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    利福昔明和精油對金黃色葡萄球菌生物被膜形成的抑制作用

    2020-06-08 03:33:16蔣湘媛楊大偉張立強郭凡溪李穎余祖功
    畜牧與獸醫(yī) 2020年6期
    關鍵詞:薄荷油葡菌菌液

    蔣湘媛,楊大偉,張立強,郭凡溪, 李穎, 余祖功*

    (1. 南京農業(yè)大學動物醫(yī)學院,江蘇 南京 210095;2. 中國獸醫(yī)藥品監(jiān)察所,北京 100081;3. 寧夏農墾賀蘭山奶業(yè)有限公司,寧夏 銀川 750001)

    奶牛乳房炎是乳業(yè)生產中最常見的疾病之一,會致牛奶產量和品質下降,造成巨大的經濟損失[1]。細菌感染是主要病因之一,其中約30%的乳房炎與金黃色葡萄球菌(金葡菌)感染有關[2]。防治以乳房注入抗菌藥物為主。其中干奶期預防,每乳區(qū)注入1~2次,維持整個干奶期(60~65 d);泌乳期治療,療程往往3~6 d或更長,棄奶期常需4~9 d,仍難以有效清除病原菌[3]。有研究顯示金葡菌能夠形成生物被膜,可逃逸抗菌藥物的抑殺[1]。

    金葡菌生物被膜是由金葡菌和其產生的胞外基質形成的復雜結構,胞外基質包括多糖細胞間黏附素(polysaccharide intracellular adhesin, PIA)、細胞外DNA(extracellular DNA,eDNA)和蛋白質,可黏附于生物和非生物表面,一方面保護細菌免受抗生素殺滅,產生耐藥性,另一方面又相當于“細菌庫”長期不斷釋放細菌,致感染遷延為慢性[1]。有研究表明,亞抑菌濃度抗菌藥物與細菌長期接觸,能夠促進或抑制生物被膜形成,如β-內酰胺類、氨基糖苷類、喹諾酮類等[4]。利福昔明屬于利福霉素類抗生素,抗菌譜廣,抗菌作用強,已批準于干奶期應用防治奶牛乳房炎[5]。利福昔明乳房注入后,長期存留于乳區(qū)中,存在以亞抑菌濃度與細菌長期接觸的可能,是否對病原菌生物被膜的形成有促進或抑制作用,尚未見報道,值得研究。

    植物精油是由植物的揮發(fā)性次代謝物和芳香物質等組成的多組分天然混合物,具有抗菌、抗病毒、抗氧化、或免疫調節(jié)等多種生物活性[6]。Hemaiswarya等[7]發(fā)現(xiàn)植物精油與氨芐西林、紅霉素、諾氟沙星等多種抗菌藥物有協(xié)同殺菌作用。食品工業(yè)與醫(yī)藥臨床均發(fā)現(xiàn)精油有阻抑細菌生物被膜形成的作用[8-9]。因此,本試驗測定了利福昔明與精油單獨、聯(lián)合對金葡菌的抑菌活性,并初步研究了兩者單獨和聯(lián)合對強成膜菌株生物被膜形成的作用。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    利福昔明對照品,購自中國食品藥品檢定研究院,批號為130542-200601;3種精油:薄荷油、桉葉油和魚腥草油,購自吉水華源香精有限公司;水解酪蛋白(MH)肉湯培養(yǎng)基,胰蛋白胨大豆肉湯(TSB)培養(yǎng)基,瓊脂糖購自青島高科園海博生物技術有限公司;結晶紫、甲醇、冰醋酸、PBS、葡萄糖等試劑均為分析純。

