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    低氧訓(xùn)練對肥胖小鼠Ghrelin-GHSR通路的影響

    2020-05-06 05:58:46龔麗景付鵬宇朱镕鑫張一民許春艷
    關(guān)鍵詞:小鼠水平

    龔麗景,付鵬宇,朱镕鑫,張一民,4,許春艷*

    (1. 北京體育大學(xué)中國運(yùn)動(dòng)與健康研究院,北京 100084; 2. 北京體育大學(xué)運(yùn)動(dòng)人體科學(xué)學(xué)院,北京 100084;3. 上海體育科學(xué)研究所,上海 200030; 4. 運(yùn)動(dòng)與體質(zhì)健康教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京 100084)

    低氧訓(xùn)練是指持續(xù)或間歇在低于正常氧氣濃度的環(huán)境下(高原地區(qū)或人工模擬低氧艙)進(jìn)行訓(xùn)練,利用低氧和訓(xùn)練的雙重缺氧刺激以更多地調(diào)動(dòng)機(jī)體潛能,是提高運(yùn)動(dòng)能力的有效訓(xùn)練方法[1]。隨著全民健身觀念的普及,低氧訓(xùn)練也逐步被引入大眾健康領(lǐng)域。多項(xiàng)研究證明低氧訓(xùn)練具有較好的糖脂代謝的調(diào)控功能,低氧環(huán)境會(huì)減弱食欲,降低消耗吸收功能,從而減少攝食量[2],這些認(rèn)知使低氧訓(xùn)練被認(rèn)為是減肥的有效手段。

    生長激素(growth hormone,GH)促分泌受體的內(nèi)源性配體——胃促生長素/胃饑餓素(Ghrelin)發(fā)揮作用依賴于下丘腦分泌的生長激素促分泌素受體(growth hormone secretagogue receptor,GHSR)[3]。Ghrelin在Ghrelin-O乙酰基轉(zhuǎn)移酶(ghrelin O-acyltransferase,GOAT)的作用下?;瞧渑c受體GHSR結(jié)合產(chǎn)生生物學(xué)效應(yīng)的前提[4]。Ghrelin及相關(guān)通路不僅可通過調(diào)節(jié)神經(jīng)肽Y(neuropeptide Y,NPY)發(fā)揮促食欲功效[5],還調(diào)控能量平衡并參與調(diào)控中樞和外周的脂質(zhì)代謝[6]。低氧環(huán)境下低氧誘導(dǎo)因子(hypoxia inducible factor,HIF)被激活參與機(jī)體的適應(yīng)性應(yīng)答,其中HIF-2α與脂代謝密切相關(guān)[7]。那么低氧訓(xùn)練發(fā)揮減脂控重的作用是否通過調(diào)控胃組織Ghrelin-GHSR通路發(fā)揮作用尚無研究,因此本研究擬通過對肥胖小鼠施加低氧運(yùn)動(dòng)干預(yù),觀察胃組織Ghrelin-GHSR通路相關(guān)基因改變,以探究低氧訓(xùn)練發(fā)揮減肥作用的機(jī)制。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

    60只SPF級雄性C57BL/6J小鼠,3周齡,體重為(8.2 ± 0.1)g,購自北京維通利華實(shí)驗(yàn)動(dòng)物技術(shù)有限公司,【SCXK(京)2015-0004】,飼養(yǎng)期間各組小鼠均自由攝食飲水;普通維持飼料由中國軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心【SCXK(軍)2012-0004】提供;高脂飼料購于美國Research Diet(D12109C,含40% kcal脂肪)。小鼠于北京體育大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)室【SYXK(京)2016-0033】飼養(yǎng):晝夜12/12 h,濕度恒定,溫度控制在22 ~ 25℃。本研究經(jīng)北京體育大學(xué)運(yùn)動(dòng)科學(xué)實(shí)驗(yàn)倫理委員會(huì)批準(zhǔn)(批準(zhǔn)號:IACUC 2015021)。

