邰昭霞,費雪瑜,瞿思穎,王涵芝,陳盧杭,蔣永亮,方劍喬*,何曉芬*
(1. 浙江中醫(yī)藥大學第三臨床醫(yī)學院康復(fù)醫(yī)學院,杭州 310053; 2. 浙江省針灸神經(jīng)病學研究重點實驗室,杭州 310053; 3. 浙江中醫(yī)藥大學針灸研究所,杭州 310053)
糖尿病神經(jīng)痛(diabetic neuropathic pain,DNP)是糖尿病最常見的并發(fā)癥之一,其發(fā)病機制尚不明確,有研究表明其與代謝、細胞信號通路以及相關(guān)神經(jīng)遞質(zhì)的改變等因素有關(guān),嚴重影響患者生活質(zhì)量,且缺乏有效的治療手段[1]。尋找有效治療糖尿病神經(jīng)痛的方法,是糖尿病并發(fā)癥防止領(lǐng)域亟待解決的問題。核轉(zhuǎn)錄因子κB(nuclear factor kappa B,NF-κB)是一種蛋白質(zhì)復(fù)合物,其在炎癥反應(yīng)、氧化應(yīng)激以及各種疾病的發(fā)生發(fā)展過程中都發(fā)揮著重要作用[2]。NF-κB p65是NF-κB家族最重要的成員,也是最常見的活化形式;有研究表明,NF-κB p65在大鼠DNP的發(fā)生過程起著重要作用[3]。目前電針被廣泛用于治療各種慢性疼痛,它能有效控制糖尿病神經(jīng)痛[4-5],且有研究表明在大腦中動脈閉塞模型中,電針能下調(diào)梗死灶周圍組織中NF-κB p65的表達[6]。但電針干預(yù)DNP是否通過下調(diào)脊髓NF-κB p65來起到干預(yù)糖尿病神經(jīng)痛的作用尚有待明確。因此,本實驗選取高脂高糖飼養(yǎng)聯(lián)合鏈脲佐菌素(streptozotocin,STZ)腹腔注射誘導的糖尿病神經(jīng)痛模型,探討電針對糖尿病神經(jīng)痛的鎮(zhèn)痛作用是否與有效干預(yù)DNP大鼠脊髓背角NF-κB p65蛋白表達有關(guān)。
1.1.1 實驗動物
選用6周齡健康雄性SPF級SD大鼠30只,體重(180 ± 20)g,購自中國科學院上海實驗動物中心【SCXK(滬)2013-0016】,由浙江中醫(yī)藥大學動物實驗研究中心飼養(yǎng)【SYXK (浙) 2013-0184】。自由飲水,晝夜明暗周期12 h/12 h。所有實驗操作均符合實驗動物倫理學要求(倫理審批號為:IACUC-20180319-13)。
1.1.2 試劑與儀器
鏈脲佐菌素(Sigma,S0130), 兔抗NF-κB p65 抗體(CST,8242),山羊抗兔二抗(CST,7074),RIPA裂解液(碧云天,P0013B),BCA蛋白定量試劑盒(Thermo,23227),SDS上樣緩沖液(碧云天,P0015B),ECL發(fā)光顯色液(碧云天,P0018),足底熱輻射測痛儀(意大利UGO BASILE,37360),動態(tài)足底測痛儀(意大利UGO BASILE,37450),羅氏卓越型血糖儀(Roche ACCU-CHEK Performa)。
1.2.1 動物分組與造模
將30只大鼠,隨機分為正常組(normal group,n=8)和造模組(n=22)。正常組用嚙齒類動物標準顆粒飼料飼養(yǎng),造模組用高脂高糖飼料喂養(yǎng)(72.5%普通飼料 + 10%豬油 + 10%蔗糖 + 2%膽固醇 + 0.5%膽酸鈉 + 5%蛋黃粉;購自浙江省醫(yī)學科學院實驗動物中心),喂養(yǎng)5周后禁食16 h,造模組以小劑量鏈脲佐菌素(streptozotocin,STZ,35 mg/kg)腹腔注射1次,正常組僅腹腔注射相同劑量的檸檬酸緩沖液。于STZ注射后2周即第7周分別測空腹血糖(fasting blood glucose,F(xiàn)BG)、熱痛閾(paw withdrawal latency,PWL)、機械痛閾(paw withdrawal threshold,PWT),F(xiàn)BG ≥ 11.1 mmol/L并且痛閾下降≥15%[7]的造模組大鼠入選糖尿病神經(jīng)痛模型。其余未達到此標準者則予以剔除。將造模成功的糖尿病神經(jīng)痛模型大鼠再隨機分為糖尿病神經(jīng)痛組(DNP group,n=9)和糖尿病神經(jīng)痛+電針組(DNP+EA group,n=9)。
1.2.2 空腹血糖測定
分別于0周(base)、5周(5 weeks)、7周(7 weeks)、8周(8 weeks)這4個時間點檢測大鼠的FBG。大鼠禁食8 h后尾靜脈取血用羅氏卓越型血糖儀及其配套試紙測定各組大鼠的FBG。
