)劉潔等的實(shí)驗(yàn)結(jié)果并結(jié)合蔣敏捷等的方法[14-15],選用ITS1-18S開展紅豆杉屬植物的鑒別,可直接區(qū)分南方紅豆杉、東北紅豆杉和歐洲紅豆杉3種紅豆杉屬植物。此研究為口岸快速篩查和鑒定提供了新型的技術(shù)方法,方法便捷可靠,同時(shí)對(duì)促進(jìn)物種資源的保護(hù)和利用具有重要意義。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    于2017年3月,先后于上海植物園、杭州植物園、南京植物園和浙江省林業(yè)科學(xué)研究院進(jìn)行采樣,每棵樹采集一年生新鮮枝條1份。于上海植物園采集南方紅豆杉樣品1份,編號(hào)為H1;采集東北紅豆杉樣品1份,編號(hào)為D1;采集歐洲紅豆杉樣品1份,編號(hào)為EU1。于杭州植物園采集南方紅豆杉樣品1份,編號(hào)為H2。于南京植物園采集南方紅豆杉樣品1份,編號(hào)為H3,采集歐洲紅豆杉樣品1份,編號(hào)為EU2。于浙江省林業(yè)科學(xué)研究院采集南方紅豆杉樣品1份,編號(hào)為H4。于截獲入境東北紅豆杉盆栽采集樣品1份,編號(hào)為D2。采集到樣品共計(jì)8份。實(shí)驗(yàn)樣品從采集的枝條上隨機(jī)選取葉片,清洗干凈進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。

    1.2 方法

    1.2.1 DNA提取 采用DNeasy Plant Mini Kit(Qiagen,Hilden,Germany)試劑盒開展DNA提取。樣品前處理需對(duì)供試樣品表面進(jìn)行酒精噴灑消毒,然后將植物葉片在室溫下研磨成粉末狀,后參照試劑盒說(shuō)明書繼續(xù)操作。提取之前按照試劑盒的要求,先將Qiagen試劑盒中的Buffer AP1置于65℃水浴鍋中預(yù)熱。

    1.2.2 PCR擴(kuò)增和測(cè)序 擴(kuò)增 ITS1-18S序列正向引物:5’-GCGGTAGGATCATTGTCG-3’,反向引物:5’-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3’,由TaKaRa寶生物工程(大連)有限公司合成。PCR擴(kuò)增體系為試劑20 μL體系[大連寶生物(TaKaRa Ex Taq)提供],10×Ex Taq Buffer 2.0 μL(Mg2+plus),dNTPs 1.6 μL(2.5 mmol·L-1),引物各0.4 μL(20 μmol·L-1),ddH2O 13.5 μL,Taq酶0.1 μL (5 U·μL-1),DNA模板2 μL(10~ 30 ng·μL-1)。擴(kuò)增程序:95℃預(yù)變性5 min;95℃變性1 min,53℃退火30 s,72℃延伸30 s,35個(gè)循環(huán);72℃延伸10 min。PCR擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)純化后,送至杭州擎科梓熙生物技術(shù)有限公司進(jìn)行雙向測(cè)序。

    1.2.3 序列比對(duì)和系統(tǒng)發(fā)育分析 同一采集地樣品名稱相同的不同株樣品其序列相近[16],所以每個(gè)采集地同一物種采集一個(gè)樣品進(jìn)行序列比對(duì)。樣品包括南方紅豆杉4個(gè),H1,H2,H3,H4;東北紅豆杉2個(gè),D1,D2;歐洲紅豆杉2個(gè),EU1,EU2。用DNAMAN(Version 6.0.3.99)軟件對(duì)所得序列進(jìn)行多重比對(duì)。同時(shí)從GenBank中獲得的與樣品ITS1-18S序列同源性高的序列(見表1),對(duì)這些序列進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)育樹分析,其中,加入作為外群的紅豆杉科白豆杉屬Pseudotaxus植物白豆杉P.chienii。

    采用鄰接法(neighbor-joining,NJ)構(gòu)建ITS1-18S序列的系統(tǒng)進(jìn)化樹(boostrap1 000次重復(fù))。

    表1 從GenBank獲取ITS1-18S序列物種名稱及其登錄號(hào)Table 1 The names and the accessions of ITS1-18S sequences of relative species from GenBank

    2 結(jié)果與分析

    2.1 ITS1-18 S序列擴(kuò)增結(jié)果

    本文依據(jù)劉潔等的實(shí)驗(yàn)結(jié)果并結(jié)合蔣敏捷等的方法[14-15]合成通用引物ITS1-18S(表1),選取同一采集地的不同樣品H1,D1和EU1進(jìn)行PCR擴(kuò)增,擴(kuò)增長(zhǎng)度約為1 100 bp左右,如圖1所示。

    2.2 序列比對(duì)結(jié)果分析

    將測(cè)序所得樣品的ITS1-18S序列在GenBank數(shù)據(jù)庫(kù)中進(jìn)行BLAST比對(duì),結(jié)果顯示,H1,H2,H3,H4;D1,D2和EU1,EU2樣品的ITS1-18S序列分別與南方紅豆杉、東北紅豆杉、歐洲紅豆杉的ITS1-18S序列的最大匹配率達(dá)到99%~ 100%。