    1.1.2 實(shí)驗(yàn)試劑

    Anti-GHSR(Abcam ab95250)、Anti-Ghrelin(Abcam ab129383)、Anti-GOAT(Abcam ab170690)、Anti-NPY(Santa Cruz,sc-14728-R)、HIF-2α(Abcam ab109616)、anti-Tubulin(博奧森 bs-4511R),HRP標(biāo)記的山羊抗兔IgG(Goat Anti-rabbit IgG/HRP,博奧森 bs-0295G-HRP),SuperSignalTMWest Femto Maximum Sensitivity Substrate(Thermo Scientific, 34095),Rat/mouse Ghrelin(Total) ELISA Kits(Merck EZRGRT-91 K),MiniBEST Universal RNA Extraction Kit(TaKaRa 9767),PrimeScriptTMMaster Mix(TaKaRa RR036A),SYBR Premix Ex Taq II(TaKaRa RR820A)。

    1.1.3 儀器

    實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀(ABI 7500,美國),動(dòng)物跑臺(tái)(杭州段氏DSPT-215,中國),制氮機(jī)(北京創(chuàng)文,中國),空氣壓縮機(jī)(英格索蘭,美國),全自動(dòng)生化分析儀(日立7020,日本),酶標(biāo)儀(Bio-Rad 680,美國), 超微量分光光度儀(NanoDrop 2000,美國),蛋白轉(zhuǎn)印儀(Thermo Scientific iBlot 2,美國),ChemiDocTMXRS+成像系統(tǒng)(Bio-Rad,美國)。

    1.2 方法

    1.2.1 動(dòng)物分組及實(shí)驗(yàn)干預(yù)

    小鼠隨機(jī)分為普通膳食對照組(C,n=8,飼喂普通維持飼料)和高脂膳食組(H,n=52,飼喂高脂飼料)。8周后,選擇H組大于C組平均體重的20%作為肥胖模型,隨機(jī)分為:肥胖對照組(HC,n=8)、肥胖常氧運(yùn)動(dòng)組(HE,n=8)、肥胖低氧暴露組(HH,n=8)和肥胖低氧運(yùn)動(dòng)組(HHE,n=8),繼續(xù)飼喂高脂飼料。HE和HHE組進(jìn)行跑臺(tái)訓(xùn)練,速度12 m/min,1 h/d。HH和HHE組暴露在11.2%的低氧房中,8 h/d;其中HHE組每天固定時(shí)間在低氧環(huán)境中運(yùn)動(dòng)1 h,6次/周。干預(yù)共4周。

    1.2.2 形態(tài)指標(biāo)測試及取材

    每周記錄體重和攝食量。完成訓(xùn)練后禁食12 h,腹腔麻醉(1%的戊巴比妥鈉,40 mg/kg體重),心臟取血,收集血清,-20℃保存。開腹取胃底部和開顱取下丘腦組織,分別置于RNA保存液和-80℃保存,分別用于RNA和蛋白含量的測試。

    1.2.3 血液生化指標(biāo)和總Ghrelin水平測試

    采用全自動(dòng)生化分析儀測試血液甘油三酯(triglyceride,TG)、總膽固醇(total cholesterol,TC)和血糖(glucose,GLU)水平。酶聯(lián)免疫吸附法(enzyme linked immunosorbent assay,ELISA)測試血清總Ghrelin水平。

    1.2.4 下丘腦GHSR和胃組織Ghrelin mRNA相對含量測定

    使用試劑盒提取胃和下丘腦總RNA,檢測總RNA濃度,逆轉(zhuǎn)錄獲取cDNA后,按說明書進(jìn)行PCR反應(yīng)。Ghrelin和GHSR引物參考付鵬宇等[8],由生工生物工程(上海)有限公司合成。18S為內(nèi)參基因(德國QIAGEN QT01036875)。采用比較閾值法(△△Ct法)對目的基因的相對表達(dá)進(jìn)行分析。