    1.2 菌株

    金葡菌ATCC29213;9株金葡菌臨床分離株,由南京農業(yè)大學獸醫(yī)藥理學和毒理學實驗室從乳房炎患牛乳汁中分離、鑒定并保存。

    1.3 藥品貯備液的制備

    利福昔明溶液的配制:精密稱取利福昔明適量,用甲醇溶解,配成25 mL濃度為1 280 μg·mL-1的藥液,過濾分裝,保存于-20 ℃冰箱。

    精油溶液的配制:精油、乙醇和吐溫-80以體積比例2∶1∶1配比溶解,配置得到50%的精油溶液,過濾分裝,常溫保存。

    1.4 菌液制備

    將凍存的菌株接種于5 mL TSB培養(yǎng)基復蘇后,接種劃線于胰蛋白胨大豆固體(TSA)培養(yǎng)基,置37 ℃過夜培養(yǎng);挑取平板上的單菌落接種于3 mL TSB培養(yǎng)基中,置37 ℃搖床震蕩孵育10~12 h,用MH肉湯稀釋菌液使其OD595 nm約為0.1,即菌液濃度為1×108CFU/mL,再用MH肉湯或TSB-g培養(yǎng)基(添加1%葡萄糖的TSB)倍比稀釋菌液至得所需濃度。

    1.5 利福昔明和精油對金葡菌最低抑菌濃度(MIC)的測定

    用MH肉湯將藥液稀釋至所需濃度,加200 μL至第1列,無菌96孔板第2~11列加入MH肉湯100 μL,逐次倍比稀釋得系列梯度濃度藥液;將菌液用MH肉湯稀釋100倍,第1~11列加入稀釋完成的菌液100 μL;第12列前4孔每孔加入200 μL MH肉湯為陰性對照,后4孔每孔加入200 μL菌液為陽性對照。每個菌設置2個平行。培養(yǎng)板置于37 ℃培養(yǎng)18~22 h,觀察結果。陰性對照孔無菌生長,陽性對照孔生長良好,試驗有效;試驗孔中細菌生長程度與陽性對照孔進行對比,能夠明顯抑制細菌生長的最小藥物濃度定為MIC。試驗重復3次。

    1.6 利福昔明和精油聯(lián)合的藥敏試驗

    將利福昔明和精油用MH肉湯稀釋至8倍MIC(8 MIC),并分別在2塊96孔板中倍比稀釋得到8、4、2、1、1/2、1/4 MIC的藥液。取其中1塊96孔板,第1~6排的第1加入50 μL的8、4、2、1、1/2、1/4 MIC的利福昔明,第1~6列的1~6孔加入50 μL的8、4、2、1、1/2、1/4 MIC的精油;將菌液用MH肉湯稀釋100倍,第1~6列加入稀釋完成的菌液100 μL;最終藥液濃度梯度為2、1、1/2、1/4、1/8、1/16 MIC;第7行每孔加入200 μL滅菌MH肉湯為陰性對照,第8行每孔加入200 μL菌液為陽性對照。每個菌設置3個平行。培養(yǎng)板置于37 ℃培養(yǎng)18~22 h,觀察結果,并計算聯(lián)合抑菌指數(FICI)。精油聯(lián)合MIC為精油與利福昔明聯(lián)合時精油的MIC值,利福昔明聯(lián)合MIC亦是。FICI =精油聯(lián)合MIC/單獨MIC + 利福昔明聯(lián)合MIC/單獨MIC。結果判斷: FICI≤0.5為協(xié)同;0.52為拮抗。試驗重復3次。

    1.7 利福昔明和精油對金葡菌的最低抑膜濃度(MBIC)測定

    無菌96孔板最外圍加入滅菌的TSB-g培養(yǎng)基200 μL封閉。用滅菌的TSB-g培養(yǎng)基將藥液稀釋至所需濃度,加200 μL至第2列,無菌96孔板第2~9列加入TSB-g培養(yǎng)基100 μL,逐次倍比稀釋得系列梯度濃度藥液;將菌液用TSB-g培養(yǎng)基稀釋10倍,第2~9列加入稀釋完成的菌液100 μL;第10列每孔加入200 μL滅菌TSB-g培養(yǎng)基為陰性對照,第11列每孔加入200 μL菌液為陽性對照。每個菌設置3個平行。培養(yǎng)板置于37 ℃培養(yǎng)48 h。