1.2.3 機械痛閾測定
參照壽升蕓等[7]測定大鼠機械痛閾方法,采用動態(tài)足底觸覺儀檢測各組大鼠0周(base)、5周(5 weeks)、7周(7 weeks)、8周(8 weeks)這4個時間點的PWT,每只大鼠連續(xù)測量5次,每次測量間隔5 min,去除最大值和最小值,最終取3次的平均值作為大鼠機械痛閾值。
1.2.4 熱痛閾測定
參照項璇兒等[8]測定大鼠PWL的方法,采用足底熱輻射測痛儀檢測各組大鼠0周(base)、5周(5 weeks)、7周(7 weeks)、8周(8 weeks)這4個時間點的熱痛閾。連續(xù)測量5次,每次間隔5 min,去除最大值和最小值,取3次平均值作為大鼠熱痛閾。
1.2.5 電針干預(yù)
電針干預(yù)方法:大鼠固定后,參照華興邦大鼠穴位圖譜,選取雙側(cè)足三里(膝關(guān)節(jié)后外側(cè),在腓骨小頭下5 mm)、昆侖穴(后肢外踝與跟腱之間的凹陷中),采用0.25 mm×1 mm針灸針,進針后用LH-202H韓氏穴位暨神經(jīng)刺激儀連接兩穴位,電針頻率為2 Hz、強度為1 mA干預(yù)15 min后2 mA干預(yù)15 min,共30 min。電針干預(yù)于第7周開始,每天1次,共7次。Normal組大鼠和DNP組大鼠僅給予和DNP+EA組相同的固定。
1.2.6 蘇木精-伊紅(hematoxylin-eosin,HE)染色觀察坐骨神經(jīng)的變化
大鼠用戊巴比妥腹腔注射麻醉,開胸暴露心臟,先經(jīng)生理鹽水(4℃預(yù)冷)快速灌注,再4%多聚甲醛灌注后取出大鼠坐骨神經(jīng)中段(距近心端3 mm,遠心端2 mm)置于2.5%的戊二醛溶液中固定。再經(jīng)脫水、透明、石蠟包埋、切片、染色、脫水及封固等步驟后觀察。
1.2.7 免疫印跡法檢測大鼠脊髓背角NF-κB p65蛋白的表達
大鼠用戊巴比妥腹腔注射麻醉,經(jīng)生理鹽水(4℃預(yù)冷)快速灌注后,參照杜俊英等[9]提取脊髓的方法,剪斷脊柱兩旁的肋骨,剪取第四腰椎節(jié)段以上約5 cm左右的脊柱,用50 mL注射器沖出脊髓。留取腰膨大部分,從正中分開成左右兩側(cè),用刀片切取脊髓背角。用RIPA裂解液提取脊髓背角總蛋白,BCA法測定蛋白濃度,加入SDS上樣緩沖液后在100℃條件下變性3 min。通過SDS-PAGE電泳轉(zhuǎn)印至PVDF膜上。5%脫脂奶粉中封閉1 h后于兔抗NF-κB p65 一抗(1∶1000)稀釋液中孵育過夜,洗滌后與山羊抗兔二抗(1∶5000)搖床孵育2 h。與ECL發(fā)光顯色液反應(yīng)顯影,利用LAS4010凝膠成像儀采集圖像,圖片用Image J分析。
如圖1所示,各組大鼠基礎(chǔ)(base)血糖及高脂高糖喂養(yǎng)5周(5 weeks)血糖均無明顯差異;高脂高糖喂養(yǎng)5周后予以STZ單次腹腔注射2周后即第7周(7 weeks),DNP組及DNP+ EA組大鼠血糖明顯上升(P< 0.01;P< 0.01);電針干預(yù)1周(8 weeks)對DNP大鼠血糖無明顯作用。
如圖2所示,各組大鼠基礎(chǔ)(base)機械痛閾及高脂高糖喂養(yǎng)5周(5 weeks)機械痛閾均無明顯差異;高脂高糖喂養(yǎng)5周后予以STZ單次腹腔注射2周后即第7周(7 weeks),DNP組及DNP+ EA組大鼠機械痛閾明顯下降(P< 0.01;P< 0.01);電針干預(yù)1周(8 weeks)能上調(diào)DNP大鼠的機械痛閾(P< 0.01)。
注:與正常組相比,**P< 0.01,與糖尿病神經(jīng)痛組相比,##P< 0.01。圖2 各組大鼠機械痛閾變化情況Note.**P< 0.01, vs the Normal group. ##P< 0.01, vs the DNP group.Figure 2 Changes of paw withdrawal threshold in rats of each group
如圖3所示,各組大鼠基礎(chǔ)(base)熱痛閾及高脂高糖喂養(yǎng)5周(5 weeks)熱痛閾均無明顯差異;高脂高糖喂養(yǎng)5周后予以STZ單次腹腔注射2周后即第7周(7 weeks),DNP組及DNP+ EA組大鼠熱痛閾明顯下降(P< 0.01;P< 0.01);電針干預(yù)1周(8 weeks)能上調(diào)DNP大鼠的熱痛閾(P< 0.01)。