    1.2.5 下丘腦GHSR、NPY和胃組織Ghrelin、Goat、HIF-2α蛋白水平測定

    提取下丘腦和胃組織總蛋白質(zhì),BCA法定量總蛋白質(zhì)濃度,用蛋白免疫印跡法(Western Blot,WB)檢測各蛋白的表達(dá)情況。電泳分離蛋白,轉(zhuǎn)至NC膜,BSA封閉1 h,分別4℃孵育一抗過夜,洗去未結(jié)合的一抗,室溫孵育二抗1 h,洗去未結(jié)合的二抗,滴加化學(xué)發(fā)光HRP底物,立即用ChemiDocTMXRS+成像系統(tǒng)(Bio-Rad)曝光條帶,使用Image Lab軟件進(jìn)行相對定量分析。

    1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

    2 結(jié)果

    2.1 干預(yù)期間小鼠體重和攝食量變化

    各組小鼠初始體重平均值為(8.2 ± 0.1)g,飼喂8周高脂飼料后,將H組體重大于C組平均體重20%的小鼠隨機(jī)分成HC組、HE組、HH組和HHE組,未達(dá)標(biāo)小鼠棄去。此時(shí),HC組、HE組、HH組和HHE組小鼠體重極顯著高于C組(P< 0.01);干預(yù)4周(飼喂12周),HC組顯著高于C組,HH、HE和HHE組較HC組顯著下降(P< 0.05)。適應(yīng)性喂養(yǎng)結(jié)束后,C組飼喂普通維持飼料,H組持續(xù)飼喂高脂飼料。建立肥胖模型期間(8周前),C組小鼠攝食總量較H組少;飼喂第10周時(shí)(干預(yù)2周),C組攝食量仍低于高脂膳食各組,HE、HH和HHE組較HC組降低;飼喂第12周時(shí)(干預(yù)4周),C組攝食量高于高脂膳食各組,HE、HH和HHE組與HC組攝食量接近,見圖1。

    2.2 各組小鼠血清TG、TC、GLU和總Ghrelin水平

    4周干預(yù)完成后,HC組各項(xiàng)血液指標(biāo)均顯著高于C組(P< 0.05);與HC組相比,HE組血清TG、TC水平無顯著性差異,但GLU水平顯著性降低(P< 0.05);HH組血清TC和GLU水平顯著低于HC組,且TC水平顯著低于HE組(P< 0.05);HHE組血清TG水平較HC組無顯著性差異,TC水平顯著低于HE組,GLU水平顯著低于HC和HE組(P<0.05)。HH組和HHE組小鼠的各項(xiàng)指標(biāo)無顯著差異。4周干預(yù)后,HC組血清總Ghrelin水平較C組無顯著性差異;HE組較HC組無顯著性差異;HH和HHE組小鼠血清總Ghrelin含量較HC組均出現(xiàn)顯著性上升,且HHE組較HE組顯著性上升(P< 0.05),見表1。

    注:C,普通膳食對照組;HC,肥胖對照組;HE,肥胖常氧運(yùn)動(dòng)組;HH,肥胖低氧暴露組;HHE,肥胖低氧運(yùn)動(dòng)組。下表/圖同。與C組相比,*P< 0.05,**P< 0.01;與HC組相比,#P < 0.05。圖1 小鼠體重和攝食量變化Note. C, the control group. HC, obese control group.HE, obese exercise group.HH, obese hypoxic exposure group. HHE, obese hypoxic exercise group. The same in the following table and figures. Compared with C group,*P < 0.05,**P < 0.01. Compared with HC group,#P < 0.05.Figure 1 Changes in body weight and food intake in mice

    表1 各組小鼠血清TG、TC、GLU和總Ghrelin水平(n=8)
    Table 1 Levels of serum TG, TC, GLU and total Ghrelin in each group of mice(n=8)

    組別GroupsTG (mg/dL)TC (mmol/L)GLU (mmol/L)Ghrelin (mmol/L)C0.29 ± 0.022.03 ± 0.098.50 ± 0.780.31 ± 0.09HC 0.34 ± 0.03*4.54 ± 0.03*10.22 ± 1.77*0.30 ± 0.06HE0.33 ± 0.044.66 ± 0.11 8.25 ± 1.33#0.32 ± 0.11HH0.35 ± 0.07 3.98 ± 0.30#△ 8.06 ± 1.29# 0.36 ± 0.15#HHE0.33 ± 0.08 4.24 ± 0.26△ 6.38 ± 1.72#△ 0.40 ± 0.21#△

    注:與C組相比,*P< 0.05;與HC組相比,#P< 0.05;與HE組相比,△P< 0.05。

    Note. Compared with C group,*P< 0.05. Compared with HC group,#P< 0.05. Compared with HE group,△P< 0.05.