    棄去懸浮液,PBS輕柔地洗2次,加入200 μL甲醇將被膜固定10 min。棄去甲醇,干燥,加入200 μL 0.1%的結晶紫染色5 min,棄去染色液,PBS輕柔地洗2次,干燥。加入200 μL 33%乙酸,振搖10 min,測定OD595 nm。試驗孔中OD595 nm值與陰性對照孔OD595 nm值一致的最低藥物濃度定為MBIC。試驗重復3次。

    1.8 利福昔明和薄荷油單獨應用對生物被膜形成的影響

    因薄荷油的抑菌效果和與利福昔明的聯(lián)合效果最好,故采用薄荷油與利福昔明進行生物被膜的抑制試驗。結晶紫染色試驗顯示,菌株S.a-2的OD595 nm大于其他菌株,且大于陰性對照OD595 nm的4倍,判定為強成膜株,故選其進行生物被膜影響試驗。

    無菌96孔板最外圍加入TSB-g培養(yǎng)基200 μL封閉。將精油用滅菌的TSB-g培養(yǎng)基稀釋至MIC,加100 μL至第2列,無菌96孔板第2~5列加入TSB-g培養(yǎng)基100 μL,逐次倍比稀釋的系列梯度濃度藥液;第6列加入1 MIC利福昔明100 μL;將菌液用滅菌的TSB-g培養(yǎng)基稀釋10倍,第2~6列加入稀釋完成的菌液100 μL;第7列每孔加入200 μL TSB-g培養(yǎng)基為陰性對照,第8列每孔加入200 μL菌液為無藥對照。每個菌株各3個平行。培養(yǎng)板置于37 ℃培養(yǎng)48 h,結晶紫染色觀察結果。設置3個復孔,試驗重復3次。抑制率=(試驗組OD-陰性對照組OD)/(無藥對照組OD-陰性對照組OD)×100%。

    1.9 利福昔明和薄荷油聯(lián)合應用對生物被膜形成的影響

    無菌96孔板最外圍加入滅菌的TSB-g培養(yǎng)基200 μL封閉。將精油用滅菌的TSB-g培養(yǎng)基稀釋至4 MIC,加200 μL至第2列,無菌96孔板第2~5列加入TSB-g培養(yǎng)基50 μL,逐次倍比稀釋的系列梯度濃度藥液;第2~5列加入2 MIC利福昔明50 μL;將菌液用滅菌的TSB-g培養(yǎng)基稀釋10倍,第2~5列加入稀釋完成的菌液100 μL;第7列每孔加入200 μL TSB-g培養(yǎng)基為陰性對照,第8列每孔加入200 μL菌液為無藥對照。培養(yǎng)板置于37 ℃培養(yǎng)48 h,結晶紫染色觀察結果。設置3個復孔,試驗重復3次。

    1.10 數據分析

    數據分析由SPSS 19.0進行,采用單因素方差分析(ANOVA)檢驗差異。數據用“平均數±標準差”形式表示。

    2 結果與分析

    2.1 利福昔明和精油對浮游菌的抑制作用

    利福昔明和精油對9株金葡菌的MIC見表1,利福昔明和精油的聯(lián)合抑菌作用見表2。桉葉油對金葡菌的MIC為0.63%~5.00%。魚腥草油對菌株S.a-3的MIC大于5.00%,對其他金葡菌的MIC為1.25%~5.00%。薄荷油對金葡菌的MIC為0.16%~2.50%。利福昔明對金葡菌的MIC為0.016~4.00 μg·mL-1。薄荷油和利福昔明聯(lián)合顯示相加作用,桉葉油和魚腥草油與利福昔明顯示無關聯(lián)作用。3種精油中薄荷油的抑菌效果最強,且和利福昔明聯(lián)合效果最好。

