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    鳳凰單樅多酚提取工藝優(yōu)化及其體外抗氧化和α葡萄糖苷酶抑制活性研究

    2020-05-21 11:51:38
    食品工業(yè)科技 2020年9期
    關(guān)鍵詞:液料糖苷酶茶多酚

    (肇慶學(xué)院食品與制藥工程學(xué)院,廣東肇慶 526061)

    鳳凰單樅是我國特有的歷史傳統(tǒng)名茶,產(chǎn)自廣東省潮州市鳳凰山,由鳳凰水仙種中的優(yōu)異品系單獨采摘加工而成[1]。鳳凰單樅屬烏龍茶類,其栽種歷史悠長,品種資源豐富,成茶品質(zhì)優(yōu)異,具有“形美、味甘、色翠、香郁”的特點[2-3],深受消費者的喜愛。大量研究表明,長期飲茶可以預(yù)防癌癥[4]、糖尿病[5]、心血管疾病[6]、肥胖[7]、骨質(zhì)疏松[8]等慢性疾病,主要在于茶中富含多酚類化合物[9-10]。

    茶多酚主要包括兒茶素類、黃酮類、花青素類和酚酸類物質(zhì),具有抗癌、抗氧化、防輻射、防止動脈硬化、提神解乏、護齒明目等功效,并可作為天然的防腐劑和抗氧化劑輔助應(yīng)用于果蔬、肉制品、乳制品、油脂及糕點類食品等的保鮮及貯藏[11-12]。目前,針對綠茶、紅茶中活性成分提取及其抗氧化活性的研究已有廣泛報道,也有學(xué)者對單樅茶葉的葉片特征[2]、香氣成分[3]等進行了研究。近年來,超聲波提取技術(shù)被廣泛應(yīng)用于植物多酚、黃酮、多糖、氨基酸等天然活性成分的提取。基于超聲波的熱效應(yīng)、機械作用和空穴作用,能夠加快胞內(nèi)物質(zhì)有效溶出,避免長時間高溫下活性物質(zhì)的損失,減少溶劑的使用,實現(xiàn)對目標(biāo)物環(huán)保、高效的提取[13]。

    目前,有關(guān)鳳凰單樅茶中活性成分提取及其功效評價方面的研究工作仍未開展,因此,本研究對鳳凰單樅茶多酚的提取工藝條件進行優(yōu)化,并對多酚提取物的體外抗氧化能力和α-葡萄糖苷酶抑制活性進行研究,為鳳凰單樅價值的充分利用和資源的進一步推廣提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    鳳凰單樅(蜜蘭香型) 購自潮州鳳凰鎮(zhèn);蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品 北京市百靈威科技有限公司;1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)、阿卡波糖 上海阿拉丁試劑公司;福林酚、α-葡萄糖苷酶(EC 3.2.1.20)、4-硝基酚-α-D-吡喃葡糖苷(PNPG) 上海源葉生物科技有限公司;無水乙醇、無水碳酸鈉、沒食子酸、過氧化氫、維生素C、水楊酸等 均為國產(chǎn)分析純。

    DHG-9145A電熱鼓風(fēng)干燥箱 上海一恒科學(xué)儀器有限公司;HHS-21-6數(shù)顯式電熱恒溫水浴鍋 上海博訊實業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠;722S可見分光光度計 上海精密科學(xué)儀器有限公司;Q-400B固體樣品粉碎機 上海冰都電器有限公司;SCIENTZ-ⅡD超聲波細(xì)胞破碎機 寧波新芝生物科技股份有限公司;RE-52AA旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 上海亞榮生化儀器廠;SHZ-DⅢ循環(huán)水式真空泵 鞏義市予華儀器有限責(zé)任公司。

    1.2 實驗方法

    1.2.1 鳳凰單樅茶多酚提取工藝 將鳳凰單樅茶于45 ℃烘干至恒重,粉碎后過60目篩,避光密封保存?zhèn)溆?。?zhǔn)確稱取一定量的鳳凰單樅茶粉末樣品,按一定液料比在實驗設(shè)定的溫度下超聲功率300 W提取一定時間,將粗提液減壓抽濾,所得殘渣在相同條件下重復(fù)提取1次,合并兩次提取的濾液,用乙醇定容至100 mL,得鳳凰單樅茶多酚提取液。