    2.3 下丘腦GHSR和胃組織Ghrelin mRNA的表達(dá)水平

    與C組相比,12周高脂喂養(yǎng)后,HC組下丘腦GHSR和胃組織Ghrelin mRNA表達(dá)水平均極顯著降低(P< 0.01);4周干預(yù)后,HE和HH組下丘腦GHSR mRNA表達(dá)水平較HC組有增加趨勢,但無顯著差異,但HE和HH組胃組織Ghrelin mRNA表達(dá)水平較HC組顯著性升高(P< 0.01或P< 0.05);HHE組下丘腦GHSR mRNA表達(dá)水平較HC組顯著上升,胃組織Ghrelin mRNA表達(dá)水平較HC組極顯著性增加,較HE組也顯著性增加(P< 0.05或P< 0.01),見圖2。

    注:與C組相比,**P< 0.01;與HC組相比,#P < 0.05,##P < 0.01;與HE組相比,△P < 0.05。圖2 小鼠下丘腦GHSR和胃組織Ghrelin mRNA表達(dá)水平Note. Compared with C group,**P < 0.01. Compared with HC group,#P < 0.05,##P < 0.01. Compared with HE group,△P < 0.05.Figure 2 GHSR mRNA expression in hypothalamic tissues and Ghrelin mRNA expression in gastric tissues of mice

    2.4 下丘腦和胃組織的蛋白表達(dá)水平

    12周高脂飼料喂養(yǎng)后,HC組下丘腦GHSR和NPY的蛋白表達(dá)水平較C組無顯著性差異;HE、HH和HHE組下丘腦GHSR蛋白表達(dá)水平較HC組顯著增加(P< 0.05);HE和HHE組下丘腦NPY蛋白表達(dá)水平較HC組顯著上調(diào)(P< 0.05)(見圖3 A,B)。高脂飼喂后,HC組胃組織Ghrelin、Goat和HIF-2α的蛋白表達(dá)水平與C組相比無顯著差異;HE組胃組織Ghrelin、Goat較HC組顯著增加(P< 0.05);HH組胃組織Ghrelin和HIF-2α的蛋白表達(dá)水平較HC組顯著增加(P< 0.05);HHE組胃組織Ghrelin、Goat和HIF-2α的蛋白表達(dá)水平較HC組顯著增加,且HIF-2α蛋白表達(dá)水平顯著高于HE組(P< 0.05)(見圖3C,D)。

    注:與HC組相比,#P < 0.05;與HE組相比,△P < 0.05。圖3 下丘腦和胃組織相關(guān)蛋白WB條帶灰度值(A,C)和相對含量(B,D)Note. Compared with HC group,#P < 0.05. Compared with HE group,△P < 0.05.Figure 3 WB results (A, C) and relative amounts (B, D) of hypothalamic and gastric tissue-associated proteins of mice

    3 討論

    Ghrelin是由胃底粘膜腺中的X/A樣細(xì)胞合成和分泌的28個(gè)氨基酸的活性肽激素,是調(diào)節(jié)食欲的重要激素[3]。近年來,Ghrelin被認(rèn)為具有對抗肥胖的潛能并開始引起廣泛關(guān)注[6]。

