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    高糖脅迫下蜂蜜接合酵母碳代謝流的研究

    2020-05-24 04:43:04劉功良朱寶生高蘇娟白衛(wèi)東費(fèi)永濤艾連中俞劍燊
    中國(guó)食品學(xué)報(bào) 2020年5期
    關(guān)鍵詞:高糖甘油海藻

    劉功良 朱寶生,2 高蘇娟 劉 銳 白衛(wèi)東 費(fèi)永濤 艾連中 俞劍燊 郭 波

    (1 仲愷農(nóng)業(yè)工程學(xué)院輕工食品學(xué)院 廣州510225 2 廣西輕工業(yè)科學(xué)技術(shù)研究院有限公司 南寧530031 3 上海理工大學(xué)醫(yī)療器械與食品學(xué)院 上海200093 4 上海金楓酒業(yè)股份有限公司 上海200120 5 廣東石灣酒廠集團(tuán)有限公司 廣東佛山528031)

    隨著工業(yè)水平的發(fā)展,工業(yè)乙醇的生產(chǎn)越來越偏向于濃醪發(fā)酵。與傳統(tǒng)發(fā)酵相比,濃醪發(fā)酵能提高設(shè)備利用率,降低能耗,節(jié)約成本,提高產(chǎn)物生成率[1-4]。鑒于這些優(yōu)點(diǎn),濃醪發(fā)酵的研究備受關(guān)注。近年來,為使底物更加有效地轉(zhuǎn)化成目標(biāo)產(chǎn)物,細(xì)胞內(nèi)部的代謝流分布成為研究的重點(diǎn)[5-6]。代謝流分析是代謝網(wǎng)絡(luò)分析的重要組成,是代謝工程中用以指導(dǎo)遺傳操作的重要手段[7-8]。作者從蜂蜜中篩選獲得1 株可耐受700 g/L 葡萄糖質(zhì)量濃度的蜂蜜接合酵母(Zygosacharomyces mellis,Z.mellis)LGL-1,鑒定其種屬與抗逆性能,同時(shí)對(duì)蜂蜜接合酵母LGL-1 的發(fā)酵性能進(jìn)行初步探討[9]。本文以蜂蜜接合酵母LGL-1 為研究對(duì)象,考察其在高糖脅迫下的代謝流,旨在為深入研究酵母菌高糖脅迫應(yīng)激機(jī)制,耐高糖酵母的代謝調(diào)控和菌種工業(yè)化改造提供理論依據(jù)。

    1 材料與儀器

    1.1 菌種

    蜂蜜接合酵母LGL-1,保存于中國(guó)典型培養(yǎng)物保藏中心。

    1.2 培養(yǎng)基

    1)高糖培養(yǎng)基[7]稱取13 g 麥芽汁,78 g 葡萄糖,溶于100 mL 去離子水中,可得到400 g/L 的高糖培養(yǎng)基,于70 ℃水浴搖勻,溶解后115 ℃滅菌20 min。

    2)常規(guī)培養(yǎng)基 稱取13 g 麥芽汁,27 g 葡萄糖,溶于100 mL 去離子水中,可得到100 g/L 的常規(guī)培養(yǎng)基,于70 ℃水浴搖勻,溶解后115 ℃滅菌20 min。

    1.3 主要試劑

    蒽酮、海藻糖、甘油、乳酸、蘋果酸、檸檬酸、α-酮戊二酸,阿拉丁生化科技股份有限公司;硫酸,天津市福晨化學(xué)試劑廠。

    1.4 主要設(shè)備與儀器

    SHZ-82 水浴恒溫?fù)u床,常州市國(guó)立試驗(yàn)設(shè)備研究所;G716-3 小型臺(tái)式離心機(jī),廣州市正一有限公司;722G 可見光分光光度計(jì),上海一恒科學(xué)儀器有限公司;JJ600 精密電子天平,常熟雙杰測(cè)試儀器廠;LC-20A 液相色譜儀,島津企業(yè)管理(中國(guó))有限公司。

