pH值、靜置、冷凍對(duì)不同種類(lèi)蔬菜中丁硫克百威測(cè)定的影響

王 瑩,王世成,李 玲,林桂鳳,李國(guó)琛*

(1.中國(guó)科學(xué)院 沈陽(yáng)應(yīng)用生態(tài)研究所,遼寧 沈陽(yáng) 110016;2.農(nóng)業(yè)農(nóng)村部 農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量安全環(huán)境因子風(fēng)險(xiǎn)評(píng)估實(shí)驗(yàn)室(沈陽(yáng)),遼寧 沈陽(yáng) 110016)

丁硫克百威,化學(xué)名稱(chēng)為2,3-二氫-2,2-二甲基-7-苯并呋喃[(二丁基氨基)硫代]甲基氨基甲酸酯[1],是美國(guó)FMC公司開(kāi)發(fā)的一種具有內(nèi)吸性和高脂溶性、在土壤和植物中易于降解代謝的高效、廣譜的氨基甲酸酯類(lèi)殺蟲(chóng)殺螨劑。這種克百威低毒化衍生物在昆蟲(chóng)體內(nèi)可轉(zhuǎn)化為更高毒性的克百威和3-羥基克百威[2]。自2017年8月1日起,我國(guó)撤銷(xiāo)了丁硫克百威在蔬菜上的農(nóng)藥登記申請(qǐng),自2019年8月1日起禁止在蔬菜上使用[3]。GB 2763─2019《食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)：食品中農(nóng)藥最大殘留限量》規(guī)定了蔬菜中丁硫克百威的最大殘留限量為0.05～1 mg/kg,但不包含其代謝產(chǎn)物[4]。

目前,蔬菜中丁硫克百威及其代謝物多采用液液萃取、固相萃取、凝膠滲透色譜凈化、加速溶劑萃取等[5-13]前處理手段進(jìn)行提取和凈化,并結(jié)合氣相色譜法、氣質(zhì)聯(lián)用法、液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜技術(shù)進(jìn)行檢測(cè)[5-13]。楊爽等(2008)采用丙酮提取-液液分配凈化-氣質(zhì)法檢測(cè)了辣椒中丁硫克百威及其代謝產(chǎn)物[8]；趙樺林等(2013)建立了白菜中硅藻土混合分散-加速溶劑萃取-固相萃取柱凈化-液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜檢測(cè)方法[9]；方宗壯等(2016)采用混合溶劑提取-弗羅里硅土凈化-氣質(zhì)聯(lián)用法檢測(cè)了豇豆中丁硫克百威及其代謝物的殘留量[10]。上述方法均是對(duì)某一種類(lèi)蔬菜基質(zhì)進(jìn)行檢測(cè),而且未論述在前處理過(guò)程中丁硫克百威母體是否發(fā)生降解為克百威、3-羥基克百威的現(xiàn)象。因此,為了準(zhǔn)確測(cè)定蔬菜中丁硫克百威母體的殘留量,我們對(duì)菜豆(果菜類(lèi))、結(jié)球甘藍(lán)(莖菜類(lèi))、蘿卜(根菜類(lèi))三種蔬菜基質(zhì)經(jīng)乙腈提取后,通過(guò)考察pH值、靜置時(shí)間、冷凍三因素,確定了最優(yōu)的前處理方法，并與具有高靈敏度和選擇性的液相串聯(lián)質(zhì)譜技術(shù)結(jié)合,建立了測(cè)定不同種類(lèi)蔬菜中丁硫克百威殘留量的基質(zhì)校正的UPLC-MS/MS分析方法。

1 材料與方法

1.1 主要儀器與試劑

儀器: 1250超高效液相色譜儀、TSQ Quantum Access MAX三重串聯(lián)四級(jí)桿質(zhì)譜儀、Vanquish超高效液相色譜儀、Q Exactive四級(jí)桿-靜電場(chǎng)軌道阱高分辨質(zhì)譜儀(美國(guó)Thermo Fisher Scientific公司)、T18數(shù)顯型高速分散機(jī)(德國(guó)IKA公司)、Vortex genius 3渦流振蕩器(德國(guó)IKA公司)、TD25-WS離心機(jī)(湖南湘儀公司)。