    1.2.2 單因素實驗

    1.2.2.1 乙醇體積分?jǐn)?shù)對多酚得率的影響 在液料比40∶1,溫度60 ℃條件下,按1.2.1中提取流程,分別利用體積分?jǐn)?shù)為60%、65%、70%、75%、80%、85%的乙醇超聲提取30 min,考察乙醇濃度對鳳凰單樅多酚得率的影響。

    1.2.2.2 提取溫度對多酚得率的影響 以70%的乙醇為提取劑,在液料比40∶1條件下,按1.2.1中提取流程,控制溫度為30、40、50、60、70、80 ℃,分別超聲提取30 min,考察溫度對鳳凰單樅多酚得率的影響。

    1.2.2.3 超聲提取時間對多酚得率的影響 以70%的乙醇為提取劑,在液料比40∶1、溫度60 ℃條件下,按1.2.1中提取流程,分別超聲提取20、30、40、50、60、70 min,考察超聲提取時間對鳳凰單樅多酚得率的影響。

    1.2.2.4 液料比對多酚得率的影響 以70%的乙醇為提取劑,在溫度60 ℃條件下,按1.2.1中提取流程,控制液料比為25∶1、30∶1、35∶1、40∶1、45∶1、50∶1,分別超聲提取30 min,考察液料比對鳳凰單樅多酚得率的影響。

    1.2.3 響應(yīng)面試驗 在單因素實驗的基礎(chǔ)上,利用Design-Expert 8.0.6軟件對所考察的四個單因素進行Box-Behnken實驗設(shè)計,優(yōu)化鳳凰單樅茶多酚的提取工藝,響應(yīng)面實驗因素及編碼值見表1。

    表1 響應(yīng)面試驗因素與水平Table 1 Factors and levels of response surface methodology

    1.2.4 多酚含量的測定

    1.2.4.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制 按照李卓瓦等[14]繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線的方法,稍作修改。配制質(zhì)量濃度為1 mg/mL沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)溶液,分別量取0.0、1.0、2.0、3.0、4.0、5.0 mL上述標(biāo)準(zhǔn)液于100 mL容量瓶中,定容后得到?jīng)]食子酸梯度標(biāo)準(zhǔn)液。量取梯度標(biāo)準(zhǔn)液各1 mL,分別加入5 mL福林-酚試劑,充分混勻,靜置5 min,依次加入4 mL 10%的飽和碳酸鈉稀釋液,混勻后置于室溫下反應(yīng)2 h。以去離子水替代沒食子酸溶液作為空白對照,測定反應(yīng)后的各溶液在765 nm處的吸光度值,每組重復(fù)測定3次。以沒食子酸濃度為橫坐標(biāo),吸光度值為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得回歸方程y=0.0142x+0.00317(R2=0.9991),在所選質(zhì)量濃度范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。

    1.2.4.2 鳳凰單樅茶多酚得率計算 參照上述標(biāo)準(zhǔn)曲線的實驗步驟測定鳳凰單樅茶多酚含量,其得率計算公式如下:

    式(1)

    式中:C為鳳凰單樅提取液茶多酚的質(zhì)量濃度/(μg/mL);V為多酚提取液的體積/mL;N為稀釋倍數(shù);m為鳳凰單樅的質(zhì)量/mg。

    1.2.5 鳳凰單樅茶多酚抗氧化活性測定

    1.2.5.1 DPPH自由基清除能力 依據(jù)參考文獻[15],取1.0 mL鳳凰單樅茶多酚提取液,加入0.1 mmol/L DPPH 3.0 mL,室溫充分搖勻,避光靜置反應(yīng)30 min,于517 nm處測定樣品的吸光度A1,用等體積的無水乙醇代替DPPH溶液測得517 nm處的吸光度為A2,用等體積的無水乙醇代替樣品溶液測得517 nm處的吸光度為A0。以VC為陽性對照,每組樣品平行測定3次,計算相應(yīng)均值和清除率。清除率計算公式如下:

    式(2)