    將H1,H2,H3,H4;D1,D2和EU1,EU2樣品的ITS1-18S序列與紅豆杉屬3個(gè)種的6條序列進(jìn)行同源序列比對(duì),舍去兩端未對(duì)應(yīng)的序列,共獲得1 009 bp序列信息,其中包括27個(gè)變異位點(diǎn)(圖2);序列比對(duì)結(jié)果發(fā)現(xiàn),所測(cè)未知樣品ITS1-18S序列分別與紅豆杉屬序列相似性最高,達(dá)到99%~ 100%,遺傳距離最小,為0.00~ 0.01??梢钥闯?,H1,H2,H3,H4樣品與南方紅豆杉的關(guān)系比較近,D1,D2樣品與東北紅豆杉的關(guān)系比較近,EU1,EU2樣品與歐洲紅豆杉的關(guān)系比較近。

    圖1 H1,D1 和EU1 的PCR擴(kuò)增結(jié)果Figure 1 PCR amplification result of sample H,D and EUe EU

    2.3 構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹

    通過(guò)DNAMAN軟件,采用鄰接法構(gòu)建ITS1-18S序列的系統(tǒng)進(jìn)化樹,經(jīng)1 000次重復(fù)抽樣檢測(cè)其置信度。從構(gòu)建的進(jìn)化樹(圖3)可以看出,同一物種的紅豆杉屬植物均能聚集在同一分支內(nèi),且均獲得較高的支持率(>90%)。其中,樣品H1,H2,H3,H4與南方紅豆杉ITS1-18S序列聚為一枝,EU1,EU2與歐洲紅豆杉ITS1-18S序列聚為一枝,其bootstrap values分別為99%和95%。D1,D2與東北紅豆杉ITS1-18S序列聚為一枝;白豆杉單獨(dú)一枝。

    3 結(jié)論與討論

    將不同采集地的H1,H2,H3,H4樣品,D1,D2樣品和EU1,EU2樣品分別與南方紅豆杉、東北紅豆杉和歐洲紅豆杉3個(gè)種的6條序列進(jìn)行同源序列比對(duì),結(jié)果表明,所測(cè)樣品的ITS1-18S序列分別與紅豆杉屬的南方紅豆杉、東北紅豆杉和歐洲紅豆杉序列相似性最高,達(dá)到99%~ 100%,遺傳距離最小,為0~ 0.01。而且從構(gòu)建的ITS1-18S序列的系統(tǒng)進(jìn)化樹也可以看出,H1,H2,H3,H4樣品和南方紅豆杉聚為一枝;D1,D2樣品與東北紅豆杉聚為一枝;EU1,EU2樣品與歐洲紅豆杉聚為一枝;白豆杉單獨(dú)一枝。根據(jù)以上實(shí)驗(yàn)結(jié)果可以判定H1,H2,H3,H4樣品為南方紅豆杉;D1,D2樣品為東北紅豆杉;EU1,EU2樣品為歐洲紅豆杉。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,各樣品的樹種與采集地樣品的信息完全一致,通過(guò)ITS1-18S引物可以從分子水平對(duì)紅豆杉屬植物進(jìn)行區(qū)分和鑒定,此方法切實(shí)可行。

    圖2 紅豆杉屬ITS1-18S序列比對(duì)結(jié)果Figure 2 Sequence alignment of ITS1-18S of Taxus

    DNA條形碼技術(shù)是傳統(tǒng)鑒定方法的有效補(bǔ)充,此方法不受個(gè)體形態(tài)、大小等特征和完整性的影響,也就避免了形態(tài)學(xué)鑒定中存在的局限性,能直接從基因水平上提供豐富的鑒別依據(jù),可有效區(qū)分種間差異[11]。張明哲等設(shè)計(jì)了南方紅豆杉的特異性引物和探針,通過(guò)實(shí)時(shí)熒光PCR方法鑒別南方紅豆杉,但該引物探針僅能鑒定南方紅豆杉和其原始種西藏紅豆杉,而無(wú)法對(duì)紅豆杉屬其他種進(jìn)行區(qū)分[17]。而本研究基于真核生物的核糖體基因rRNA的內(nèi)轉(zhuǎn)錄間隔區(qū)(ITS)的高保守性選取ITS序列進(jìn)行植物物種的分子鑒定,通過(guò)DNA條形碼技術(shù)可對(duì)未知植物樣品進(jìn)行篩選,可快速將物種范圍鎖定至紅豆杉屬,彌補(bǔ)了南方紅豆杉特異性引物探針局限性的缺陷。我國(guó)紅豆杉屬植物大部分位列于瀕危野生動(dòng)植物種國(guó)際貿(mào)易公約(CITES)附錄Ⅱ中[18]。所以此法可建立快速、簡(jiǎn)便、準(zhǔn)確、適合于口岸查驗(yàn)的鑒定方法,有效保護(hù)和利用生物資源。后期可進(jìn)一步研究探索,在初篩結(jié)果上結(jié)合紅豆杉屬不同種間的形態(tài)學(xué)特征進(jìn)行鑒定或設(shè)計(jì)紅豆杉屬不同種的特異性引物探針進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光PCR方法鑒別。

    圖3 基于ITS1-18S序列構(gòu)建紅豆杉科間的系統(tǒng)發(fā)育樹Figure 3 Phylogenetic tree of Taxaceae by ITS1-18S sequences

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