    表1 利福昔明和精油對金葡菌MIC的測定結果

    菌株桉葉油/%魚腥草油/%薄荷油/%利福昔明/(μg·mL-1)S.a-11.255.001.250.03S.a-22.501.250.160.03S.a-35.00>5.002.500.03S.a-45.005.001.250.016S.a-50.635.002.500.03S.a-61.255.000.634.00S.a-75.002.501.250.03S.a-82.502.500.310.03S.a-92.502.500.160.016

    2.2 薄荷油與利福昔明對金葡菌的MBIC

    MBIC結果見表3,桉葉油和魚腥草油的抑膜效果較差,桉葉油5株對金葡菌的MBIC高于5.00%,魚腥草油對9株金葡菌的MBIC均大于等于5.00%。薄荷油對于生物被膜的抑制作用較好,MBIC為0.31%~5.00%,4~8號菌株的MBIC/MIC值均為1,而其他精油對于這5株菌的部分MBIC/MIC值可達2~4倍。利福昔明對金葡菌的MBIC為0.06~8.00 μg·mL-1,利福昔明對菌株的MBIC/MIC值多為2或4。利福昔明和薄荷油對菌株S.a-9的MBIC/MIC值最高,均為8。

    表2 利福昔明和精油對金葡菌菌株S.a-2號的聯(lián)合藥敏試驗結果

    A藥單獨MIC/(μg·mL-1)聯(lián)合MIC/(μg·mL-1)倍數B藥單獨MIC/%聯(lián)合MIC/%倍數FICI作用利福昔明0.0310.0311桉葉油2.501.250.51.50無關0.0080.25魚腥草油1.251.2511.25無關0.0080.25薄荷油0.160.080.50.75相加

    注:聯(lián)合MIC指A藥與B藥聯(lián)合用藥的MIC;倍數=聯(lián)合MIC/單獨MIC。

    表3 利福昔明和精油對金葡菌MBIC的測定結果

    菌株桉葉油/%魚腥草油/%薄荷油/%利福昔明/(μg·mL-1)S.a-12.505.005.000.06S.a-21.255.000.630.06S.a-3>5.00>5.005.000.06S.a-4>5.00>5.001.250.06S.a-52.50>5.002.500.13S.a-62.50>5.000.638.00S.a-7>5.00>5.001.250.13S.a-8>5.005.000.310.03S.a-9>5.00>5.001.250.13

    2.3 薄荷油與利福昔明單獨和聯(lián)合對生物被膜形成的影響

    亞抑菌濃度的薄荷油與1/2 MIC的利福昔明單獨和聯(lián)合對菌株S.a-2被膜形成的影響通過結晶紫染色測定,結果如圖1。結果顯示,與無藥對照組相比,利福昔明與薄荷油單獨和聯(lián)合作用時對被膜形成的抑制作用均顯示差異極顯著(P<0.01)。1/2 MIC利福昔明對生物被膜的抑制率為40%;1/2 MIC、1/4 MIC、1/8 MIC、1/16 MIC的薄荷油對于生物被膜的抑制率分別為61%、53%、37%、41%。

    無藥對照組的抑制率為0。**表示與1/2 MIC利福昔明組相比差異極顯著(P<0.01);#表示與同濃度薄荷油組相比差異顯著(P<0.05),##表示差異極顯著(P<0.01)

    圖1 利福昔明與薄荷油單獨和聯(lián)合對金葡菌生物被膜形成的影響

    1/2 MIC、1/8 MIC的薄荷油與利福昔明聯(lián)合對菌株S.a-2生物被膜形成的抑制率為90%和51%,極顯著高于1/2 MIC、1/8 MIC薄荷油組及利福昔明組(P<0.01)。1/4 MIC薄荷油與利福昔明聯(lián)合的抑制率為62%,極顯著高于利福昔明組(P<0.01),顯著高于1/4 MIC薄荷油組(P<0.05);1/16 MIC的薄荷油與利福昔明聯(lián)合的抑制率為44%,與1/16 MIC薄荷油組及利福昔明組差異不顯著(P>0.05)。