    研究發(fā)現(xiàn)循環(huán)系統(tǒng)中Ghrelin含量與體重成反比[9]。肥胖機(jī)體下丘腦和胃組織中的Ghrelin水平會(huì)出現(xiàn)下降[10-11]。本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn)肥胖小鼠胃組織Ghrelin和下丘腦GHSR mRNA水平出現(xiàn)顯著性下降,血脂和血糖(TG、TC和GLU)水平上調(diào)。研究發(fā)現(xiàn),Ghrelin可依賴GHSR發(fā)揮調(diào)節(jié)脂代謝的作用,Ghrelin-GHSR通路可通過促進(jìn)5’-磷酸腺苷蛋白激酶(adenosine 5’-monophosphate-activated protein kinase,AMPK)磷酸化,以激活A(yù)MPK,使乙酰輔酶A羧化酶(acetyl-CoA carboxylase,ACC)磷酸化失活,減少丙二酰-CoA(malonyl-CoA)的積累,導(dǎo)致肉堿棕櫚?;D(zhuǎn)移酶1(carnitine palmitoyl transferase 1,CPT1)活性增加以促進(jìn)脂肪酸氧化[12]。Ghrelin刺激NPY神經(jīng)元可阻斷黑色素皮質(zhì)素受體3和4(melanocortin receptor 3/4,MC3/4R),隨后通過交感神經(jīng)調(diào)節(jié)肝臟、白色脂肪組織、棕色脂肪組織和骨骼肌組織脂代謝相關(guān)基因表達(dá)以影響外周脂代謝水平[13-14]。此外,Ghrelin還是葡萄糖代謝的中介物,并可調(diào)節(jié)胰島β細(xì)胞分泌胰島素[15]。推測Ghrelin-GHSR通路在調(diào)控糖脂代謝方面發(fā)揮著重要的作用,然而肥胖機(jī)體組織Ghrelin-GHSR通路表達(dá)下調(diào),出現(xiàn)糖脂代謝紊亂,血糖血脂水平失調(diào)[16],從而加劇對機(jī)體的危害[17]。

    低氧暴露下體重的丟失常被認(rèn)為與攝食量下調(diào)所致[2, 18]。本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),低氧暴露的最初階段,低氧組(HH和HHE組)小鼠攝食量較常氧組(H和HE組)均出現(xiàn)顯著下降,但隨著低氧暴露時(shí)間延長,低氧組小鼠攝食量逐漸回升,在4周干預(yù)結(jié)束時(shí),與常氧組接近。機(jī)體攝食功能對長期低氧暴露的適應(yīng)可能與Ghrelin-GHSR的調(diào)控有關(guān)。Ghrelin發(fā)揮調(diào)節(jié)食欲的作用是通過生長激素促分泌受體GHSR所介導(dǎo)的,GHSR高表達(dá)于下丘腦中調(diào)節(jié)攝食和體重平衡的細(xì)胞群中,如弓狀核NPY神經(jīng)元和腹內(nèi)側(cè)核的脂肪酸合成酶(fatty acid synthase,F(xiàn)AS)神經(jīng)元[19]。而NPY神經(jīng)元發(fā)揮調(diào)節(jié)食欲的作用由Ghrelin特異性介導(dǎo)的,其他促食欲激素如黑色素聚集激素(melanin-concentrating hormone,MCH)和前原食欲素(prepro-orexins)則無此作用[5]。研究發(fā)現(xiàn)急性低氧暴露(12 h)會(huì)導(dǎo)致大鼠胃組織Ghrelin mRNA和蛋白水平極具下調(diào),但隨著暴露時(shí)間的延長(24 h和48 h),Ghrelin水平逐漸回升,甚至超過常氧水平[8]。本研究中,低氧訓(xùn)練組小鼠血清Ghrelin總量、胃組織中Ghrelin和Goat及下丘腦GHSR和NPY蛋白表達(dá)水平顯著上升,這可能與Ghrelin-GHSR通路被激活以抵抗低氧的進(jìn)一步損傷和參與前期胃組織損傷的修復(fù)有關(guān)[20]。而常氧運(yùn)動(dòng)小鼠Ghrelin和NPY蛋白水平雖增加但其攝食量未明顯改變,可能與運(yùn)動(dòng)后產(chǎn)熱增加導(dǎo)致體溫上升,從而抑制了食欲有關(guān)[21]。

