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    矮牽?!t色’再生及遺傳轉(zhuǎn)化體系的初步建立

    2016-05-30 10:48:04董亞茹王照紅杜建勛陳傳杰趙東曉
    山東農(nóng)業(yè)科學(xué) 2016年3期
    關(guān)鍵詞:遺傳轉(zhuǎn)化矮牽牛

    董亞茹 王照紅 杜建勛 陳傳杰 趙東曉

    摘要:以矮牽?!t色無菌苗葉片為外植體,建立無菌再生體系,并在此基礎(chǔ)上建立其遺傳轉(zhuǎn)化體系。結(jié)果表明,誘導(dǎo)矮牽牛葉片分化的最佳培養(yǎng)基為Ms+2.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/LNAA;最佳生根培養(yǎng)基為1/2MS+0.1 mg/L NAA;最適出芽和生根的卡那霉素篩選壓分別為100 mg/L和20 mg/L;最適頭孢霉素抑菌濃度為200 mg/L。

    關(guān)鍵詞:矮牽牛;漫波紅色;再生體系;遺傳轉(zhuǎn)化

    中圖分類號:S681.603.6 文獻標(biāo)識號:A 文章編號:1001—4942(2016)03—0014—04

    矮牽牛比較容易再生,組織與細(xì)胞操作技術(shù)簡單,生活周期短,遺傳背景清晰,又是一種重要的園林花卉,因而其基因工程育種開展的較早,成為常見的轉(zhuǎn)基因花卉。并在植物基因工程育種、體細(xì)胞育種及單倍體育種方面均取得一定進展,基因工程育種已創(chuàng)造出新的矮牽牛品種并加以應(yīng)用。國內(nèi)外對矮牽牛組織培養(yǎng)方面的研究已經(jīng)相當(dāng)深入,曾進行過葉、莖、節(jié)間、葉肉原生質(zhì)體、花粉粒、根分生組織、莖分生組織、芽、花瓣等外植體類型的研究。常用作矮牽牛組織培養(yǎng)外植體的有種子、帶芽莖段、莖尖、葉片、花蕾、花瓣、花藥等。

    利用生物技術(shù)手段改變觀賞植物的性狀,創(chuàng)造優(yōu)良新品種,是目前園林植物研究的一個熱點。本試驗以矮牽?!t色為材料,建立其再生體系以及遺傳轉(zhuǎn)化體系,為下一步農(nóng)桿菌介導(dǎo)的轉(zhuǎn)基因研究做好準(zhǔn)備工作,也為其他觀賞植物的轉(zhuǎn)基因研究奠定基礎(chǔ)。

    1材料與方法

    1.1試驗材料

    以矮牽?!t色無菌苗為材料,取生長一致的無菌苗葉片做為外植體,接種在添加不同激素的MS基本培養(yǎng)基(附加蔗糖30g/L、瓊脂7.8g/L,pH 5.8~6.0)中,培養(yǎng)溫度為(25±2)℃,光照強度2 000~3 000 lX,光照時間16 h/d。

    農(nóng)桿菌菌株:EHA105;質(zhì)粒:pROKⅡ,該表達載體含有NptⅡ基因,遺傳轉(zhuǎn)化時可通過卡那霉素抗性篩選獲得轉(zhuǎn)基因植株。

    1.2試驗方法

    1.2.1愈傷組織的誘導(dǎo)及芽的分化將無菌苗葉片切成5 mm×5 mm的方塊接種于添加不同濃度6-BA和不同濃度NAA的MS培養(yǎng)基上,遠軸面朝下。6-BA的濃度設(shè)為0.5、1.0、1.5、2.0mg/L,NAA的濃度設(shè)為0.05、0.1、0.5 mg/L,做正交設(shè)計。每處理30個外植體,3次重復(fù),10 d繼代一次,30 d后統(tǒng)計葉片分化率及生長情況,選擇最佳芽分化培養(yǎng)基。分化率(%)=分化外植體數(shù)/外植體總數(shù)×100。

    1.2.2生根培養(yǎng)切取生長一致的無菌再生壯苗,將其接種在添加不同濃度NAA的1/2MS培養(yǎng)基上。NAA的濃度設(shè)為0、0.05、0.1、0.5、1.0mg/L,每處理30個外植體,重復(fù)3次,10 d繼代一次,30 d后統(tǒng)計生根率及再生不定根的生長情況,選擇最佳生根培養(yǎng)基。生根率(%)=生根外植體數(shù)/外植體總數(shù)×100。