    2 試驗(yàn)方法

    2.1 蜂蜜接合酵母代謝產(chǎn)物的測(cè)定

    取活化后的蜂蜜接合酵母LGL-1,以10%接種量接入高糖濃度培養(yǎng)基中,初始pH6.0,30 ℃發(fā)酵96 h 后,用比重法測(cè)發(fā)酵液的酒精濃度[10],用HPLC 檢測(cè)酵母細(xì)胞中有機(jī)酸(蘋果酸、α-酮戊二酸、乳酸、檸檬酸)的濃度[11],采用高碘酸鈉-乙酰丙酮法測(cè)定酵母細(xì)胞中甘油的濃度[12-13],采用硫酸蒽酮法測(cè)定酵母細(xì)胞內(nèi)海藻糖的濃度[14-15]。重復(fù)檢測(cè)3 次,利用SPSS 軟件統(tǒng)計(jì)分析數(shù)據(jù)。

    HPLC 的操作條件和參數(shù):選用(NH4)2HPO4為無機(jī)鹽緩沖液,經(jīng)磷酸調(diào)解節(jié)后超聲波脫氣30 min,調(diào)緩沖液pH 值至3.0。甲醇為有機(jī)相,設(shè)定V0.01mol/L(NH4)2HPO4∶V甲醇=95%∶5%為流動(dòng)相,檢測(cè)波長(zhǎng)213 nm,柱溫30 ℃,流速0.8 mL/min,進(jìn)樣體積10 μL。稱量400 mg 蘋果酸、200 mg α-酮戊二酸、320 mg 乳酸、200 mg 檸檬酸,用超純水定容100 mL。取混合標(biāo)準(zhǔn)樣品各2,4,6,8,10 μL,分別平行進(jìn)樣3 次。以含量為橫坐標(biāo),峰面積為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到回歸線方程。取蜂蜜接合酵母LGL-1 在不同糖度條件下的發(fā)酵液,4 ℃、8 000 r/min 離心10 min,取上清,用0.22 μm 濾膜過濾,4℃保存,上機(jī)檢測(cè)。

    2.2 代謝通量的計(jì)算方法

    假設(shè)細(xì)胞中的代謝產(chǎn)物處于擬穩(wěn)態(tài),其濃度變化速率為0,以細(xì)胞內(nèi)代謝流通量平衡為基礎(chǔ),按照物料守恒原理,核算中間代謝產(chǎn)物的積累速率,單位為mmol/(L·h),通過代謝產(chǎn)物的約束條件構(gòu)建方程,結(jié)合實(shí)驗(yàn)測(cè)出F 個(gè)不相關(guān)速率即可確定胞內(nèi)整體流量分布,定量描述生理行為[16-17]。

    2.3 代謝網(wǎng)絡(luò)的構(gòu)建

    蜂蜜接合酵母LGL-1 在穩(wěn)定期的物質(zhì)代謝網(wǎng)絡(luò)[1],見圖5。

    2.4 代謝矩陣方程組的構(gòu)建

    圖5含有13 個(gè)變量(V1-V13),qGlu(葡萄糖代謝通量)、qTre(海藻糖代謝通量)、qGly(甘油代謝通量)、qLA(乳酸代謝通量)、qCIA(檸檬酸代謝通量)、qα-KG(α-酮戊二酸代謝通量)、qMAL(蘋果酸代謝通量)根據(jù)上述實(shí)驗(yàn)方法的測(cè)定結(jié)果計(jì)算得出[2]。假設(shè)細(xì)胞內(nèi)中間代謝產(chǎn)物處于擬穩(wěn)態(tài),構(gòu)成13 個(gè)方程,建立矩陣方程組(表1),應(yīng)用軟件MATLAB 7.0 求解各反應(yīng)途徑的代謝通量。

    3 結(jié)果與分析

    3.1 高糖脅迫下蜂蜜接合酵母LGL-1 的代謝特性

    采用對(duì)數(shù)期的酵母菌接入高糖培養(yǎng)基和常規(guī)培養(yǎng)基中,菌體質(zhì)量變化、葡萄糖消耗、代謝產(chǎn)物的生成情況如圖1所示。