    本研究中低氧訓(xùn)練干預(yù)后,肥胖小鼠血清TC和GLU水平顯著下降,并伴隨著血液總Ghrelin水平的上調(diào)和胃組織中Ghrelin-GHSR通路相關(guān)基因mRNA和蛋白水平表達(dá)的增加。這可能與運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練對Ghrelin-GHSR通路的調(diào)控有關(guān)。由于Ghrelin和運(yùn)動(dòng)均可發(fā)揮促進(jìn)能量代謝平衡的作用,因此兩者間的相互影響作用引起了學(xué)者們的關(guān)注[22]。研究發(fā)現(xiàn),93 d的騎行運(yùn)動(dòng)后,健康成年男性空腹血液Ghrelin水平增加26%,且體重降低6%[23]。同時(shí),胰島素抵抗和高胰島素血癥程度與血液Ghrelin水平呈負(fù)相關(guān),這可能是運(yùn)動(dòng)促進(jìn)糖脂代謝平衡的重要機(jī)制[24]。游泳訓(xùn)練可增加胃組織中Ghrelin表達(dá),從而降低肥胖大鼠體重和內(nèi)臟脂肪含量[10]。此外,運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練提高胃組織Ghrelin表達(dá)還具有促進(jìn)胃的排空和腸道的推進(jìn)力的作用[25],從而有助于代謝廢物的排出和營養(yǎng)物質(zhì)的吸收[26]。運(yùn)動(dòng)發(fā)揮促進(jìn)Ghrelin-GHSR通路的表達(dá)可能與交感神經(jīng)活動(dòng)增強(qiáng)有關(guān),運(yùn)動(dòng)激活交感神經(jīng)和循環(huán)系統(tǒng)中腎上腺素和去甲腎上腺素(兒茶酚胺)的水平,同時(shí)胃組織中產(chǎn)生Ghrelin的細(xì)胞具有α1和β1腎上腺素能受體,而腎上腺素和去甲腎上腺素可刺激β1以促進(jìn)胃組織分泌Ghrelin[27-28]。通過本研究結(jié)果還可觀察到低氧運(yùn)動(dòng)調(diào)控肥胖機(jī)體糖脂代謝的作用優(yōu)于常氧訓(xùn)練,這可能與低氧環(huán)境所激活的HIF-2α調(diào)控作用有關(guān)。本研究結(jié)果中低氧訓(xùn)練后肥胖小鼠下丘腦HIF-2α的蛋白表達(dá)水平顯著增加。HIF是機(jī)體缺氧條件下參與組織細(xì)胞低氧應(yīng)答敏感性轉(zhuǎn)錄因子,它的表達(dá)是機(jī)體適應(yīng)低氧的起始步驟和關(guān)鍵環(huán)節(jié)。其中HIF-2α在脂代謝中發(fā)揮重要的作用,可參與脂滴的形成、脂肪酸的合成和β-氧化及膽固醇代謝的調(diào)節(jié)[7]。HIF-2α缺失會(huì)造成機(jī)體脂代謝的異常[29]。低氧暴露所致的食欲下降僅發(fā)生在低氧暴露初期,隨著低氧時(shí)間的延長,食欲逐漸恢復(fù)至常氧水平,但仍可達(dá)到降低體重的效果,這可能與長期低氧暴露通過刺激HIF-2α以促進(jìn)脂代謝有關(guān)。

    本研究結(jié)果提示,低氧暴露和運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練干預(yù)后肥胖小鼠的體重和血脂血糖水平下降,并伴隨著Ghrelin-GHSR通路的上調(diào),但攝食量并未出現(xiàn)明顯下降,提示低氧和運(yùn)動(dòng)通過Ghrelin-GHSR通路改善高脂膳食所致肥胖主要與胃腸功能增強(qiáng)和糖脂代謝機(jī)能促進(jìn)有關(guān)。而低氧訓(xùn)練中,低氧和運(yùn)動(dòng)的雙重刺激加速了肥胖機(jī)體的糖脂代謝能力,從而更有利于控制機(jī)體的血糖血脂水平及抵抗高脂膳食對體重的增加。

    肥胖小鼠胃組織Ghrelin和下丘腦GHSR水平降低,伴隨著血脂血糖水平的升高和體重的增加;低氧訓(xùn)練通過肥胖小鼠Ghrelin-GHSR通路影響糖脂代謝,改善肥胖機(jī)體體重和血脂血糖穩(wěn)態(tài)。

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