    1.2.3卡那霉素選擇壓的確定①卡那霉素對外植體分化的影響:取矮牽牛無菌苗葉片切成5mm×5 mm大小,分別接種于添加0、25、50、75、100、150 mg/L卡那霉素的MS+2.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA培養(yǎng)基中分化培養(yǎng),每處理30個外植體,重復(fù)3次,10 d繼代一次,20 d后統(tǒng)計分

    2.2生根培養(yǎng)

    切取1.5 cm左右高的無菌再生苗接到添加不同濃度NAA的1/2MS培養(yǎng)基中,10 d左右時,化率。②卡那霉素對生根的影響:切取生長一致的無菌再生壯苗,分別接種于添加0、5、10、15、20、30 mg/L卡那霉素的1/2MS+0.1 mg/L NAA培養(yǎng)基中,每處理30個外植體,3次重復(fù),10 d繼代一次,20 d后統(tǒng)計生根情況。

    1.2.4除菌劑頭孢霉素濃度的篩選 ①頭孢霉素對農(nóng)桿菌的抑制情況:取適量農(nóng)桿菌EHA105菌液加入到含有不同濃度除菌劑的LB液體培養(yǎng)基中,設(shè)置0、100、200、300、400、500 mg/L頭孢霉素濃度梯度,28℃、180 r/min搖床暗培養(yǎng)48 h,測定OD值。②頭孢霉素對外植體分化的影響:將矮牽牛無菌葉片切成5 mm×5 mm大小,接種在分別添加0、100、200、300、400、500 mg/L頭孢霉素的MS+2.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA培養(yǎng)基上,每處理30個外植體,重復(fù)3次,10 d繼代一次,20 d后統(tǒng)計分化結(jié)果。

    2結(jié)果與分析

    2.1愈傷組織的誘導(dǎo)及芽的分化

    葉片接種5 d后,整體膨大,增厚,并發(fā)生卷曲(圖1)。一周后在葉片切口邊緣開始出現(xiàn)淺綠色的愈傷組織,葉脈處最為明顯。兩周后愈傷組織體積稍有變大,顏色變綠,在MS+0.5 mg/L6-BA+0.05 mg/L NAA培養(yǎng)基上最先有綠色芽點出現(xiàn),主要集中在葉脈處。三周后大多數(shù)葉片變成黃色,同時一些芽體發(fā)育成幼苗。在MS+2.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA培養(yǎng)基上芽的分化率最高,達到86.7%,且芽簇生密集。在1/2MS+0.05 mg/L NAA和1/2MS+0.1 mg/LNAA培養(yǎng)基中最先有錐狀白色凸起。NAA在0~1.0 mg/L濃度范圍內(nèi)均能誘導(dǎo)生根,在不添加NAA的培養(yǎng)基中,生出大量的根,但根細(xì)、呈黃綠色,NAA濃度越高,生出的根越粗壯,但數(shù)量越來越少,且生根率達到一定值后出現(xiàn)下降。在

    2.3卡那霉素選擇壓的確定

    2.3.1卡那霉素對外植體分化的影響 卡那霉素在0~75 mg/L濃度范圍內(nèi),外植體有愈傷組織產(chǎn)生,隨著濃度增加,葉盤的愈傷膨大率降低,分化出的芽數(shù)也逐漸減少,死亡率依次增加。當(dāng)卡那霉素濃度為75 mg/L時,外植體分化率為6.7%,而死亡率已達到63.3%;當(dāng)卡那霉素濃度為100~150 mg/L時,大部分葉片黃化死亡,分化率為零(圖3)。因此,將100 mg/L作為卡那霉素抑制假陽性的臨界濃度。

    2.3.2卡那霉素對生根的影響 在不添加卡那霉素的培養(yǎng)基中,再生苗植株生長正常,生根率達100%;在5~15 mg/L范圍內(nèi),隨著卡那霉素濃度的增加,生根率依次降低,且根系數(shù)量較不添加卡那霉素少,植株長勢弱;當(dāng)卡那霉素濃度達到20mg/L時,生根率幾乎為零(圖4)。因此,在生根篩選時宜選擇卡那霉素濃度20 mg/L作為選擇壓。

    2.4頭孢霉素濃度的篩選1/2MS+0.1 mg/L NAA培養(yǎng)基中,生根率達100%,且根粗壯、數(shù)量多(圖2)。因此,1/2MS+0.1 mg/L NAA為矮牽牛生根的最適培養(yǎng)基。