    圖1 高糖培養(yǎng)和常規(guī)培養(yǎng)下酵母菌的細(xì)胞生長(zhǎng)、底物消耗和產(chǎn)物合成(n=3)Fig.2 Grow-up of cell,consumption of substrate and synthesis of products under sugar stress condition and normal condition(n=3)

    由圖1可知,酵母細(xì)胞在高糖培養(yǎng)基和常規(guī)培養(yǎng)基中培養(yǎng)0~12 h,菌體質(zhì)量濃度幾乎相同。培養(yǎng)12~60 h 時(shí),常規(guī)培養(yǎng)基中的酵母菌體質(zhì)量濃度比高糖培養(yǎng)基稍高。蜂蜜接合酵母LGL-1 在常規(guī)培養(yǎng)和高糖培養(yǎng)60 h 后趨于穩(wěn)定,進(jìn)入穩(wěn)定期,菌體質(zhì)量濃度幾乎相同。培養(yǎng)84 h 時(shí),常規(guī)培養(yǎng)和高糖培養(yǎng)時(shí)的菌體質(zhì)量濃度都達(dá)到最高值,分別為5.74 g/L 和5.71 g/L。

    蜂蜜接合酵母LGL-1 培養(yǎng)0~96 h,高糖培養(yǎng)基和常規(guī)培養(yǎng)基中的葡萄糖質(zhì)量濃度不斷降低,葡萄糖不斷被消耗。與常規(guī)培養(yǎng)相比,高糖培養(yǎng)基中蜂蜜接合酵母LGL-1 的葡萄糖消耗速率減慢。常規(guī)培養(yǎng)基中細(xì)胞在72 h 時(shí)葡萄糖質(zhì)量濃度為6.13 g/L,而在高糖培養(yǎng)基中糖耗延遲至96 h 尚未耗盡,葡萄糖質(zhì)量濃度為198.40 g/L。

    隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長(zhǎng),蜂蜜接合酵母LGL-1所產(chǎn)的酒精質(zhì)量濃度逐漸增加。培養(yǎng)0~24 h 時(shí),常規(guī)培養(yǎng)比高糖培養(yǎng)時(shí)酒精生成速率要高。培養(yǎng)24 h 后,常規(guī)培養(yǎng)的酒精生成速率放緩,高糖培養(yǎng)產(chǎn)酒精速率沒有變化。培養(yǎng)96 h 后,常規(guī)培養(yǎng)產(chǎn)酒精含量達(dá)到47.9 g/L,隨后基本趨于穩(wěn)定。而同一培養(yǎng)時(shí)間,高糖培養(yǎng)產(chǎn)酒精含量達(dá)到最高值58.4 g/L,所產(chǎn)酒精質(zhì)量濃度是常規(guī)培養(yǎng)的1.22倍。

    蜂蜜接合酵母 LGL-1 高糖培養(yǎng)0~18 h 時(shí),幾乎沒有乳酸生成,高糖培養(yǎng)18~72 h,乳酸含量逐漸增加,以適應(yīng)高糖環(huán)境。高糖培養(yǎng)72 h 后乳酸含量逐漸降低。常規(guī)培養(yǎng)0~44 h 時(shí),乳酸含量快速增加,44 h 后快速減少。發(fā)酵60 h 后,高糖培養(yǎng)條件下,乳酸濃度高于常規(guī)。在高糖培養(yǎng)條件下乳酸的合成明顯受到抑制,最大值由常規(guī)培養(yǎng)的11.4 g/L 降為高糖時(shí)的6.9 g/L。

    綜上所述,高糖培養(yǎng)基和常規(guī)培養(yǎng)基中的細(xì)胞在生長(zhǎng)過程中沒有顯著差異,說明對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞能較好地抵御高糖脅迫,與彭酈等[18]的試驗(yàn)結(jié)果一致。