試劑:乙腈、氯化鈉、氫氧化鉀(均為分析純,天津康科德試劑公司);乙腈、甲醇、甲酸(均為色譜純,默克公司);超純水。

農(nóng)藥標(biāo)準(zhǔn)品:丁硫克百威、克百威、3-羥基克百威的100 mg/L標(biāo)準(zhǔn)溶液均購(gòu)自農(nóng)業(yè)部環(huán)境保護(hù)科研檢測(cè)所。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 農(nóng)藥標(biāo)準(zhǔn)工作溶液的配制 分別移取丁硫克百威、克百威、3-羥基克百威的100 mg/L標(biāo)準(zhǔn)溶液各1 mL于10 mL容量瓶中,用甲醇溶解并定容,配制成混合標(biāo)準(zhǔn)溶液10 mg/L。

蔬菜基質(zhì)對(duì)分析過(guò)程易產(chǎn)生基質(zhì)效應(yīng),影響分析結(jié)果的準(zhǔn)確性[14]。為了消除基質(zhì)效應(yīng)的影響,采用空白樣品經(jīng)過(guò)前處理后得到的溶液作為溶劑,將混合標(biāo)準(zhǔn)溶液分別稀釋成系列基質(zhì)混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,以待測(cè)物的質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),定量離子對(duì)的色譜峰面積為縱坐標(biāo),繪制外標(biāo)法曲線。

1.2.2 檢測(cè)條件 UPLC條件: T3柱(2.1 mm×150 mm,5 μm,美國(guó)Waters公司);柱溫35 ℃;流動(dòng)相A為水;流動(dòng)相B為甲醇。梯度洗脫程序:10% B保持1 min;在3.5 min內(nèi)由10% B線性增加到95% B并保持1 min；隨后在3.5 min內(nèi)線性回落到起始10% B并保持4 min；流速0.3 mL/min;進(jìn)樣量5 μL。

MS/MS條件:電噴霧離子源(ESI);掃描方式為正離子掃描;監(jiān)測(cè)方式為多反應(yīng)監(jiān)測(cè)模式(MRM);噴霧電壓3500 V;蒸汽溫度300 ℃;離子傳輸管溫度270 ℃;鞘氣壓力25 arb;輔助氣壓力10 arb;碰撞能量、定性離子對(duì)、定量離子對(duì)見(jiàn)表1;色譜圖見(jiàn)圖1。

圖1 丁硫克百威、克百威、3-羥基克百威(濃度均為50 μg/L)的MRM色譜圖

表1 丁硫克百威、克百威、3-羥基克百威的質(zhì)譜檢測(cè)條件

HRMS條件:電噴霧離子源(ESI);掃描方式為正離子掃描;噴霧電壓3200 V;霧化溫度350 ℃;離子傳輸管溫度320 ℃;鞘氣壓力40 arb;輔助氣壓力10 arb;監(jiān)測(cè)模式為數(shù)據(jù)依賴(lài)性掃描(Full MS/dd-MS2),掃描范圍m/z 50～750, Full MS分辨率70000, dd-MS2分辨率17500;在MS/MS模式下,歸一化階梯碰撞能量為20%、40%、60%。

1.2.3 前處理方法 本實(shí)驗(yàn)按照檢測(cè)時(shí)間分為3組(立即檢測(cè)組、靜置2 h檢測(cè)組、冷凍5 d檢測(cè)組),每組設(shè)2個(gè)處理(調(diào)pH值、不調(diào)pH值)和3個(gè)添加濃度(0.01、0.05、0.10 mg/kg)。具體分組見(jiàn)表2。

表2 前處理方法分組

稱(chēng)取10.0 g樣品,向不調(diào)整pH值的樣品中加入10 mL水,向調(diào)整pH值的樣品中加入10 mL 0.025 mol/L KOH溶液,渦旋混勻。立即檢測(cè)組:迅速加入20 mL乙腈,以12000 r/min高速勻漿2 min；再加入7 g氯化鈉,劇烈振蕩1 min；然后以5000 r/min離心5 min；最后取1 mL上清液,過(guò)0.22 μm膜,進(jìn)行測(cè)定。靜置2 h檢測(cè)組:在調(diào)整或不調(diào)整pH值后,密封，在室溫下靜置2 h，然后按照立即檢測(cè)組的方法進(jìn)行前處理。冷凍5 d檢測(cè)組:在調(diào)整或不調(diào)整pH值后,于-18 ℃密封冷凍5 d,然后取出解凍,按照立即檢測(cè)組的方法進(jìn)行前處理。

2 結(jié)果與分析

2.1 檢測(cè)條件的選擇

采用UPLC-MS/MS常用流動(dòng)相甲醇+0.1%甲酸(v+v,1+1)配制丁硫克百威標(biāo)準(zhǔn)溶液,放置10 min、2 h、6 h、10 h、14 h、18 h后分別進(jìn)行UPLC-MS/MS檢測(cè),結(jié)果發(fā)現(xiàn)丁硫克百威在酸性條件下2 h內(nèi)已經(jīng)降解76.5%,4 h即達(dá)到91.7%。主要是因?yàn)槎×蚩税偻腘-S鍵在酸性條件下容易斷裂,轉(zhuǎn)化成克百威等降解產(chǎn)物[2]。因此檢測(cè)丁硫克百威,在配制標(biāo)液、前處理以及上機(jī)檢測(cè)時(shí),均建議不加酸。