    1.2.5.2 羥自由基清除能力 將濃縮后的樣品配制成0.20、0.22、0.24、0.26、0.28 mg/mL濃度梯度的溶液。依據(jù)參考文獻[16],取2.0 mL鳳凰單樅茶多酚提取液于20 mL試管中,再依次加入6 mmol/L FeSO4溶液、6 mmol/L H2O2溶液各2.0 mL,混合均勻放置10 min,再加入6 mmol/L水楊酸2.0 mL,搖勻后于37 ℃恒溫水浴反應(yīng)30 min,以無水乙醇作參比溶液,于波長510 nm處測定其吸光度為A1;用無水乙醇取代水楊酸溶液,測定其吸光度為A2;再以無水乙醇代替樣品溶液測其吸光度為A0。以蒸餾水作參比溶液,以VC為陽性對照,每組樣品平行測定3次,代入公式(2)計算相應(yīng)清除率。

    1.2.6 鳳凰單樅茶多酚抑制α-葡萄糖苷酶活性的測定 參照Yang等[17]的方法測定鳳凰單樅茶多酚對α-葡萄糖苷酶的抑制活性。利用0.2 mol/L的PBS緩沖液(pH6.8)配制α-葡萄糖苷酶液(0.5 U/mL)和PNPG溶液(3.0 mmol/L)。取50 μL不同濃度的鳳凰單樅茶多酚提取物,分別加入20 μLα-葡萄糖苷酶溶液,混勻,37 ℃恒溫孵育15 min,再加入50 μL PNPG溶液,于37 ℃恒溫反應(yīng)15 min,加入70 μL 1 mol/L的Na2CO3溶液終止反應(yīng),于405 nm波長處測得吸光度為A1。用緩沖溶液代替α-葡萄糖苷酶溶液,測其吸光度為A2;以緩沖溶液代替樣品溶液測其吸光度為A0,以阿卡波糖為陽性對照,每組樣品平行測定3次,利用公式(2)計算α-葡萄糖苷酶的抑制率。

    1.3 數(shù)據(jù)處理

    每組實驗均重復(fù)3次,結(jié)果以均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示。采用Excel 2011、SPSS 19.0和Design-Expert V 8.0.6對數(shù)據(jù)進行整理、分析并繪圖,P<0.05表示差異顯著,P<0.01表示差異極顯著。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 單因素實驗

    2.1.1 乙醇體積分?jǐn)?shù)對多酚得率的影響 由圖1可知,鳳凰單樅多酚得率隨乙醇體積分?jǐn)?shù)的增加呈先增大后減小的趨勢,當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)為70%時,得率達最大值18.15%。原因可能在于乙醇體積分?jǐn)?shù)較低時,一些水溶性物質(zhì)的溶出影響多酚的溶出;隨著乙醇體積分?jǐn)?shù)的增加,提取液極性與多酚極性接近,多酚得率增加;當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)過高時,提取溶劑極性減小,導(dǎo)致部分多酚不能溶出,部分脂溶性組分的溶出也不利于多酚的充分提取[18-19]。因此,乙醇體積分?jǐn)?shù)選擇為70%。

    圖1 乙醇體積分?jǐn)?shù)對多酚得率的影響Fig.1 Effect of ethanol concentrationon the extraction yield of polyphenols

    2.1.2 提取溫度對多酚得率的影響 如圖2所示,在30~60 ℃范圍內(nèi),多酚的得率隨著超聲提取溫度的升高明顯增加,在60 ℃時達到最大值18.14%,隨后逐漸減小。原因在于,一定溫度范圍內(nèi),分子熱運動使得多酚類物質(zhì)的溶解速度和溶解量隨著溫度的升高而增加;而多酚是一類多羥基物質(zhì),熱穩(wěn)定性差,當(dāng)溫度繼續(xù)升高超過60 ℃時,易被氧化從而破壞了其結(jié)構(gòu)的完整性[20],導(dǎo)致多酚得率下降。因此,提取溫度選擇為60 ℃。

    圖2 提取溫度對多酚得率的影響Fig.2 Effect of extraction temperatureon the yield of polyphenols

    2.1.3 提取時間對多酚得率影響 由圖3可知,當(dāng)超聲提取時間在20~30 min范圍內(nèi),由于超聲波空化效應(yīng)的影響,分子運動頻率增加、速度加快,溶劑的滲透力增強,以及超聲波對細(xì)胞的機械振動粉碎作用,使細(xì)胞得到快速有效地破碎[13],從而提高了茶多酚溶出效率和溶出量。當(dāng)超聲處理時間為30 min時,茶多酚的得率達到最大值18.12%。此后,隨著超聲提取時間的延長,多酚得率逐漸下降,可能由于超聲振動時間過長對多酚的結(jié)構(gòu)造成破壞[21],導(dǎo)致得率下降。因此,超聲提取鳳凰單樅茶多酚的適宜時間為30 min左右。