    3.2 蜂蜜接合酵母LGL-1 中海藻糖的合成

    海藻糖在高糖脅迫環(huán)境下對(duì)細(xì)胞的生物膜、蛋白質(zhì)和核酸等大分子具有良好的保護(hù)作用,是一種典型的應(yīng)激性代謝物[19-20]。由圖2可知,高糖培養(yǎng)0~60 h 時(shí),蜂蜜接合酵母LGL-1 產(chǎn)海藻糖含量低于在常規(guī)培養(yǎng)基中的海藻糖含量,而在高糖培養(yǎng)60 h 后蜂蜜接合酵母LGL-1 產(chǎn)海藻糖含量一直維持在較高的水平。同一時(shí)間常規(guī)培養(yǎng)中蜂蜜接合酵母LGL-1 產(chǎn)海藻糖含量逐漸減少。常規(guī)培養(yǎng)時(shí)海藻糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)最高達(dá)到細(xì)胞干重的0.37%,而高糖培養(yǎng)時(shí)達(dá)到0.83%。

    3.3 蜂蜜接合酵母LGL-1 中甘油的合成

    甘油含有羥基,親水性能好,能有效地維持細(xì)胞內(nèi)水活度,保護(hù)細(xì)胞免受脫水的侵害,是一種良好的生物相容性溶質(zhì)[21-23]。由圖3可知,培養(yǎng)0~72 h,常規(guī)培養(yǎng)基和高糖培養(yǎng)基生長(zhǎng)的蜂蜜接合酵母LGL-1 中甘油的合成量逐漸增加,培養(yǎng)72 h 后逐漸減少。高糖培養(yǎng)基中甘油的合成量明顯高于常規(guī)培養(yǎng)。常規(guī)培養(yǎng)條件下甘油最高達(dá)1.1 g/L,而高糖培養(yǎng)時(shí)甘油產(chǎn)量最高達(dá)2.6 g/L。

    圖2 高糖培養(yǎng)和常規(guī)培養(yǎng)下蜂蜜接合酵母LGL-1積累的海藻糖(n=3)Fig.2 Trehalose accumulation in Z.mellis LGL-1 under high sugar cultivation and normal cultivation(n=3)

    圖3 高糖培養(yǎng)和常規(guī)培養(yǎng)下蜂蜜接合酵母LGL-1積累的甘油(n=3)Fig.3 Glycerol accumulation in Z.mellis LGL-1 under high sugar cultivation and normal cultivation(n=3)

    3.4 蜂蜜接合酵母LGL-1 中有機(jī)酸的合成

    圖4是有機(jī)酸的合成圖。高糖培養(yǎng)0~6 h 時(shí),蘋果酸、檸檬酸含量開始增加;高糖培養(yǎng)6 h 后,蘋果酸和檸檬酸含量逐漸降低。高糖培養(yǎng)0~60 h時(shí),α-酮戊二酸含量逐漸增加;高糖培養(yǎng)60 h 后,α-酮戊二酸含量逐漸減少。常規(guī)培養(yǎng)0~60 h,蘋果酸和α-酮戊二酸含量逐漸增加;常規(guī)培養(yǎng)60 h 后趨于穩(wěn)定。常規(guī)培養(yǎng)0~6 h,檸檬酸含量增加;常規(guī)培養(yǎng)6~84 h,檸檬酸含量趨于穩(wěn)定;常規(guī)培養(yǎng)84 h后逐漸減少;常規(guī)培養(yǎng)96 h 時(shí)檸檬酸幾乎分解殆盡。

    圖4 高糖培養(yǎng)和常規(guī)培養(yǎng)下蜂蜜接合酵母LGL-1積累的有機(jī)酸(n=3)Fig.4 Organic acid accumulation in Z.mellis LGL-1 underhigh sugar cultivation and normal cultivation(n=3)

    有機(jī)酸合成在高糖培養(yǎng)中明顯高于常規(guī)培養(yǎng)。高糖培養(yǎng)條件下蘋果酸、檸檬酸、α-酮戊二酸含量最高分別達(dá)452.83,73.16,23.31 mg/L,而常規(guī)培養(yǎng)蘋果酸、檸檬酸、α-酮戊二酸含量最高達(dá)160.35,26.19,17.23 mg/L。