    2.4.1頭孢霉素對農(nóng)桿菌的抑制情況將農(nóng)桿菌菌液加入到含有不同濃度頭孢霉素的LB液體培養(yǎng)基中,28℃、180 r/min暗培養(yǎng)48 h,菌的生長受到不同程度的抑制(圖5)。當(dāng)頭孢霉素濃度為100 mg/L時,農(nóng)桿菌繁殖受到一定抑制;當(dāng)頭孢霉素濃度為200~500 mg/L時,農(nóng)桿菌的OD值均小于0.5,且抑菌效果基本一致??紤]到高濃度的頭孢霉素會對外植體生長造成一定影響,因此初步確定200 mg/L為最適的抑菌濃度。

    2.4.2頭孢霉素對外植體分化的影響 在0~500 mg/L濃度范圍內(nèi),隨著頭孢霉素濃度的升高,誘導(dǎo)出的愈傷組織量減少,外植體的分化率也逐漸降低(圖6),且分化出的芽生長緩慢,葉片發(fā)黃。因此,在轉(zhuǎn)化過程中,在有效抑制農(nóng)桿菌生長的前提下,頭孢霉素濃度應(yīng)采用一個較低值,以保證矮牽牛葉片能正常誘導(dǎo)分化。由于在200mg/L時頭孢霉素就能有效抑制農(nóng)桿菌生長,所以在共培養(yǎng)結(jié)束后,第一次篩選時選用500 mg/L頭孢霉素,一周后,在后期培養(yǎng)中選用200 mg/L進行抑菌篩選培養(yǎng),既可抑制農(nóng)桿菌生長也不會影響外植體分化。3結(jié)論與討論

    本研究以‘漫波紅色無菌植株葉片為外植體,成功建立了其無菌再生及遺傳轉(zhuǎn)化體系。不同的矮牽牛品種其再生方式存在差異,馬方芳等的研究結(jié)果表明‘幻想矮牽牛在MS+2.0mg/L6-BA+2.0 mg/L NAA培養(yǎng)基中直接再生出芽率達94.7%,且無明顯愈傷。而本研究中‘漫波紅色在MS+2.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/LNAA培養(yǎng)基中出芽率最高,且有大量愈傷產(chǎn)生,6-BA在0.5~2.0 mg/L范圍內(nèi),濃度越高分化率越高,NAA濃度高于或者低于0.1 mg/L都不利于再生芽的產(chǎn)生。組織培養(yǎng)一般選用1/2MS培養(yǎng)基作為生根基礎(chǔ)培養(yǎng)基,再添加不同濃度的IBA或者NAA。張樹軍等在1/2MS培養(yǎng)基中添加0.5 mg/L的NAA,幾乎都能誘導(dǎo)出根。馬瑛以0.1 mg/L的IBA作為生根激素,生根率也達到100%。本研究采用NAA作為生根激素,0.1 mg/L濃度下的生根率達100%,且植株生長健壯。

    有關(guān)矮牽牛遺傳轉(zhuǎn)化的研究也已有很多報道,但由于再生和遺傳轉(zhuǎn)化效率的基因型依賴性強,故不同品種其研究結(jié)果也不同??敲顾貫殡p子葉植物遺傳轉(zhuǎn)化時常用的選擇標(biāo)記用抗生素,對植株再生有很大影響。本研究中,卡那霉素濃度為100 mg/L時才能完全抑制‘漫波紅色矮牽牛再生芽的產(chǎn)生,這與馮慧等的試驗結(jié)果一致。劉南南等用潮霉素進行敏感性試驗發(fā)現(xiàn),10 mg/L的潮霉素就能完全抑制‘夢幻系列矮牽牛葉片分化生長。武術(shù)杰等用15mg/L卡那霉素便完全抑制了矮牽牛‘Tidal Wave品種再生芽的發(fā)生。本研究中,低濃度(20mg/L)的卡那霉素則可以抑制不定根的產(chǎn)生。司愛君等在矮牽牛的遺傳轉(zhuǎn)化試驗中采用30mg/L的卡那霉素進行生根篩選,對照植株完全不能生根。頭孢霉素是植物遺傳轉(zhuǎn)化中常用的一種抑菌劑,其使用濃度以完全抑制農(nóng)桿菌的生長而不影響外植體分化為宜。孫艷香等研究結(jié)果顯示,300 mg/L頭孢霉素為‘交響曲系列矮牽牛遺傳轉(zhuǎn)化適宜的抑菌劑。本試驗中,200 mg/L頭孢霉素就有很好的抑菌效果,在0~500 mg/L范圍內(nèi),頭孢霉素濃度對外植體出芽率的影響差異不大,因此選擇200 mg/L為適宜的抑菌濃度。

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