注:與正常組相比,**P< 0.01,與糖尿病神經(jīng)痛組相比,##P< 0.01。圖3 各組大鼠熱痛閾變化情況Note. **P< 0.01, vs the Normal group.##P< 0.01, vs the DNP group.Figure 3 Changes of paw withdrawal latency in rats of each group
HE染色觀察各組大鼠坐骨神經(jīng)的變化情況。如圖4所示,正常組:坐骨神經(jīng)有髓神經(jīng)纖維排列緊密,軸索排列整齊,髓鞘結(jié)構(gòu)完整;DNP組:坐骨神經(jīng)有髓神經(jīng)纖維排列紊亂,軸索腫脹,髓鞘密度不均勻,空泡變性。DNP+EA組:坐骨神經(jīng)有髓神經(jīng)纖維排列紊亂,軸索腫脹。
采用免疫印跡法檢測大鼠脊髓背角NF-κB p65蛋白的表達。如圖5所示,與正常組相比,DNP大鼠脊髓背角NF-κB p65蛋白表達增多(P< 0.05),電針干預(yù)能下調(diào)DNP大鼠脊髓背角NF-κB p65蛋白的表達(P< 0.05)。
注:與正常組相比,*P< 0.05,與糖尿病神經(jīng)痛組相比,#P< 0.05。圖5 各組大鼠脊髓背角NF-κB p65蛋白變化Note.*P< 0.05, vs. the Normal group.#P<0.05, vs. the DNP group.Figure 5 Changes of NF-κB p65 in the spinal cord dorsal horn of rats in each group
糖尿病神經(jīng)痛是糖尿病常見的并發(fā)癥[10],既有痛覺過敏、痛覺超敏、自發(fā)痛等神經(jīng)病理性疼痛的一般表現(xiàn)[11],也會引起不同程度的抑郁、焦慮、失眠等,嚴重影響患者的生存質(zhì)量[12]。鏈脲佐菌素能針對性的損傷胰島β細胞從而使胰腺減少胰島素分泌,因此被廣泛應(yīng)用于誘導糖尿病模型[13]。本研究采用高脂高糖飼料喂養(yǎng)5周聯(lián)合單次腹腔注射STZ建立糖尿病神經(jīng)痛大鼠模型,大鼠出現(xiàn)血糖明顯上升,機械痛閾和熱痛閾下降,坐骨神經(jīng)有髓神經(jīng)纖維排列紊亂,軸索腫脹,髓鞘密度不均勻,空泡變性。
大量研究表明,電針對不同類型的疼痛都具有良好的鎮(zhèn)痛效果[8,14-15],但不同頻率的電針對不同性質(zhì)的疼痛的鎮(zhèn)痛效應(yīng)不同。100 Hz的高頻電針對于完全弗氏佐劑所致的炎性痛鎮(zhèn)痛效應(yīng)最好[8]、2/100 Hz對于骨癌痛大鼠的鎮(zhèn)痛效應(yīng)最佳[14]、而2 Hz低頻電針對于脊神經(jīng)結(jié)扎神經(jīng)病理痛大鼠鎮(zhèn)痛效應(yīng)最佳[15]。我們前期研究發(fā)現(xiàn),電針干預(yù)糖尿病神經(jīng)痛存在2 Hz低頻電針優(yōu)于100 Hz高頻電針的優(yōu)勢[16],故本研究采用2 Hz低頻電針對糖尿病神經(jīng)痛大鼠進行干預(yù),結(jié)果顯示低頻電針可明顯提高DNP大鼠的機械痛閾和熱痛閾,表明低頻電針能有效緩解糖尿病神經(jīng)痛。
NF-κB家族主要有p50/p105(NF-κB1)、p50/p100(NF-κB2)、c-Rel、p65(RelA)、RelB五種蛋白組成,其中p65是NF-κB家族中最主要的功能蛋白。NF-κB在藥物引起的神經(jīng)痛模型大鼠脊髓背角表達上升,說明NF-κB參與了神經(jīng)病理痛[17]。在本研究中免疫印記結(jié)果顯示,DNP模型大鼠脊髓背角NF-κB p65蛋白較正常組大鼠增多。在高血糖的狀態(tài)下,NF-κB活性持續(xù)升高,引起神經(jīng)炎癥反應(yīng),激活小膠質(zhì)細胞和神經(jīng)膠質(zhì)細胞,這進一步增加了炎性介質(zhì)的釋放,釋放的神經(jīng)介質(zhì)促進了神經(jīng)纖維對疼痛刺激敏感的敏感程度[18]。免疫印記結(jié)果顯示電針能降低糖尿病神經(jīng)痛大鼠脊髓背角中升高的NF-κB p65蛋白,表明低頻電針對DNP的干預(yù)作用可能與其對有效抑制脊髓背角NF-κB p65蛋白表達有關(guān)。
綜上,低頻電針能有效改善糖尿病神經(jīng)痛,與其抑制脊髓背角NF-κB p65蛋白的表達有關(guān),表明了低頻電針在糖尿病神經(jīng)痛臨床中有較好的應(yīng)用前景,為電針治療糖尿病神經(jīng)痛提供了部分理論依據(jù)。