    3.5 碳代謝網(wǎng)絡(luò)的構(gòu)建

    由圖1、圖2、圖3和圖4可知,蜂蜜接合酵母LGL-1 在高糖培養(yǎng)條件下,甘油、海藻糖、乳酸和有機(jī)酸等的合成均較常規(guī)培養(yǎng)有顯著提高。蜂蜜接合酵母LGL-1 穩(wěn)定期(60~72 h)細(xì)胞生長(zhǎng)趨于穩(wěn)定,來自底物葡萄糖的碳流量主要用于產(chǎn)物合成。細(xì)胞攝入葡萄糖,使其進(jìn)入中心代謝途徑[24],一些中間代謝產(chǎn)物經(jīng)轉(zhuǎn)化合成與分解重組等形成細(xì)胞結(jié)構(gòu)物質(zhì)單體,從而構(gòu)成了細(xì)胞,其中一些反應(yīng)還涉及如FAD/FADH 和NAD(P)/NAD(P)H 等輔助因子以及ATP/ADP/AMP 的周轉(zhuǎn)[25]。此過程的碳代謝網(wǎng)絡(luò)如圖5所示,其中葡萄糖消耗速率和胞外代謝產(chǎn)物生成速率經(jīng)測(cè)定并換算為代謝通量q。Vi(i=1~13)表示未知流量。圖5中的代謝節(jié)點(diǎn)平衡式和代謝方程式見表1和表2[1,25]。

    圖5 蜂蜜接合酵母LGL-1 在穩(wěn)定期的碳代謝網(wǎng)絡(luò)Fig.5 Carbon metabolism network of Z.mellis LGL-1 at stable stage

    根據(jù)所建立的代謝網(wǎng)絡(luò)和代謝流分析方法,采用Matlab 軟件對(duì)蜂蜜接合酵母LGL-1 在穩(wěn)定期(60~72 h)的代謝流分布進(jìn)行求解,如表1所示。

    表1 蜂蜜接合酵母LGL-1 碳代謝節(jié)點(diǎn)的平衡方程Table1 Equilibrium equations of carbon metabolism node in Z.mellis LGL-1

    表2 碳代謝網(wǎng)絡(luò)中不同代謝產(chǎn)物的化學(xué)計(jì)量關(guān)系和代謝反應(yīng)式Table2 Stoichiometric relationships and metabolic reactions of different metabolites in carbon metabolism network

    表3 高糖培養(yǎng)和常規(guī)培養(yǎng)下蜂蜜接合酵母LGL-1 的代謝流分布Table3 Metabolic flux distribution of Z.mellis LGL-1 under high sugar cultivation and normal cultivation

    3.6 節(jié)點(diǎn)代謝流分布

    由表3可知,高糖環(huán)境下蜂蜜接合酵母LGL-1 的代謝流分布發(fā)生明顯改變。影響生成物產(chǎn)出的6 個(gè)重要代謝節(jié)點(diǎn),即糖酵解途徑(EMP)中六磷酸葡萄糖(G6P)節(jié)點(diǎn)、丙酮酸(PYR)節(jié)點(diǎn)及由磷酸二羥丙酮(DHAP)和3-磷酸甘油醛(GAP)組成的分流節(jié)點(diǎn),三羧酸循環(huán)(TCA)途徑中檸檬酸(CIA)節(jié)點(diǎn)、α-酮戊二酸(α-KG)節(jié)點(diǎn)和蘋果酸(MAL)節(jié)點(diǎn)。本文采用歸一法[26-28]分析代謝流分布情況,如圖6所示。