    圖3 提取時間對多酚得率的影響Fig.3 Effect of extraction timeon the yield of polyphenols

    2.1.4 液料比對多酚得率影響 由圖4可知,液料比為25∶1~40∶1時,隨著提取溶劑用量的增大,多酚的得率增加,原因在于提高液料比可在一定程度上增大細(xì)胞膜內(nèi)外物質(zhì)的濃度差,促進多酚的溶出。當(dāng)液料比達到40∶1時,多酚得率為18.08%;之后,隨著提取溶劑用量的增大,茶多酚的得率呈下降趨勢,可能由于在此過程中有色素、多糖等其他雜質(zhì)的溶出,從而影響茶多酚的提取效果,導(dǎo)致其得率下降[22]。因此,液料比選擇為40∶1。

    圖4 液料比對多酚得率的影響Fig.4 Effect of liquid-solid ratioon the extraction yield of polyphenols

    2.2 響應(yīng)面試驗結(jié)果

    2.2.1 模型建立及方差分析 利用Design-Expert V 8.0.6對實驗數(shù)據(jù)進行多元回歸擬合,以多酚得率為因變量,乙醇體積分?jǐn)?shù)、提取溫度、超聲提取時間、液料比為自變量,建立回歸方程:Y=-102.69+2.001A+0.573B+0.244C+1.473D+3.4×10-3AB-2.1×10-3AC+8.5×10-3AD+3.75×10-4BC-3×10-3BD+9×10-4CD-0.018A2-6.106×10-3B2-2.306×10-3C2-0.023D2。

    表2 響應(yīng)面試驗設(shè)計與結(jié)果Table 2 Design and results of response surface methodology

    表3 回歸模型方差分析Table 3 Variance analysis for the regression model

    2.2.2 交互作用分析 響應(yīng)面圖的陡峭程度和形狀可以直觀體現(xiàn)各因素間的聯(lián)系及交互作用情況。如圖5所示,為乙醇體積分?jǐn)?shù)、提取溫度、提取時間、液料比間的交互作用的響應(yīng)面圖和等高線圖。

    圖5 各因素交互作用對多酚得率的影響Fig.5 Effects of interaction among factors on the yield of polyphenols

    由圖5可知,乙醇體積分?jǐn)?shù)和提取溫度、乙醇體積分?jǐn)?shù)和液料比、提取溫度和液料比的交互作用坡面圖形狀陡峭,且等高線形狀均趨于橢圓,說明各因素兩兩間交互作用顯著。乙醇體積分?jǐn)?shù)和提取時間、提取溫度和提取時間、提取時間和液料比或響應(yīng)面圖坡面相對平緩,或等高線形狀趨于圓形,表明以上各因素間交互作用不顯著。

    2.2.3 模型的驗證 由響應(yīng)面分析確定鳳凰單樅茶多酚提取的最佳工藝條件為乙醇體積分?jǐn)?shù)69.25%、提取溫度56.84 ℃、提取時間34.24 min、液料比42.30∶1,在此條件下茶多酚得率最高達18.22%??紤]到實際提取的可操作性,將預(yù)測的最適工藝條件修正為:乙醇體積分?jǐn)?shù)70%、提取溫度57 ℃、提取時間34 min、液料比42∶1 (mL/g)。經(jīng)3次提取實驗驗證,得到茶多酚得率的均值為18.18%±0.23%,與預(yù)測值相差較小,表明模型可靠,優(yōu)化所得工藝條件可用于鳳凰單樅多酚的有效提取。

    2.3 鳳凰單縱多酚的抗氧化活性分析

    2.3.1 DPPH自由基清除能力的測定 由圖6可知,鳳凰單樅多酚具有較好的清除DPPH·的能力,其半抑制濃度IC50為8.42 μg/mL,清除率大小與多酚質(zhì)量濃度呈一定量效關(guān)系,且整體清除能力優(yōu)于VC。當(dāng)鳳凰單樅多酚質(zhì)量濃度在5~20 μg/mL范圍內(nèi),對DPPH·的清除率隨著質(zhì)量濃度的增加而快速增大;當(dāng)鳳凰單樅多酚質(zhì)量濃度在20~60 μg/mL范圍時,對DPPH·的清除率增加趨于平緩。VC對DPPH·的清除能力隨著其質(zhì)量濃度的增大而逐漸增強,其半抑制濃度IC50為10.38 μg/mL,清除能力低于鳳凰單樅多酚;當(dāng)質(zhì)量濃度大于40 μg/mL時,其對DPPH·的清除能力(清除率94.0%±1.6%)與鳳凰單樅多酚(清除率96.6%±2.2%)逐漸接近。