    3 討論

    利福昔明作用機制為不可逆與RNA聚合酶β-亞單位結合,抑制細菌RNA合成,達到殺菌目的[10]。本試驗中,利福昔明對大部分奶牛乳房炎源金葡菌的MIC與其對標準株的MIC相近,僅對6號菌除外,其MIC達4.00 μg·mL-1,表明利福昔明對乳房炎源金葡菌有較強的體外抗菌活性。

    精油具有強疏水性,可作用于細菌的細胞膜或線粒體膜結構的脂質成分,改變膜滲透性,導致細胞內物質的漏出,是其抗菌機制之一[6]。李鳳清[11]報道桉葉油和薄荷油對金葡菌MIC范圍為1.49%和2.97%。Hacioglu等[12]發(fā)現(xiàn)薄荷草藥對耐甲氧西林金葡菌的MIC為0.62%。對于本試驗中乳房炎源臨床分離株而言,薄荷油作用強于桉葉油和魚腥草油,MIC范圍分別為0.16%~2.50%、0.63%~5.00%和1.25%~5.00%。

    Kifer等[13]研究顯示,薄荷油與莫匹羅星聯(lián)合對金葡菌有相加作用。本試驗中,薄荷油和利福昔明聯(lián)合對金葡菌也有相加作用,但桉葉油、魚腥草油與利福昔明聯(lián)合表現(xiàn)為無關作用,推測可能由于不同精油有多種不同成分,并且其抗菌作用往往涉及不同機制或靶點[14]。因薄荷油單獨及聯(lián)合利福昔明抑菌作用最好,故采用薄荷油與利福昔明進行后續(xù)生物被膜的抑制試驗。

    生物被膜是一種高度組織化的多細胞聚合物,菌體封閉其中能避免與抗菌藥物接觸[1]。本文利福昔明和精油對大部分金葡菌的MBIC大于MIC,最大可達8倍。有報道,抗生素可對生物被膜有抑制或誘導作用。Liu等[15]發(fā)現(xiàn)金葡菌臨床分離株用1/4 MIC的氨芐西林處理后,生物被膜形成量顯著增加。Silva等[16]發(fā)現(xiàn)用1/2 MIC的慶大霉素處理乳房炎源大腸桿菌,被膜形成量顯著升高。Kamaruzzaman 等[17]發(fā)現(xiàn)15 μg/mL的恩諾沙星能使金葡菌強成膜株的被膜形成量降低10%~27%。本試驗中,1/2 MIC的利福昔明能抑制40%的金葡菌生物被膜形成。

    精油的抑膜效果與其成分組成和成分的正辛醇-水分配系數有關,例如薄荷油的成分主要包括百里酚、薄荷醇和1,8-桉樹腦,百里酚和薄荷醇的正辛醇-水分配系數大于3,具有較高的細胞膜穿透力[13]。Poli等[18]檢測了12種EOs對生物被膜的影響,發(fā)現(xiàn)薄荷油對生物被膜形成的抑制作用最強,且抑制過程受群體感應信號系統(tǒng)調控。本試驗中,薄荷油在各亞抑菌濃度(1/2 MIC~1/16 MIC)都顯示對金葡菌生物被膜有明顯抑制作用。本試驗研究也發(fā)現(xiàn)利福昔明聯(lián)合薄荷油對菌株生物被膜形成的抑制作用,較利福昔明單獨作用時明顯增強,當精油以1/2 MIC濃度聯(lián)合時作用最強,可抑制90%的生物被膜形成,且抑制效果均強于兩者單獨組,但當薄荷油的濃度降低為1/16 MIC時,與單獨組無顯著差異,提示兩者聯(lián)合的抑膜效果與薄荷油濃度相關。

    本試驗發(fā)現(xiàn)薄荷油、利福昔明單獨和聯(lián)合應用對金葡菌生物被膜形成有抑制作用,為后續(xù)探討二者對生物被膜形成的抑制作用機理奠定了基礎。

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