    由圖6可知,與常規(guī)培養(yǎng)相比,高糖培養(yǎng)條件下蜂蜜接合酵母LGL-1 代謝網(wǎng)絡(luò)中各通量發(fā)生一定變化。代謝產(chǎn)物的節(jié)點(diǎn)分析是影響產(chǎn)物生成的關(guān)鍵。在常規(guī)培養(yǎng)(100 g/L 葡萄糖)的穩(wěn)定期,蜂蜜接合酵母LGL-1 處于擬穩(wěn)態(tài),其碳代謝物質(zhì)的形成與消耗基本維持恒定,來自葡萄糖的碳流量有99.94%流向了DHAP&GAP 節(jié)點(diǎn),而有0.06%的碳流量進(jìn)入合成海藻糖的代謝途徑;在DHAP & GAP 節(jié)點(diǎn)處的碳流量有97.18%進(jìn)入TCA 循環(huán)途徑,有2.82%流向了合成甘油的代謝途徑;而在PYR 節(jié)點(diǎn)處有44.36%的碳流量用于乙醇的形成,有0.02%的代謝碳流量用于乳酸的轉(zhuǎn)化,最終流向乙酰輔酶A 代謝碳流量占有55.62%;在TCA 循環(huán)途徑的各代謝節(jié)點(diǎn)中的碳流量有0.02 %用于檸檬酸的形成,0.02 %的代謝碳流量用于產(chǎn)出α-酮戊二酸,0.09%的代謝碳流量用于產(chǎn)出蘋果酸。與常規(guī)培養(yǎng)比較,高糖(400 g/L)培養(yǎng)時(shí)來自G6P 節(jié)點(diǎn)的碳流量有0.09%流向海藻糖,是常規(guī)培養(yǎng)的1.5 倍;從DHAP&GAP 節(jié)點(diǎn)進(jìn)入三磷酸甘油形成途徑的流量為3.32%,是常規(guī)培養(yǎng)的1.18 倍。從PYR 節(jié)點(diǎn)進(jìn)入乙醇形成途徑的流量為39.58%,是常規(guī)培養(yǎng)的89.22%,流向乳酸的流量為0.01%,與常規(guī)培養(yǎng)幾乎相近,并且從該節(jié)點(diǎn)進(jìn)TCA 循環(huán)途徑的流量為60.41%,較常規(guī)培養(yǎng)增加了4.79%;在TCA 循環(huán)途徑的各代謝節(jié)點(diǎn)中,檸檬酸、α-酮戊二酸、蘋果酸處的碳流量分別為0.03%,0.02%,0.06%,與常規(guī)培養(yǎng)的碳流量相近。酵母發(fā)酵過程中存在一些可逆的反應(yīng),代謝流作用于糖異生途徑,三羧酸途徑的有機(jī)酸積累與丙酮酸的分解動(dòng)態(tài)有關(guān)[26]。

    4 結(jié)論

    圖6 蜂蜜接合酵母LGL-1 在高糖培養(yǎng)(a)和常規(guī)培養(yǎng)(b)下不同節(jié)點(diǎn)處的代謝流分布Fig.6 Metabolic flux distribution of Z.mellis LGL-1 at different metabolic nodes under high sugar cultivation(a)and normal cultivation(b)

    蜂蜜接合酵母LGL-1 在高糖脅迫條件下,其中心代謝途徑中各節(jié)點(diǎn)的代謝通量發(fā)生一定的變化。高糖脅迫時(shí)蜂蜜接合酵母LGL-1 碳流量偏向流入海藻糖、甘油、乙醇等形成途徑和TCA 循環(huán)的代謝支路,與常規(guī)培養(yǎng)相比,海藻糖、甘油和TCA 循環(huán)的通量分別增加了50.00%,17.73%和4.79%,乙醇的代謝通量接近。在高糖條件下蜂蜜接合酵母LGL-1 細(xì)胞中甘油、海藻糖產(chǎn)出通量的變化和進(jìn)入TCA 循環(huán)的碳流量變化也反映了其對(duì)酵母細(xì)胞的重要保護(hù)功能。通過對(duì)蜂蜜接合酵母LGL-1 在高糖脅迫下中心代謝途徑中各節(jié)點(diǎn)的代謝通量的分析,可為釀酒酵母在高糖脅迫條件下的理化特性和應(yīng)激代謝機(jī)制研究提供理論依據(jù)。

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