采用標(biāo)準(zhǔn)溶液蠕動(dòng)泵注射全掃描方式確定丁硫克百威、克百威、3-羥基克百威均以[M+H]+為母離子,再對(duì)母離子進(jìn)行二級(jí)碰撞能量?jī)?yōu)化,建立了MRM模式的最佳質(zhì)譜條件(表1)。同時(shí),對(duì)乙腈-水、甲醇-水兩種流動(dòng)相條件下3種農(nóng)藥的色譜峰面積進(jìn)行比較，結(jié)果發(fā)現(xiàn)：甲醇-水流動(dòng)相測(cè)得的3種農(nóng)藥的峰面積較高,是乙腈-水流動(dòng)相的1.3～7.8倍。所以本次實(shí)驗(yàn)采用甲醇-水作為流動(dòng)相。

2.2 丁硫克百威在酸性條件下的降解產(chǎn)物

將甲醇與0.1%甲酸水以體積比1∶1混合,配制1 mg/L丁硫克百威標(biāo)液,于4 ℃避光條件下放置18 h后,采用UPLC-HRMS進(jìn)行正離子模式Full MS/dd-MS2掃描。

丁硫克百威的分子式為C20H32N2O3S,理論分子量為380.22064,在ESI正離子模式下形成準(zhǔn)分子離子峰C20H33N2O3S+,質(zhì)量數(shù)為381.22064。它在酸性條件下不穩(wěn)定,N-S鍵易斷裂,形成不同碎片離子(圖2),包括克百威(分子式C12H15NO3)的準(zhǔn)分子離子峰C12H16NO3+,但未見(jiàn)3-羥基克百威(分子式為C12H15NO4)的準(zhǔn)分子離子峰C12H16NO4+(238.10738)。由此可推斷在酸性條件下,丁硫克百威可降解為克百威,但不生成3-羥基克百威。

圖2 丁硫克百威在酸性條件下的降解產(chǎn)物

2.3 pH值、靜置、冷凍時(shí)間對(duì)丁硫克百威回收率的影響

從2.1、2.2部分的實(shí)驗(yàn)結(jié)果可以看出,在酸性條件下丁硫克百威不穩(wěn)定,回收率會(huì)降低。所以本次實(shí)驗(yàn)選取3種不同蔬菜品種,包括菜豆(果菜類(lèi))、結(jié)球甘藍(lán)(莖菜類(lèi))、蘿卜(根菜類(lèi)),在提取過(guò)程中進(jìn)行了加水、加堿液的回收率比較。

由圖3a可以看出：在不調(diào)pH值的條件下,菜豆3個(gè)處理組的回收率為63.3%～130.0%;在調(diào)pH值的條件下,立即檢測(cè)組與靜置2 h檢測(cè)組的回收率與不調(diào)pH值沒(méi)有較大差異,而冷凍5 d后檢測(cè)的0.01 mg/kg、0.05 mg/kg的回收率已經(jīng)下降到0%。由圖3b可以看出：結(jié)球甘藍(lán)調(diào)pH后回收率基本都優(yōu)于不調(diào)pH的,其中立即檢測(cè)組調(diào)pH后3個(gè)濃度的回收率分別是83.6%、86.7%、110.0%,高于靜置2 h組、冷凍5 d組的。由圖3c可以看出：調(diào)pH對(duì)蘿卜的前處理影響最明顯;不調(diào)pH,僅立即檢測(cè)組0.1 mg/kg的回收率是64.7%,其余處理為0%～2.8%;調(diào)pH立即檢測(cè)組3個(gè)添加濃度的回收率均較高,分別是85.1%、91.7%、99.3%?？傮w來(lái)說(shuō),是否調(diào)pH和靜置2 h對(duì)菜豆的檢測(cè)基本上沒(méi)有影響；菜豆樣品勻漿后,加入水或堿液立即檢測(cè)或靜置2 h檢測(cè)均可。對(duì)于結(jié)球甘藍(lán)和蘿卜,不調(diào)pH、調(diào)pH靜置2 h和冷凍5 d都會(huì)降低回收率。綜上所述,對(duì)于3個(gè)不同種類(lèi)蔬菜，先加入0.025 mol/L KOH溶液10 mL,再加入乙腈高速勻漿離心,在鹽析振蕩后立即檢測(cè)是最優(yōu)方法。