    圖6 鳳凰單樅多酚對DPPH自由基的清除作用Fig.6 DPPH radical-scavenging effect ofpolyphenols from Phoenix Dan Cong

    2.3.2 羥基自由基清除能力的測定 由圖7可知,鳳凰單樅多酚具有較強的清除·OH的能力,在實驗測定的質(zhì)量濃度范圍內(nèi),其清除能力與多酚質(zhì)量濃度呈一定量效關(guān)系,半抑制濃度IC50為24.70 μg/mL。隨著質(zhì)量濃度的增加,鳳凰單樅多酚對·OH的清除率持續(xù)增大,且高于VC對OH·的清除率。其原因可能在于,鳳凰單樅中含豐富的兒茶素單體和多聚體,可提供較多的酚羥基,使其對·OH的的清除能力明顯高于VC。當(dāng)質(zhì)量濃度達60 μg/mL時,兩者對·OH的清除能力相當(dāng)。

    圖7 鳳凰單樅多酚對羥基自由基的清除作用Fig.7 OH radical-scavenging effect ofpolyphenols from Phoenix Dan Cong

    2.4 鳳凰單縱多酚抑制α-葡萄糖苷酶活性分析

    由圖8可知,鳳凰單樅多酚提取物對α-葡萄糖苷酶活性具有明顯的抑制作用,隨著多酚質(zhì)量濃度的增大,其抑制作用不斷增強,半抑制濃度IC50為7.24 μg/mL。當(dāng)鳳凰單樅多酚質(zhì)量濃度達20 μg/mL時,α-葡萄糖苷酶的活性幾乎完全被抑制,且鳳凰單樅多酚對α-葡萄糖苷酶的抑制作用整體顯著(P<0.05)高于阿卡波糖(IC50為24.55 μg/mL)。該實驗結(jié)果與Koh等[23]報道的結(jié)果相吻合,原因可能在于,鳳凰單樅中的茶黃素對α-葡萄糖苷酶活性起主要抑制作用。當(dāng)質(zhì)量濃度達60 μg/mL以上時,鳳凰單樅多酚提取物和阿卡波糖對α-葡萄糖苷酶活性的抑制作用逐漸趨近。

    圖8 鳳凰單樅多酚對α-葡萄糖苷酶的抑制作用Fig.8 Inhibition effect of polyphenolsfrom Phoenix Dan Cong on α-glucosidase activity

    3 結(jié)論

    利用超聲輔助提取鳳凰單樅茶多酚,經(jīng)單因素實驗和響應(yīng)面分析優(yōu)化確定鳳凰單樅多酚提取的最佳工藝條件為乙醇體積分?jǐn)?shù)70%、提取溫度57 ℃、提取時間34 min、液料比42∶1 mL/g,該條件下多酚得率達18.18%±0.23%,明顯高于茯磚黑茶(多酚提取率5.21%)[24]和白茶(多酚提取率5.65%)[25],表明優(yōu)化所得工藝條件可有效提取鳳凰單樅多酚,具有良好的開發(fā)應(yīng)用前景??寡趸芯勘砻?提取所得鳳凰單樅多酚對DPPH·和·OH具有較高的清除率,清除能力與其質(zhì)量濃度呈一定量效關(guān)系,其IC50分別為8.42和24.70 μg/mL。在相同質(zhì)量濃度下,鳳凰單樅多酚的IC50均低于對照組VC,表明其抗氧化能力優(yōu)于VC。抑制α-葡萄糖苷酶活性分析研究表明,鳳凰單樅多酚對α-葡萄糖苷酶活性具有顯著的抑制作用,IC50為7.24 μg/mL,抑制效果優(yōu)于對照組阿卡波糖,表明其在餐后血糖控制方面有較好的應(yīng)用前景。該研究彌補了鳳凰單樅多酚提取及體外抗氧化、降糖研究的部分空白,為鳳凰單樅資源的充分利用和保健功能的推廣提供了參考依據(jù)。

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