圖3 在3種蔬菜基質(zhì)中不同前處理方法的丁硫克百威回收率

2.4 在前處理過(guò)程中丁硫克百威的降解產(chǎn)物

實(shí)驗(yàn)結(jié)果也表明,菜豆、結(jié)球甘藍(lán)、蘿卜在不調(diào)pH情況下,丁硫克百威的降解量隨時(shí)間增加而增多,而且添加樣品中都有克百威檢出,但未檢出3-羥基克百威(≤0.001 mg/kg);蘿卜中丁硫克百威的降解速度明顯快于菜豆和結(jié)球甘藍(lán)中的,部分丁硫克百威剛加入就直接分解。在調(diào)pH值處理中,樣品處于較強(qiáng)的堿性環(huán)境中,丁硫克百威在3種基質(zhì)中的降解速度都有一定程度的減緩,但隨著靜置時(shí)間增加或冷凍,其含量也會(huì)逐漸降低,但均未檢出克百威(≤0.001 mg/kg)和3-羥基克百威(≤0.001 mg/kg)。根據(jù)上述現(xiàn)象可以推斷：當(dāng)待測(cè)樣品處于酸性環(huán)境中時(shí),丁硫克百威易降解并產(chǎn)生代謝產(chǎn)物克百威;在待測(cè)樣品中加入適量的堿液,調(diào)節(jié)樣品基質(zhì)到中性或弱堿性時(shí),可以降低其降解速度且不產(chǎn)生代謝產(chǎn)物克百威和3-羥基克百威。

因此,基于丁硫克百威在酸堿性條件下的分解特性,為了準(zhǔn)確測(cè)定蔬菜中丁硫克百威母體,確保在前處理過(guò)程中不生成代謝產(chǎn)物克百威和3-羥基克百威,本研究采用2.3中確定的加入0.025 mol/L KOH溶液、用乙腈勻漿提取、立即檢測(cè)的前處理方法。在陰性蔬菜樣品中添加0.01、0.05、0.10 mg/kg三個(gè)濃度水平,每個(gè)濃度設(shè)6個(gè)平行，進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)。結(jié)果表明,3個(gè)濃度添加水平均未檢出克百威(<0.001 mg/kg)和3-羥基克百威(<0.001 mg/kg)。因此,2.3中確定的前處理方法是最優(yōu)的丁硫克百威母體的前處理方法。

2.5 分析方法的靈敏度、精密度與準(zhǔn)確度

用蔬菜空白基質(zhì)配制1、5、10、25、50、100、200 μg/L的系列標(biāo)準(zhǔn)溶液,在優(yōu)化的檢測(cè)條件下上機(jī)測(cè)定。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明丁硫克百威在1～200 μg/L范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,線性方程為Y=-94313.3+4599370X,相關(guān)系數(shù)R為0.9991。按照2.3中確定的前處理方法,在陰性蔬菜樣品中分別添加丁硫克百威 0.01、0.05、0.10 mg/kg三個(gè)濃度,每個(gè)濃度設(shè)6個(gè)平行,同時(shí)做空白實(shí)驗(yàn),均在扣除本底后計(jì)算回收率和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差;分別以3倍和10倍信噪比對(duì)應(yīng)的添加濃度作為檢出限和定量限。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明：丁硫克百威在3種蔬菜中的檢出限為0.001 mg/kg,定量限為0.005 mg/kg,添加回收率為83.6%～115.4%, RSD為3.2%～9.1%(表3)。因此，該方法的精密度與準(zhǔn)確度均符合痕量分析要求。

表3 在3種蔬菜中丁硫克百威的檢出限、定量限、回收率和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差

3 結(jié)論

通過(guò)對(duì)菜豆、結(jié)球甘藍(lán)、蘿卜三種不同蔬菜基質(zhì)前處理過(guò)程中調(diào)節(jié)pH值、靜置、冷凍條件的實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行比較,最終確定在樣品中加入0.025 mol/L KOH溶液渦旋混勻,加入乙腈高速勻漿,鹽析并離心,取上清液立即進(jìn)行檢測(cè)是丁硫克百威母體的最優(yōu)前處理方法。同時(shí),確定了最佳的超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜檢測(cè)條件。本方法簡(jiǎn)便、快速、靈敏度高、重復(fù)性好、實(shí)用性強(qiáng),可實(shí)現(xiàn)不同蔬菜基質(zhì)中丁硫克百威母體的準(zhǔn)確定性定量分析。